Mecanismos de control para Drosophila suzukii

Transcripción

Mecanismos de control para Drosophila suzukii
Mecanismos de control para Drosophila suzukii, dentro de la GIP
Cartagena, 19 y 20 de noviembre de 2013
Ricard Sorribas Royo
Anna Lekunberri Gómez
Servei de Sanitat Vegetal
Introducción
Los drosofílidos son dípteros de pequeño tamaño,
generalmente asociados a frutos sobremadurados o restos vegetales en
descomposición
Una de las especies más conocidas es Drosophila melanogaster o
mosca del vinagre
Foto: R. Sorribas
Servei de Sanitat Vegetal
Asia
1937 Este de Rusia
1965 Norte de India
2005 Pakistan
Federación Rusa
1937 Este de China
1937 Corea del Norte
1931 Japón
1968 Corea del Sur
1977 Taiwan
1976 Tailandia
1991 Birmania
Europa
2009 Francia
Montpellier, Minière
de Vallauria, Alps
Marítims
2011 Alemania
2011 Suiza
2012 Holanda
2009 Italia Trento
2011 Bélgica
2010 España
Girona
2009 España
Barcelona
2012 Austria
2010 Eslovenia
2011 Croacia
2008 PRIMERA
CITA DE EUROPA
España Tarragona
2010 Córcega
2011 España
Navarra, Murcia,
Andalucía…
2008 California
Santa Cruz
Nord Amèrica
2009 Oregon
2011 Wisconsin
2009
Washington
2011 Michigan
2011 New York
2009 California
20 Condados
2012
Massachusetts
2010 Utah
2009 Carolina
del Norte
2009 Carolina
del Sur
2009 Columbia
Británica - Canadá
2009 Florida
2009 Lousiana
~1980 Hawaii
2011 México
Año 2010 EPPO inclusión en la lista de alertas
Frutos susceptibles
Cerezas
Fresas
Frambuesas
Arándanos
Moras
Ciruelas
Melocotones
Albaricoques
Higos
Uva
Manzanas, Peras, Kiwis, …
Impacto
Problemática global para la producción de fruta en amplias zonas
Amplio rango de hábitats y huéspedes donde se reproduce
Poblaciones del insecto con crecimiento explosivo
Costes adicionales para la protección de cultivos
La Producción ecológica fuertemente amenazada
Daños en cerezas
Fotos: A. Lekunberri / R. Sorribas
Servei de Sanitat Vegetal
Rhagoletis cerasi
Drosophila suzukii
Fotos: Núria Cuch- Andreu Vila- Ricard Sorribas
Rhagoletis cerasi
Drosophila suzukii
Fotos: Núria Cuch- Ricard Sorribas
Cataluña. Daños en cerezas
2011
Variedades tempranas
Variedades media
Variedades tardías
Superficie afectada 95 Ha de 3.300 Ha
10 al 80%
30%
cercanas al 100%
2012
Baja o nula presencia de la plaga.
Confusión con daños ocasionados por Rhagoletis cerasi
2013
Lenta evolución por bajas temperaturas. Daños en frutos.
Necesidad de protección fitosanitaria.
Daños en fresa
Fotos: Ricard Sorribas Royo
Servei de Sanitat Vegetal
Daños en fresa
Fotos: A. Lekunberri Gómez/ Ricard Sorribas
Servei de Sanitat Vegetal
Daños en fresa
Fotos: Anna Lekunberri Gómez
Servei de Sanitat Vegetal
Cataluña. Daños en fresas
2011. Pérdidas del 20% al 100%.
Los cultivos más afectados han sido los de producción ecológica.
Superficie aproximada afectada en fresas ha sido de 30 Ha. de
las 60 Ha. actuales
2012. Hasta finales de septiembre escasa presencia del
insecto. A partir de octubre aumento exponencial de las
poblaciones y detección de daños
2013. Aumento de las poblaciones en otoño y detección de
daños. Necesidad de proteger el cultivo
Características morfológicas
dos manchas negras alares,
dos pares de pintas tarsales
oviscapto serrado y alargado
Fotos: Ricard Sorribas Royo /
Anna Garreta Gornals
Servei de Sanitat Vegetal
Ciclo biológico.
Huevo: En el interior del fruto, donde eclosionan y se desarrollan las larvas
Larva: Pasan por 3 estadios antes de pupar
Pupa: La pupa puede formarse tanto fuera como dentro del fruto
7-9 días a 21,1ºC
Fotos: Víctor Sarto / J. Orlando Moreno .Servei de Sanitat Vegetal
Ciclo biológico
7-9 días a 21,1ºC y 12-15 días a 18,3ºC
Entre 3 y 13 generaciones
Los adultos, sexualmente maduros después de 1 a 2 días. Pueden vivir entre
21 y 66 días y una hembra puede poner entre 1 y 3 huevos en cada punto de
oviposición, depositando una media de 380 huevos durante toda su vida
Tan sólo los adultos sobreviven al invierno, hembras principalmente
Prefiere un clima moderado, pero sobreviven en condiciones frías
Isla de Hokkaido (Japón), inviernos con T. medias de - 4º C a -12 º C
Máxima actividad a 20ºC. Reducción a temperaturas > a 30ºC y < a 0ºC
Muy sensible a la desecación
Influencia de la meteorología. Primavera
Influencia de la meteorología. Otoño
Monitoreo de las poblaciones
Anna Botta & Manel Carrión
Departamento I+D. División Fisiología Vegetal.
BIOIBERICA, S.A..
Consideraciones sobre el monitoreo de D. suzukii
Monitoreo laborioso. Identificación de individuos
Degradación de atrayentes (vinagre, vino, levadura…)
Estandarización de sistemas de monitoreo
Muestreo de zonas cultivadas y limítrofes
Ubicación de las trampas
Interacción plaga/cultivo
Áreas refugio
Fotos: A. Lekunberri / R. Sorribas
Servei de Sanitat Vegetal
Protocolo de monitoreo de D. suzukii . 2013
Objetivos del monitoreo
Determinar zonas de presencia Drosophila suzukii
Establecer puntos de seguimiento poblacional
Material
Trampa: Hemitrap®
Atrayente: SuzukiiTrap®
Medidas de control. Gestión Integrada
Profilácticas
Captura masiva
Tratamientos fitosanitarios
Fauna auxiliar, control biológico
Medidas profilácticas
Recoger también los frutos no comerciales de las parcelas para
evitar la proliferación de la plaga
Gestionarlos correctamente. Contenedores herméticos,
enterrarlos en profundidad
Evitar plantaciones abandonadas. La ley de Sanidad Vegetal
obliga a los propietarios a gestionar correctamente la sanidad
de sus cultivos
Reservorios en huéspedes silvestres: moras, madroños…
Conocer los puntos de entrada, movimiento de la plaga
Medidas mancomunadas
CAPTURA MASIVA. Técnica actualmente en experimentación
Colocación de las trampas con anticipación
Los atrayentes basados en vinagre de sidra, vino, levadura… se
degradan rápidamente y pierden capacidad de atracción. Son buenos
indicadores si se renuevan semanalmente
Necesidad de atrayentes más selectivos y de más lenta degradación
Trampas de alta capacidad para recoger picos de población que
pueden llegar a ser muy altos
Determinar la densidad de trampas
Captura masiva invierno. Cerezo
Invierno: Perimetral cada 4 - 5m.
Captura masiva primavera inicio floración
Primavera: Perimetral cada 4- 5m.
Trampas indicadoras dentro de la parcela
Captura masiva
Cultivo: 200 trampas/ha
Captura masiva fresa y frambuesa
Cultivo: 200 trampas/ha
Fotos: R. Sorribas
Servei de Sanitat Vegetal
Evaluación captura masiva fresa y frambuesa
Sistema Suzukii Trap
Tratamiento insecticida
Reposición atrayente
Anna Botta & Manel Carrión
Departamento I+D. División Fisiología Vegetal.
BIOIBERICA, S.A..
Medidas de control. Tratamientos fitosanitarios
Tratamientos fitosanitarios
La erradicación no es posible
Soluciones de urgencia a corto plazo
Rotación de materias activas y modos de acción
Falta de autorizaciones específicas
Riesgo de residuos
Objetivo: Gestión integrada
Autorización excepcional cerezo 2012 / 2013. 120 días
Dimetoato 40%p/v[EC
Dosis: Año 2012: 75 cc/Hl (750 cc/Ha) / Año 2013: 35 cc/Hl (350 cc/ha)
Volumen del caldo: 1000L/Ha
Núm. máximo de aplicaciones por ciclo de cultivo: 1
Plazo de seguridad : Año 2012: 21 días / Año 2013: 14 días
Spinosad 48% p/v[SC]
Dosis: 20-25 cc/Hl
Núm. máximo de aplicaciones por ciclo de cultivo : 3
Plazo de seguridad : Año 2012: 7 días / Año 2013: 14 días
Autorización excepcional cerezo 2013. 120 días
Spinetoram 25% p/p [WG]
Dosis: 30cc/Hl (300 cc/Ha).
Núm. máximo de aplicaciones por ciclo de cultivo: 2
Plazo de seguridad : 3 días.
Autorización excepcional Frambuesa y mora 2013. 120 días
Spinosad 48% p/v[SC]
Dosis: 20-25 cc/Hl
Núm. máximo de aplicaciones por ciclo de cultivo : 3
Deltametrin 1.5% p/v [EW]
Dosis: 0,05-0,083 l/Hl
Núm. máximo de aplicaciones por ciclo de cultivo : 3
Autorización excepcional Arándanos 2013. 120 días
Spinosad 48% p/v[SC]
Dosis: 20-25 cc/Hl
Núm. máximo de aplicaciones por ciclo de cultivo : 3
Ensayo insecticidas laboratorio. IRTA-DAAM. 2012
Sobre adultos
Sobre huevos
Persistencia en hoja
Judit Arnó, Rosa Gabarra, y col. IRTA Cabrils
Eficacia sobre
adultos
(residuos 0-3 dd)
Eficacia
Persitencia
(fruto
infestado)
(edad residuo
mort.>75%)
Planta
Fruto
Fruto
Persistencia
B. bassiana (Naturalis)
1
1
1
n
B. bassiana ( Botanigard)
1
2
3
n
Azadiractin (Aling)
1
1
2
n
Sí (3d) Si (3d)
Azadiractin (Neemazal )
2
1
1
n
Si (3d)
No
Spinosad (Spintor)
4
4
4
28-31 dd
Sí (1d)
No
Deltametrin (Decis)
--
4
--
--
Si (3d) Si (7d)
Lambda Cihalotrin (Karate)
4
4
4
28-31 dd
Si (3d) Si (7d)
Acetamiprid (Epik)
4
2
4
0-3 dd
No
Si (14d)
Emamectina (Affirm)
--
4
--
--
Si (1d)
No
Dimetoat (Danadim)
4
4
4
28-31 dd
No
No
Materia activa
Eficacia (OILB)
: 1 - 25 %
: 26 - 50 %
: 51 - 75 %
Sí (np) Sí (np)
No
No
: >75 %
Judit Arnó, Rosa Gabarra, y col. IRTA Cabrils
Estrategia de control en cerezo
Caída de pétalos
Inicio de captura masiva
perimetral / total
Envero (de color verde a paja)
Según muestreo y
condiciones
meteorológicas. Inicio
de tratamientos
Maduración (de color rosado a rojo)
Tratamientos periódicos
Respetar plazo de seguridad
Consideraciones sobre los tratamientos fitosanitarios
Replanteamiento de los Programas de Gestión Integrada de
Plagas y manejo de resistencias
Proteger el cultivo desde el inicio de la maduración
Alternar Sustancias activas de los grupos organofosforados,
piretroides, neonicotinoides y espinosinas
Falta de autorizaciones específicas para los diferentes
cultivos susceptibles a D. suzukii
Efecto adulticida, bajo efecto larvicida
En general poca compatibilidad con control biológico
Control biológico
No es habitual que una nueva plaga venga acompañada de
sus enemigos naturales, por lo que será preciso esperar un
tiempo para que los potenciales depredadores y parasitoides
visualicen la nueva fuente de alimento
Parasitoides identificados sobre la plaga en Cataluña
– Pachycrepoideus vindemmiae
– Leptopilina boulardi
Control biológico
Pachycrepoideus vindemmiae
Hembra ovopositando en pupa de tefrítido
Larva sobre pupa de mosca doméstica
Fotos: Max E. Badgley. Cortesia de http://www.bugsinthenews.com
Control biológico
Pachycrepoideus vindemmiae
Ectoparasitoide pupal, idiobionte
Utilizado como OCB en Hawái, Costa Rica, Argentina y Colombia
Distribuido en 60 países del mundo
Parásito primario de diferentes órdenes (Díptera, Hemíptera, Himenóptera
y Lepidóptera). Principalmente dípteros de 12 familias. Destacan,
Anastrepha fraterculus, Anastrepha suspensa, Bactrocera oleae y
Ceratitis capitata
Hiperparasitoide de muchos parasitoides beneficiosos (Wang y Messing,
2004)
En España: Lanzarote del año 1985, Monegros del año 1992 , en la
comarca del Segrià en Lleida, recientemente se ha localizado en Begues
(Barcelona) en cerezas y fresas (Maresme) infestadas con D. suzukii.
Control biológico
Leptopilina boulardi
• Drosophila sp., activa
mecanismos de autodefensa
• Leptopilina boulardi provoca
un aumento de hematocitos en
Drosophila sp. que encapsula
la puesta del parasitoide
• Respuesta inmunitaria
Foto:
http://www.plosbiology.org/article/info:doi/10.1371/journal.pbio.0020255
Control biológico
Potencialmente existen hongos, bacterias, virus, depredadores
o parasitoides. Información sobre D. melanoganster
Prospección de las zonas colindantes a los cultivos y parcelas
con baja presión de tratamientos. Baja compatibilidad con la
mayoría de tratamientos fitosanitarios actuales
Dificultad de control debido a explosión de las poblaciones.
Poblaciones insuficiente de fauna auxiliar
49
MUCHAS GRACIAS !!!
Más información en:
www.gencat.cat/agricultura/sanitat

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