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Transcripción

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ingenieros consultores
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LLaa aalltteerrnnaattiivvaa ssoocciiaall yy eeccoonnóóm
miiccaa ddeell tteerrcceerr m
miilleenniioo
______________________________________________________________________________________________
Nicolás Hurtado Totocayo
Ingeniero Pesquero Acuicultor
Especialidad en Tilapia
Lima – Perú
Tels. (51 1) 2674610 (51 74) 933454 E-mail : [email protected]
1
1.
REVISIÓN DE LITERATURA
1.1.1. LA TILAPIA
1.1.1.1.
GENERALIDADES
Los peces denominados genéricamente “Tilapias” han suscitado y
recibido, quizás, mayor atención que cualquier otro grupo de peces en todo el
mundo (Avault, 1995; citado por Wicki & Gromenida, 1997).
Castillo (2001) menciona que el nombre de tilapia fue empleado por
primera vez por Smith en 1840, es un vocablo africano que significa “pez”,
derivado de la palabra “Tilapi” o “Ngege” en el idioma “Swahili” población
indígena que habitó en la costa del lago Ngami (Africa). Los japoneses lo
llaman Telepia, en muchos países en el mundo también ha sido llamado Perca
(Perch), Saint Peter’s Fish, Bream, Cherry Snapper, Nile Perch, Hawallán Sun
Fish, Mudfish, Pargo rojo de agua dulce, Mojarra (Colombia, México).
Spataru & cols. (1983); citado por Viteri, 1985, ya denominaba a la
tilapia nilotica con su nombre científico actual, Oreochromis niloticus.
Chimits (1955); citado por Wicki & Gromenida, 1997, Incluye los géneros
Tilapia y Oreochromis entre otros, (con mas de 100 especies), que son
originarios del Africa, habiéndose extendido posteriormente hacia el norte de
Israel y Jordán. Bardach (1990), menciona que luego de la Segunda Guerra
Mundial, fueron introducidas desde su origen a varios países del Asia y
América, diseminándose sin control alguno, donde hoy en día se encuentra
virtualmente en todo cuerpo de agua incluyendo diques y pozos inactivos
donde pocos peces de valor pueden crecer. La introducción de tilapia a los
EE.UU. en los años 60, es reportado como una de las
comerciales mas catastróficas
experiencias
en la historia de la Acuicultura.
Muchos autores han coincidido en que los miembros del género Tilapia
(familia Cichlidae), han sido una importante fuente de alimento para el hombre,
así por ejemplo Bardach (1990), señala que los peces que San Pedro recogió
en el Mar de Galilea y lo que Cristo dio a las multitudes eran Tilapias. Así
mismo hace referencia que en un friso de una tumba egipcia, fechado 2500
2
años A. C. se ilustra la cosecha de Tilapia y sugiere que debe haber sido obra
de cultivadores.
Balarin (1979); citado por Castillo, 2001, amplía y menciona que un
miembro de Oreochromis niloticus, fue motivo de observaciones detalladas
en Egipto hace 5000 años, siendo frecuentes en muchos grabados egipcios, en
donde era mirada como algo sagrado, símbolo
y esperanza de la
reencarnación. FAO (1966); citado por Castillo, 2001, también menciona que
en un bajo relieve sobre “La Mastaba o Tumba de Aktihetep” elaborado hace
2500 años A.C., muestra la pesca de la tilapia con redes en el Río Nilo y el
acto de abrirla por la mitad con el fin de secarla al sol. Castillo (2001), aclara
que históricamente se considera a Aristóteles como el personaje que le dio su
nombre por primera vez.
Bardach (1990) menciona quelos cultivos iniciales de tilapia en América
Latina, fueron únicamente a pequeña escala familiar, utilizando nutrientes a
bajo costo como abonos orgánicos y subproductos agrícolas.
En la década de los 80 la disponibilidad comercial de alimentos para
animales acuáticos y el desarrollo de técnicas para la producción masiva de
alevines monosexo, permitieron el crecimiento rápido de cultivos comerciales
de Tilapia en América Latina y el Caribe (Figura 1). La producción comercial
empezó en Jamaica en 1983, se extendió a Colombia, poco después a Costa
Rica, Brasil, Ecuador, Honduras, Nicaragua y Venezuela. Actualmente, se tiene
información de su cultivo a nivel comercial en mas de 65 países, estando la
mayoría de estos situados en los Trópicos y Subtrópicos.
Castillo(2001), menciona que en 1962 la tilapia mossámbica (O.
mossambicus. Peters, 1852); fue introducida al lago sauce en la región de
San Martín en el Perú en estanques de la cuenca amazónica, procedente del
Brasil, por la Direccion General de Caza y Pesca del Ministerio de Fomento y
Agricultura como forraje para el “paiche o pirarucu” (Arapaima gigas), pero su
desarrollo serio se inicia en 1979.
3
Figura 1. Producción Mundial de Tilapia hasta 1998
(mozambica, nilotica y nei) en TM
1000000
900000
800000
700000
600000
TM. 500000
400000
300000
200000
100000
0
1986
1988
1990
1992
1994
1996
1998
AÑOS
Fuente : FAO – Fish Stat Plus 2000; citado por PROMPEX, 2001
Así también menciona que en el año 1966 se introdujo la tilapia rendalli
(Tilapia melanopleura) al Perú desde el Brasil.
En nuestro país, la introducción de tres especies de Tilapia por
instituciones como el IMARPE y a Universidad Agraria en los años 70, (T.
rendalli, T. nilótica y T. mossambica), permitieron diversas investigaciones que
entre otros resultados, concluyeron en el establecimiento de numerosas
unidades de cultivo comercial de Tilapia en varios lugares de país. La mayor
parte de ellos, sin embargo, están concentrados en el departamento de San
Martín, por las condiciones favorables que presenta esta zona del país.
(Basurco, 1998)
Actualmente se estima que esta zona produce en conjunto alrededor de
1 100 t mensuales, las cuales son comercializadas dentro de la misma región y
cuenta con más de 390 granjas operativas. Sin embargo, esta producción es
aún muy rudimentaria y con rendimientos bajos de 1 500 a 2 500 kg/ha.año, ya
que se maneja con población normal o sexada, no se aplica fertilización, se
utiliza alimentos artesanales en polvo y se trabaja con una sola etapa de
producción, sin mencionar la mala calidad del material genético de la zona
(Moscoso, 2001).
La tilapia roja es originaria de Asia, siendo introducida a Indonesia,
Malasia, Singapur, Filipinas, Japón, Tailandia, Israel, Inglaterra, Bélgica,
4
Canadá, EE.UU., Puerto Rico, Islas del Caribe, Centroamérica, Colombia,
Venezuela, Ecuador y Brasil, siendo recibida con gran aceptación por
productores y consumidores.
El cultivo de esta variedad aún no ha logrado en el país un desarrollo a
escala comercial, principalmente por el poco soporte técnico ocasionado por la
prohibición del cultivo en 1991. A ello se suma la poca importancia otorgada a
la acuicultura por el sector, al tener que competir con una poderosa actividad
extractiva marítima. Las pocas iniciativas privadas que se intentaron en los
últimos años fueron desalentadas por los propios funcionarios del sector,
determinando finalmente el alejamiento de las inversiones.(Moscoso, 2001)
Sin embargo, esta situación ha variado significativamente en los dos
últimos años en que los empresarios peruanos ven como Ecuador y otros
países latinos están logrando capturar el creciente mercado internacional,
especialmente de los Estados Unidos. Una razón coyuntural que ha motivado
el cultivo de Tilapia es la desafortunada caída de la producción langostinera de
Tumbes.
En general la demanda de tilapia continuó incrementándose durante los
90, ya que los consumidores van habituándose más y más a las varias
cualidades de este pez cultivado.
Se puede apreciar entonces que la situación de la tilapia como especie
cultivable ha vuelto ha recibir atención al punto de llegarse a conocer ciertas
variedades como “el pollo de agua”, “la gallina de agua”, y recientemente
reconocida por la comunidad internacional como la alternativa comercial del
tercer milenio.(Paz, 1995)
1.1.1.2.
ESPECIES CULTIVADAS DE TILAPIA
La tilapia es uno de los géneros mas recientes dentro de escala
evolutiva (unos 40 000 000 de años), lo que significa que aun no se encuentra
del todo definido, lo que ha dado consecuencia a numerosas especies y
subespecies.(Moscoso & cols., 1991)
Así Balarin(1979), menciona que existen por lo menos cerca de 100
especies solo en África, de los cuales solo 10 presentan un cultivo mas
popular de subespecies de tilapia, mientras que Thingran y Gopalakrishnan
(1974); citados por Pillay, 1995, enumera 22 especies que se han utilizado en
5
piscicultura experimental o a escala comercial. La existencia de superposición
de características morfológicas entre las especies ha creado confusión sobre la
situación taxonómica de muchos de
ellos, basándose principalmente en el
comportamiento reproductivo y hábitos alimenticios: macrofitófagos, micrófagos
y omnívoros. Si, es necesario manejar correctamente un patrón de
identificación por la pigmentación para las diferentes especies del género
Oreochromis (Tabla 1) (Castillo, 2001).
Tabla 1. Identificación según el patrón de pigmentación para las especies del
genero Oreochromis
ÁREA DE
PIGMENTACION
Cuerpo
O. niloticus
Verde metálico
O. aureus
Gris azulado
O.u. hornorum O.mossambicus
Negro
Macho maduro:
Acentuado en el
Ligeramente gris.
Macho
Gris oscuro
Cabeza
Verde metálico
Gris oscuro
Gris
Gris oscuro
Color de ojos
Cafés
Cafés
Negros
Negros
Región ventral
Gris plateado
Gris claro
Gris
Gris claro
Rosada
Blanca
Roja
Ligeramente roja
Roja
Ligeramente roja
Algunas veces
Manchas difusas
Rojizas.
Papila genital
Blanca
Blanca a brillante
claro
Borde aleta
Negra oscura
Fuertemente roja
o rojiza
dorsal
Porción terminal
Roja, bandas
Roja, bandas
aleta caudal
negras bien
difusas y
definidas y
punteadas
uniformes en
forma circular
Perfil dorsal
Convexo
Convexo
Cóncavo
Cóncavo
Labios
Negros
Labio inf. blanco
Gruesos negros
Negros
Se denominan como Tilapia, aquellos que construyen su nido en el
fondo y ovipositan en ellos y como un nuevo género, a Sarotherodon ,que
6
significa “con dientes de cepillo”, (Trewavas, 1982; citado por Pillay, 1995), a
aquellas especies que poseían una incubación de los huevecillos fecundados
en la boca de la madre o del padre. Posteriormente se constituye un nuevo
género Oreochromis para incluir a las especies que desovan en nidos
al
fondo de los cuerpos de agua pero que llegan a incubar los huevecillos en la
boca de la madre. El hábito alimenticio también influye en la clasificación;
mientras que las tilapias poseen dientes relativamente grandes y se alimentan
de macrofitas, y la especie de Oreochromis tienen dientes finos y se alimentan
de algas unicelulares filamentosas, estos hábitos alimenticios pueden ser muy
flexibles y no constituyen un carácter diagnóstico definitivo. A partir de estas
pequeñas diferencias se llegan a proponer otras dos clasificaciones, una de las
cuales posee cinco géneros: Tilapia, Sarotherodon, Oreochromis, Tristromella y
Danakilia, y la otra un solo género, Tilapia, con siete subgéneros: Heterotilapia,
Pelmatilapia, Sarotherodon, Oreochromis, Nyasalopia, Alcolopia y Neotilapia
(Fishelson & Yaron, 1983; citados por Pillay, 1995).
Pillay (1995) comenta que para la
Acuicultura comercial, se llega a
mencionar como las especies más importantes de Tilapia, a: T. rendalli, T.
zilli, T. mossambica, T. hornorum, T. nilotica, de las cuales la más aceptada
resulta ser la T. nilotica, la cual presenta las siguientes características:
*Ventajas :
1.
Alto porcentaje de crecimiento, crece mas rápido a talla máxima que
otras especies de la familia, supera fácilmente los 500 g.
2.
Logran tallas más grandes en la primera reproducción.
3.
Hábitos alimenticios variados.
4.
Fácil adaptabilidad al impacto del medio ambiente, con lineas
resistentes a aguas salobres y saladas.
5.
Crece y se reproduce a temperaturas por encima de 19° C.
6.
Permite inducciones sexuales hasta de 100 % de machos.
7.
Por su coloración y comportamiento no son fácilmente susceptibles
a la predación por aves.
*Desventajas :
7
1.
Se debe trabajar con lineas de alta pureza genética, para evitar la
enorme disparidad de tallas.
2.
Su
cosecha
no
es
muy
sencilla,
requiere
bastante
labor
hora/hombre.
3.
Una vez que se reproducen en los sitios de engorde, es muy difícil
erradicarla, y ocasiona fácilmente sobrepoblamiento.
4.
No responde, muy bien en medios ambientes salobres y marinos.
Así también tenemos las producciones para el año 1994 por especies, tal
como se puede apreciar en la Tabla 2.
Tabla 2. Producción mundial de diferentes especies de tilapia para 1994
ESPECIES
TONELADAS
MILES DE US$
51 870
111 220
O. niloticus
426 773
539 178
O. aureus
11 871
10 774
O. macrochir
350
420
O. andersonii
2 200
2 640
O. spp
105 185
169 662
TOTAL
598 294
833 894
O. mossambicus
Fuente: Wicki & Gromenida, 1997.
Una variedad que ha recibido particular atención a partir de los 80,
denominado tilapia roja, es un híbrido producto de dos o más especies de
tilapia, cuyo origen todavía no está bien documentado.
Esta nueva variedad ha
resultado ser una buena alternativa por
presentar una coloración de la mezcla del rosa, amarillo y dorada, siendo
preferida sobre el resto de las tilapias, llegándose a denominarla como “La
Gallina del agua”, por su exquisito sabor, fresco y agradable, con pocas
espinas y con mayor nivel de proteínas, que las carnes rojas.
Por estas y otras razones se tuvo mayor aceptación el cultivo de esta
variedad (Oreochromis spp.), llegando a registrarse solo en el valle del
Cauca, (Colombia) en 1993, 3 000 t de carne de pescado en su mayoría tilapia.
8
En 1994 el rendimiento fue de 5 000 t de las cuales el 85% era tilapia roja que
se exporto al mercado estadounidense.(Castillo, 2001)
A pesar de todas las cualidades de esta variedad de tilapia, su cultivo se
ha venido limitando, debido a
que es
necesario contar con líneas
genéticamente puras, para poder obtener los alevinos de tilapia roja, lo cual es
muy difícil de mantener.(Pillay, 1995)
Así, al no contar con los organismos puros genéticamente se
ocasionarían en los descendientes híbridos, enanismo y colores pocos
llamativos al consumidor.(Paz, 1995)
En los últimos años una nueva variedad mejorada de tilapia ha ido
llamando la atención, se trata de la tilapia roja(albina), el cual presenta una
coloración semejante a la híbrida (mezcla de rosado, anaranjada y roja), pero
que a diferencia de las anteriores estos pueden reproducirse normalmente y sin
mayores problemas. Actualmente no se cuenta con mucha información acerca
de su origen, solo se tiene referencia de que fue obtenido con tecnología
norteamericana
y que
mediante manipulación genética se obtuvo una
variedad que se desarrolla muy bien en cultivos intensivos y que resulta ser
mas atractiva sobre la variedad plateada, debido a:
-
Puede estar al nivel de especies de alta calidad por la coloración de
su piel y su carne blanca.
-
Su tecnología de cultivo está dominada, en comparación con la de
otras especies (huachinango, lenguado, etc) y es menos costosa.
-
Acepta fácilmente el alimento balanceado, es muy resistente al
manejo y a condiciones ambientales diversas.
-
Resulta ser mas rentable en ciertas ocasiones que la agricultura o la
ganadería.
La
tilapia
roja
posee
como
principal
mercado
emergente
el
Norteamericano (EE.UU.), debido a la gran campaña publicitaria que este país
ha extendido y que se refleja en el incremento de su consumo; es
muy
aceptado debido a que la tilapia roja por provenir de cultivo, presenta enormes
ventajas respecto al producto de captura, como es su disponibilidad durante
todo el año, tallas uniformes, mejor sabor y mayor frescura, (Alceste, 2000).
9
Un ejemplo de la aceptación de su cultivo, se da en 1993, en México,
donde se reportó una producción de 92 981 t de las cuales el 88% derivaron
de la acuicultura, colocándola en primer lugar sobre especies como el camarón,
ostión, bagre, trucha y carpa, (Alceste, 2000).
La demanda en los EE.UU. a partir de 1992, comenzó a incrementarse
debido a que comenzó a cultivarse en granjas en donde se mejoraría en el
control de calidad,
de tal manera que actualmente, para
el mercado
norteamericano, se clasifica en 3 categorías:
-
Categoría “A”; incluye tilapia cultivada que se alimenta de productos
balanceados de buena calidad, “purgándose” para el control del
sabor (sin alimentación y en agua limpia durante varios días),
procesada y embarcada bajo condiciones frías y sanitarias. El
producto puede ser fresco enhielado o congelado.
-
Categoría
“B”,
tilapia
de
cultivo,
alimentada
con
alimentos
suplementarios o balanceados, no purgados previo a su venta y
manejada bajo condiciones frías y sanitarias.
-
Categoría “C”, tilapia de captura silvestre, manejada adecuadamente
pero sujeta a la inconsistencia de la calidad del agua de los cuerpos
donde es cosechada.
De estas, la categoría “A” es la que encuentra un mejor mercado por ser
la de mejor calidad.
Los EE.UU. es un país consumidor, pero también es un productor, pero
en menor escala, así se reporta alrededor de 3 146 t entre captura y
acuicultura, que sumado a las 8 582 t que importa, implica un consumo de
aproximadamente de 11 728 t reportándose así un precio del filete (la libra) en
6 dólares en los puestos de venta, para 1998; llegándose a estimar para el año
2000, un consumo anual de 53 500 t, por lo que la tasa de crecimiento de la
demanda sería de un 45% anual. La demanda sería distribuido de la siguiente
manera, entera viva, o fresca 14 000 t entera congelada 14 500 t y filete fresco
o congelado 25 000 t (The Sea Fare Group, 1995; citado por Wicki &
Gromenida, 1997).
Así mismo para el mercado mexicano se estima para el mismo año un
consumo fluctuante entre 115 000 y 117 500 t lo que asegura el mercado para
10
la tilapia roja en los siguientes años y con tendencia a incrementarse, (Alceste,
2000).
1.1.1.3.
ESTADO DE LA ACUICULTURA DE LA TILAPIA
Después del arroz, los productos forestales, la leche y el trigo, los peces
son el quinto producto agrícola mas importante y el mayor recurso de proteína
animal disponible para los humanos, proveen el 25% de la proteína animal en
países desarrollados y más del 75% en los países en vías de desarrollo.
(Castillo, 2001).
Desde los años 70 la producción acuícola ha crecido substancialmente
contribuyendo enormemente a la seguridad alimentaria mundial, y de la cual la
tilapia es el segundo grupo más importante de peces en el ámbito mundial
después de las carpas chinas y la tercera mas importante mercadería
de
alimento marino importada dentro de los Estados Unidos después del camarón
marino y el salmón Atlántico, con una producción solo en acuicultura que ya
casi alcanza el 1 000 000 de toneladas métricas a partir del año 2000, lo cual
cobra importancia si consideramos que en 1989 la producción fue de 363 326
toneladas métricas, llegando hasta los 971 811 toneladas métricas en 1998 que
equivalen en dinero a US $ 1,2 billones de dólares, adicionalmente en lo
relacionado a las capturas los números también son llamativos alcanzando los
564 620 toneladas métricas en 1998, para en gran total de 150 000 toneladas
entre acuicultura y captura pesquera para 1998, (Alceste, 2000).
Las tilapias son el segundo grupo de peces más producidos por la
acuicultura mundial, con una contribución a la producción de aproximadamente
el 20% del volumen total de peces, incrementándose en más del 85%
exclusivamente entre 1984 y 1992 siendo la especie O. niloticus (Tilapia
nilótica) equivalente al 80% de la producción, seguida de los O. mossambicus
con el 5%, (Alceste, 2000).
Castillo (2001) menciona que solo a partir de 1992, las importaciones a
los E.U. de tilapia cobran el nivel de importancia suficiente para ser
considerada
ya
una
especie
con
categoría
independiente,
debido
especialmente a que la tilapia para este año desconcierta a sus detractores al
duplicar sus importaciones e incrementarse la producción interna (Tablas 3 al
12).
11
En 1994, el consumo de la tilapia en los E.U. llego a superar al de la
trucha por primera vez, demostrando así su potencial mercado.(Castillo, 2001)
En cuanto a la producción mundial de tilapia, en 1998 la China 525 926 t
fué el más grande productor, equivalente a más del 50% de la producción
mundial, seguida de Tailandia (102 120 t), Filipinas (72 022 t), Indonesia
(70 030 t), Egipto (52 755 t), Taiwán (36 126 t), Brasil (18 250 t), Colombia
(15 240 t), Malasia (12 625 t) y Estados Unidos (8 961 t). Otros países que
incrementaron notablemente su producción: Israel, Cuba, México, Costa Rica,
Honduras, Ecuador y Nigeria, ( figura 2).
La producción de tilapia en las Américas en el año 2000 fue de
260 462 t, presentando enorme crecimiento en los últimos años, los mayores
productores fueron: México (102 000 t), Brasil (45 000 t), Cuba (39 000 t),
Colombia (23 000 t), Ecuador (15 000 t), Costa Rica (10 000 t), USA (9 072 t),
Honduras (5 000 t) y el resto (12 420 t), se calcula que para el año 2010 la
producción ascienda 500 000 t y se duplique en el 2020 (Fitesimmons, 2001;
citado por Castillo, 2001).
Figura 2. Principales acuicultores de tilapia de 1998
180000
(En Toneladas)
160000
140000
120000
100000
80000
60000
40000
Otros paises
Costa rica
Mexico
Cuba
Israel
EE.UU.
Malasia
Colombia
Brasil
Taiwan
Egipto
Indonesia
Filipinas
Tailandia
0
China
20000
Fuente : FAO – FishStat Plus 2000; citado por PROMPEX, 2001
12
Tabla 3. Año 1992 Importaciones de tilapia a E. U.
PRODUCTO
FILETE FRESCO
PAIS
CANADA
CHILE
COLOMBIA
COSTA RICA
TOTAL
FILETE CONGELADO
CANADA
JAMAICA
INDONESIA
TAILANDIA
TAIWÁN
TOTAL
KILOGRAMOS
725
2 358
72 408
140 429
215 920
DOLARES
3 979
9 850
371 634
702 711
1 088 174
699
3 070
13 638
53 913
73 937
145 257
6 612
14 325
63 140
271 000
106 520
461 597
ENTERO CONGELADO JAPÓN
958
2 138
HONDURAS
1 430
5 115
COSTA RICA
10 110
45 287
JAMAICA
10 486
42 367
COLOMBIA
15 422
30 052
INDONESIA
25 039
34 832
TAILANDIA
37 473
45 755
SINGAPUR
64 326
107 943
TAIWÁN
2 862 313
4 162 705
TOTAL
3 027 557
4 476 194
TOTAL 1992
3 388 734
6 025 965
Fuente : U.S. Foreing Trade information, National Marine Fisheries Service, Office of
Science and Technology, Fisheries Stadistis and Economic Division; citado por Castillo, 2001.
13
PRODUCTO
PAIS
CHILE
MÉXICO
ECUADOR
HONDURAS
COLOMBIA
COSTA RICA
TOTAL
FILETE CONGELADO
JAPÓN
KENIA
MÉXICO
JAMAICA
TAILANDIA
TAIWÁN
INDONESIA
TOTAL
KILOGRAMOS
463
708
9 857
19 893
115 270
439 967
586 158
DOLARES
2 755
4 646
32 555
119 763
679 563
2 410 470
3 249 752
120
2 344
6 126
26 421
165 035
169 282
243 015
612 343
2 043
8 332
36 851
117 008
653 015
209 848
1 156 231
2 183 328
ENTERO CONGELADO JAPÓN
180
2 215
FILIPINAS
499
1 453
COLOMBIA
21 391
48 012
JAMAICA
24 750
104 469
SINGAPUR
35 619
55 158
TAILANDIA
54 081
83 706
CHINA
228 956
229 685
TAIWÁN
9 680 993
12 071 508
TOTAL
10 046 469
12 596 206
TOTAL 1993
11 244 970
18 029 286
Science and Technology, Fisheries Stadistis and Economic Division; citado por Castillo, 2001
14
PRODUCTO
FILETE FRESCO
PAIS
NICARAGUA
MÉXICO
ECUADOR
HONDURAS
COLOMBIA
COSTA RICA
KILOGRAMOS
1 321
19 385
34 246
34 755
86 762
713 945
890 414
DOLARES
6 497
120 355
121 668
211 853
445 350
3 910 503
4 816 226
JAPÓN
NICARAGUA
SINGAPURE
MÉXICO
HONDURAS
COSTA RICA
ECUADOR
KENIA
JAMAICA
TAILANDIA
INDONESIA
TAIWÁN
164
954
1 100
1 135
1 225
3 527
5 897
15 189
57 871
313 567
399 176
1 547 567
2 347 334
4 296
5 158
4 409
6 961
4 350
19 400
35 950
53 351
250 301
1 666 718
1 872 925
2 493 556
6 493 556
TOTAL
FILETE CONGELADO
TOTAL
ENTERO CONGELADO SUR COREA
4 904
15 997
COLOMBIA
5 130
24 156
INDONESIA
17 963
31 521
SINGAPURE
18 143
21 378
JAPÓN
38 102
40 258
TAILANDIA
107 039
121 615
CHINA
457 879
525 319
TAIWÁN
10 668 659
13 494 875
TOTAL
11 317 819
14 275 119
TOTAL 1994
14 555 567
25 584 901
15
PRODUCTO
FILETE FRESCO
PAIS
CANADA
MÉXICO
PANAMA
TANZANIA
CHINA
JAMAICA
NICARAGUA
CHILE
HONDURAS
ECUADOR
COLOMBIA
COSTA RICA
KILOGRAMOS
228
988
1 528
1 728
2 020
2 872
9 081
12 494
68 803
112 864
380 976
866 877
1 460 459
DOLARES
1 825
7 060
7 614
10 109
8 618
11 770
45 512
78 987
467 774
540 331
1 948 188
4 780 804
7 908 592
CANADA
NICARAGUA
JAMAICA
ZIMBABWE
CHINA
ECUADOR
TAILANDIA
INDONESIA
TAIWÁN
3 049
29 313
52 669
64 193
69 748
177 010
422 760
544 821
802 789
2 166 352
3 735
109 911
234 159
283 193
274 177
779 003
2 668 462
2 304 973
2 318 192
8 975 805
TOTAL
FILETE CONGELADO
TOTAL
ENTERO CONGELADO SURINAM
1 100
2 365
NICARAGUA
1 621
7 031
VIETNAM
10 929
8 092
BELICE
13 361
22 092
MÉXICO
13 597
9 888
JAMAICA
17 405
93 876
ECUADOR
22 862
33 386
CHINA
226 821
27 844
TAILANDIA
39 584
39 737
TAIWÁN
11 915 719
16 918 818
TOTAL
12 062 999
17 163 129
TOTAL 1995
15 689 810
34 047 526
16
PRODUCTO
FILETE FRESCO
PAIS
PANAMA
NICARAGUA
CHILE
MÉXICO
HONDURAS
JAMAICA
COLOMBIA
ECUADOR
COSTA RICA
TOTAL
FILETE CONGELADO
EL SALVADOR
FILIPINAS
HONDURAS
KENIA
ZIMBABWE
CHINA
BELICE
NICARAGUA
JAMAICA
ECUADOR
TAILANDIA
INDONESIA
TAIWÁN
TOTAL
KILOGRAMOS
1 200
3 245
5 737
6 617
127 932
162 202
224 645
450 700
1 063 232
2 063 232
DOLARES
4 902
14 097
32 086
30 631
839 513
1 032 453
1 275 894
2 536 686
5 887 587
11 653 849
226
4 763
8 818
13 254
14 000
16 103
19 685
24 572
74 296
114 160
222 201
578 683
606 810
1 697 571
1 375
20 970
7 365
60 306
60 228
82 760
29 668
53 949
312 291
519 692
1 385 391
2 684 248
2 250 119
7 468 362
ENTERO CONGELADO NICARAGUA
1 422
5 726
JAMAICA
9 655
54 083
MALASIA
10 200
16 743
ZIMBABWE
19 278
25 411
VIETNAM
46 368
66 687
TAILANDIA
61 823
103 109
HONDURAS
73 310
66 643
CHINA
105 455
183 774
BELICE
133 338
196 334
ECUADOR
395 245
604 997
TAIWAN
14 411 351
22 571 779
TOTAL
15 267 445
23 895 286
TOTAL 1996
19 028 248
43 017 497
17
PRODUCTO
FILETE FRESCO
PAIS
MÉXICO
BRASIL
COLOMBIA
TAIWÁN
CHILE
NICARAGUA
PANAMA
HONDURAS
JAMAICA
ECUADOR
COSTA RICA
KILOGRAMOS
1 223
1 251
5 566
8 442
20 186
20 277
61 451
163 713
283 684
601 782
1 655 607
2 823 182
DOLARES
8 723
3 627
30 175
31 842
177 481
109 994
282 574
825 914
1 955 901
2 816 162
7 820 259
13 997 652
SINGAPUR
HONDURAS
HOLANDA
CANADA
NICARAGUA
JAMAICA
ECUADOR
TAILANDIA
TAIWÁN
INDONESIA
4 130
6 647
15 860
26 255
78 847
97 202
108 148
224 170
842 119
1 095 470
2 498 848
20 408
35 754
80 420
55 894
300 606
413 907
529 228
1 431 339
3 089 406
5 326 863
11 283 805
TOTAL
FILETE CONGELADO
TOTAL
ENTERO CONGELADO SURINAM
810
1 823
JAMAICA
1 039
5 043
PANAMA
1 948
8 745
TAILANDIA
3 992
10 028
COSTA RICA
17 605
19 680
ZIMBABWE
19 278
27 160
SINGAPURE
22 728
33 656
HONDURAS
41 386
22 810
NICARAGUA
50 034
153 030
CHINA
51 529
64 274
BELICE
100 805
139 374
ECUADOR
170 823
214 902
TAIWÁN
18 640 354
23 452 978
TOTAL
19 122 331
24 183 503
TOTAL 1997
24 444 361
49 469 960
18
PRODUCTO
FILETE FRESCO
PAIS
MÉXICO
CHILE
PANAMA
NICARAGUA
INDIA
TAIWÁN
JAMAICA
HONDURAS
ECUADOR
COSTA RICA
KILOGRAMOS
1 057
1 868
3 845
6 587
21 760
84 863
181 984
435 597
645 851
2 206 290
3 589 702
DOLARES
6 626
9 822
18 179
40 398
34 778
449 110
1 212 093
2 501 822
2 512 811
10 265 503
17 051 142
FILIPINAS
NICARAGUA
CANADA
CHINA
HONDURAS
ECUADOR
JAMAICA
TAILANDIA
INDONESIA
TAIWAN
18 457
21 914
34 836
38 102
46 525
79 752
99 268
137 669
885 296
1 334 407
2 696 226
21 705
94 786
156 149
217 510
259 439
274 212
356 876
873 409
4 258 091
5 447 635
11 959 812
TOTAL
FILETE CONGELADO
TOTAL
ENTERO CONGELADO NICARAGUA
318
1 875
COSTA RICA
3 362
5 579
MALASIA
9 645
9 548
HONDURAS
24 058
132 566
ECUADOR
31 245
90 716
TAILANDIA
35 235
48 489
CHINA
435 259
437 364
TAIWÁN
20 995 322
20 995 322
TOTAL
21 534 444
21 721 459
TOTAL 1998
27 820 372
50 732 413
19
PRODUCTO
FILETE FRESCO
PAIS
ARGENTINA
MÉXICO
UGANDA
SUDÁFRICA
COLOMBIA
NICARAGUA
CHILE
PANAMA
CHINA
TAIWÁN
JAMAICA
HONDURAS
ECUADOR
COSTA RICA
KILOGRAMOS
490
863
2 372
2 500
3 029
11 591
12 695
20 116
38 052
154 761
175 601
771 497
1 805 993
2 310 143
5 309 703
DOLARES
4 200
4 871
19 508
11 831
44 061
8 788
57 639
186 590
124 331
272 007
552 560
3 026 096
5 551 407
12 324 971
25 841 254
PANAMA
VIETNAM
NICARAGUA
MÉXICO
CANADA
VENEZUELA
HONDURAS
JAMAICA
INDIA
ECUADOR
TAILANDIA
CHINA
INDONESIA
TAIWÁN
362
1 102
5 316
6 418
7 577
10 841
20 070
47 674
49 061
56 179
114 923
749 389
1 146 133
2 756 133
4 971 376
4 200
4 871
19 508
11 831
44 061
8 788
57 639
186 590
124 331
272 007
552 560
3 026 096
5 551 407
12 324 971
22 188 860
TOTAL
FILETE CONGELADO
TOTAL
ENTERO CONGELADO COREA DEL SUR
708
2 165
CAMBORIA
1 620
4 860
VIETNAM
19 260
17 294
TAILANDIA
47 252
60 047
FILIPINAS
79 833
92 871
ECUADOR
149 375
538 637
CHINA
4 940 295
6 342 190
TAIWÁN
22 055 115
26 808 791
TOTAL
27 293 458
33 866 855
TOTAL 1999
37 574 537
81 896 969
20
PRODUCTO
FILETE FRESCO
PAIS
ISLAS CAIMAN
SURINAM
BRASIL
CHILE
COLOMBIA
CHINA
TAIWÁN
PANAMA
JAMAICA
HONDURAS
COSTA RICA
ECUADOR
TOTAL
FILETE CONGELADO
NICARAGUA
CANADA
VIETNAM
JAPÓN
JAMAICA
ECUADOR
TAILANDIA
INDONESIA
TAIWÁN
CHINA
TOTAL
KILOGRAMOS
327
1 593
1 765
16 857
29 404
59 420
82 473
159 282
176 548
1 037 770
2 683 888
3 252 514
7 501 841
DOLARES
7488
5 082
10 519
102 679
154 578
287 410
325 537
1 026 565
1 205 593
5 914 932
13 583 112
21 831 348
44 454 843
417
17 339
18 281
21 156
21 165
170 448
178 487
1 217 944
1 730 147
1 810 421
5 185 905
2 200
132 225
88 617
135 520
86 559
849 799
858 058
6 183 550
7 794 830
7 090 948
23 222 306
ENTERO CONGELADO CAMBODIA
810
2 511
PANAMA
1 814
10 752
INDONESIA
2 592
7 349
HONDURAS
8 400
41 303
TAILANDIA
19 575
30 759
ECUADOR
24 233
120 703
HONG KONG
52 214
50 786
VIETNAM
61 361
119 747
FILIPINAS
71 907
91 663
CHINA
11 621 911
13 654 567
TAIWÁN
15 916 465
19 570 564
TOTAL
27 781 272
33 700 704
TOTAL 2000
40 469 018
101 377 853
21
Tabla 12. Año 2001 Importaciones de tilapia a E. U.(medio año)
PRODUCTO
FILETE FRESCO
PAIS
TAILANDIA
NICARAGUA
CHILE
TAIWÁN
COLOMBIA
JAMAICA
CHINA
PANAMA
HONDURAS
COSTA RICA
ECUADOR
KILOGRAMOS
590
3 846
12 346
27 585
32 217
91 601
123 053
176 012
664 479
1 937 087
3 097 350
6 166 166
DOLARES
3 380
20 937
65 235
58 265
187 973
647 396
429 991
1 079 560
3 990 221
9 622 112
20 157 615
36 262 685
NICARAGUA
CANADA
BRASIL
NUEVA
ZELANDIA
COREA DEL
SUR
JAMAICA
VIETNAM
ECUADOR
TAILANDIA
TAIWÁN
CHINA
INDONESIA
4 971
7 241
8 027
19 844
24 272
54 554
27 896
170 927
19 958
21 534
20 713
41 611
87 680
89 557
1 097 634
1 112 396
1 142 041
3 651 673
88 589
161 974
396 785
381 761
3 627 085
4 186 230
5 638 331
14 779 938
TOTAL
FILETE CONGELADO
TOTAL
ENTERO CONGELADO
VIETNAM
PANAMA
MALASIA
TAILANDIA
INDONESIA
FILIPINAS
ECUADOR
CHINA
TAIWÁN
423
2 585
2 379
6 080
17 298
22 632
32 234
56 756
38 899
70 350
50 802
54 448
78 456
178 589
5 698 350
5 671 484
13 432 509
13 179 933
TOTAL
19 351 350
19 242 857
TOTAL 2001
29 169 189
70 285 480
22
Y entre las importaciones a los Estados Unidos en el 2000 según el tipo
de producto tenemos a Ecuador como el primer importador de filete refrigerado
desde el año 2000 con 3 252 514 Kilos. En cuanto a filete congelado tenemos a
China con 1 810 421 Kilos y finalmente tenemos a Taiwán con 15 916 465 Kilos
de entero congelado (Castillo, 2001).
1.1.1.4.
TAXONOMIA
Clasificación Taxonómica de la tilapia plateada:
REYNO
:
Animalia
PHYLUM
:
Vertebrata
SUBPHYLUM
:
Craneata
SUPERCLASE
:
Gnathostomata
SERIE
:
Piscis
CLASE
:
Teleostomi
SUBCLASE
:
Actinopterygui
ORDEN
:
Perciformes
SUBORDEN
:
Percoidei
FAMILIA
:
Cichlidae
GENERO
:
Oreochromis
ESPECIE
:
Oreochromis niloticus, (Linnaeus 1758).
.
1.1.1.5.
MORFOLOGÍA EXTERNA
La familia Cichlidae se caracteriza por presentar especies de coloración
muy atractiva, principalmente las nativas de África, América Central y la parte
Tropical de Sudamérica, (Boceck, 1996)
Los miembros de la familia Cichlidae se diferencian de los Mojarras
(Centrarchidae) y de las Percas por presentar un solo orificio a cada lado de la
cabeza, y que sirve simultáneamente como entrada y salida de la cavidad
nasal, (Bocek, 1996)
La tilapia nilótica presenta un color en general cenizo azulado(Gris),
siendo el macho de un color mas claro al de la hembra, diferenciándose de
estas la tilapia roja, la cual presenta un tono rosado a rojo, pudiendo variar en
partes del cuerpo en ciertos casos, (Bocek, 1996).
23
En O. niloticus, tilapia plateada, presenta en la aleta caudal franjas
negras delgadas y verticales. El margen superior de la aleta dorsal es negra o
gris (oscura). En machos, durante la reproducción, la superficie del cuerpo y las
aletas anal, dorsal y pélvicas son negras, y la cabeza y el cuerpo tiene
manchas negras (tenues).
El cuerpo generalmente es comprimido, corto, a menudo discoidal, y en
ciertos casos alargada. Las tilapias según sea la especie tienen un número
variable de branquiespinas; en el caso de la tilapia nilótica presenta de 20 a 26
y se distingue fácilmente por que su aleta caudal tiene rayas verticales, la
tilapia rendalli y la tilapia zilli, poseen de 8 a 12 en el primer arco branquial, son
herbívoros y macrofitófagos y la
tilapia mossambica posee de 14 a 20
branquiespinas.
La cabeza y la cola en si son pequeñas pero el macho posee la cabeza
mas grande que el de la hembra, algunas veces según la edad y crecimiento el
macho presenta tejidos grasos en la región anterior y dorsal de la cabeza
(dimorfismo sexual), (Velarde, 1986).
La boca es ancha y protráctil, a menudo bordeado por labios gruesos. La
mandíbula presenta pequeñísimos dientes cónicos y en algunas ocasiones
incisivos, que le sirven para alimentarse de plantas. Pueden o no presentar un
puente carnoso(conocido como freno), que se encuentra en el maxilar inferior,
en la parte media debajo del labio. Pueden o no presentar membranas unidas
por 5 a 6 branquiestegos y un número de branquiespinas, (Velarde, 1986).
La parte anterior de las aletas dorsal y anal es siempre corta y consta de
una espina y de radios suaves en su parte terminal, que en los machos suelen
estar fuertemente pigmentados y las aletas ventrales presentan de 1 a 2
espinas y 5 radios, (Velarde, 1986).
La aleta caudal es pequeña, redondeada y trunca, además se observa la
línea lateral en estos cíclidos interrumpida y presentándose generalmente
dividido en dos partes: la superior que se extiende desde el opérculo hasta los
últimos radios de la aleta dorsal y la inferior se inicia por debajo de donde
termina la línea lateral superior hasta el final de la aleta caudal, (Figura 3).
En los peces de la variedad de tilapia roja se han encontrado en
animales de 82 g y 300 g el siguiente conteo de espinas y radios, (Tabla 13).
24
Figura 3. Morfología externa de las tilapias
1
6
11
10
7
5
9
8
2
3
4
1. Aleta dorsal
7. Línea lateral inferior
2. Aleta caudal
8. Opérculos
3. Aleta anal
9. Boca
4. Aletas ventrales
10. Orificio nasal
5. Aletas pectorales
11. Ojos
6. Línea lateral superior
25
Tabla 13. Conteo de espinas y radios en tilapia roja
ALETAS
ESPINAS
RADIOS
15 o 16
XI a XII
Aleta Anal
3
X
Aleta Ventral
1
V
Aleta Pectoral
9 a 12
Branquiespinas
Aleta Dorsal
Aleta Caudal
14 a 16
Fuente : El Autor
Las tilapias poseen escamas del tipo ctenoides, el número de las
vértebras aumenta según la edad y pueden ser de 26 a 30. (Bocek, 1996)
En la mayoría de Tilapias, los machos tienen mayor crecimiento que las
hembras, aun cuando se cultiven por separado (Hickling, 1968; Pruginin, 1968;
Sell, 1968; citados por Hepher & Pruginin, 1991).
Mabaye (1971) & Fryer Elces (1972; citados por Hepher y Pruginin,
1991,) confirman este hecho en varias especies y atribuyen estas
características a causas genéticas.
La tilapia posee una gran habilidad para colonizar lagos y otros cuerpos
de agua, aún en presencia de depredadores y de una fuerte competencia. Esta
adaptación evolutiva puede ser atribuida a una característica morfológica de
máxima versatilidad, el complejo mandibular - faringeo.
Esta especialización altamente integrada es inherente a los cíclidos y no
solo sirve para la deglución y preparación del alimento, sino que además, se
han involucrado numerosas especializaciones hacia la colecta de diferentes
tipos de alimentos. Esto ha dado una ventaja evolutiva sobre otras familias de
peces (Liem, 1974; citado por Arredondo & cols.,1994).
Hepher & Pruginin (1982) mencionan que la tilapia del Nilo, es un pez de
climas cálidos (Tropicales), siendo una especie muy resistente por su
capacidad para soportar medios muy adversos en su cultivo lo que ha permitido
desarrollar su cultivo en aguas con abundante materia orgánica (aguas
residuales tratadas) con buenos resultados.
26
1.1.1.6.
MORFOLOGÍA INTERNA
El sistema digestivo de la tilapia se inicia en la boca, que presenta en su
interior dientes mandibulares ( pueden ser unicúspides, bicúspides y tricúspides
según las diferentes especies) y continúa con el esófago y el estómago. El
intestino es en forma de tubo que se adelgaza después del píloro
diferenciándose en dos partes: una anterior corta, que corresponde al duodeno,
y una posterior más larga aunque de menor diámetro.
El intestino es siete veces más largo que la longitud total del cuerpo,
característica que predomina en las especies herbívoras. Presenta dos
glándulas importantes asociadas con el tracto digestivo: el hígado, que es un
órgano grande y de estructura alargada y el páncreas, en forma de pequeños
fragmentos redondos y difícil de observar por estar incluidos en la grasa que
rodea a los ciegos pilóricos.
El sistema circulatorio está impulsado por un corazón generalmente
bilobular y de forma redonda, compuesto por tejido muscular y localizado casi
en la base de la garganta. La respiración es branquial, estando estas
estructuras constituidas por laminillas delgadas alojadas en la cavidad
opercular.
Posee una vejiga natatoria que se localiza inmediatamente bajo la
columna dorsal y que tiene forma de bolsa alargada, la cual funciona como un
órgano hidrostático que ayuda al pez para flotar a diferentes profundidades.
El sistema excretor está constituido por un riñón en forma ovoide que
presenta un solo glomérulo; unos uréteres secretan en la vejiga y ésta
descarga a su vez en la cloaca.
El aparato reproductor está constituido por un par de gónadas que en las
hembras son ovarios de forma tubular alargada de diámetro variable. En los
machos los testículos también son pares y tienen el aspecto de pequeños
sacos de forma alargada, (Arredondo & cols., 1994)
1.1.1.7.
a.
DESARROLLO EMBRIONARIO Y CRECIMIENTO
Desarrollo Embrionario
La penetración del espermatozoide en el óvulo es llamada Impregnación,
presentándose una reacción cortical para evitar la entrada de otro
27
espermatozoide. El huevo pasa a través de un proceso de dilatación para
posteriormente formarse dos partes de la masa central, que se distingue por su
forma y color. El polo animal se alza como un pequeño glóbulo sobre la masa
vitelina y adquiere una coloración amarillo oscuro; tras un breve intervalo cuya
duración depende de la temperatura del agua, comienza la segmentación del
polo animal, dividiéndose sucesivamente en dos, cuatro, ocho, dieciséis y
treinta y dos células respectivamente. En esta fase el embrión presenta el
aspecto de “mora”, conociendo por lo tanto este estado como Mórula; en esta
etapa el embrión es muy sensible a las sacudidas y las células pueden
desprenderse de su superficie causando su muerte. Más tarde, aparece un
espacio entre el vitelo y la masa celular, denominándose a ésta la etapa de
Blástula. A medida que avanza la división celular las células comienzan a
envolver el vitelo hasta rodearlo completamente dejando en el extremo una
abertura llamada Blastoporo, que más tarde se cierra, (Arredondo & cols.,
1994).
La masa celular adquiere mayor espesor y se dispone en forma de
diadema en el lado opuesto del Blastoporo, apareciendo simultáneamente los
brotes correspondientes a la cabeza y a la cola.
En la cabeza se desarrollan los ojos y el brote de la cola empieza a
crecer longitudinalmente. A mitad del proceso de desarrollo se forma el corazón
y empieza a latir; simultáneamente se forma un sistema capilar en la superficie
de la masa vitelina.
El embrión empieza a agitar la cola ocasionalmente y más tarde agita
todo el cuerpo; posteriormente comienza también a girar dentro del espacio
peri - vitelino, movimientos que se hacen más enérgicos poco antes de la
eclosión. Los metabolitos del embrión contienen algunas enzimas que actúan
sobre la membrana del huevo y la disuelven desde adentro, permitiendo al
embrión romperla fácilmente y salir (Morales & cols., 1988; citado por
Arredondo & cols., 1994).
b.
Crecimiento.
Klinge & cols. (2000) mencionan que el crecimiento de las tilapías es
isométrico en todas las etapas de su desarrollo a partir del alevín y depende de
varios factores como la Temperatura, densidad de individuos en el ambiente y
principalmente el tipo de alimento disponible (Figura 4)
28
Figura 4. Curva patrón de crecimiento para tilapia
Masa
FUENTE : Edelberto Fernández ACUBANA - CUBA
29
1.1.1.8.
ETAPA DEL DESARROLLO
El ciclo biológico tiene su inicio a partir del apareamiento de los
reproductores en donde la hembra deposita los huevos en el nido que el macho
ha construido con su boca, recogiendo la arena
alrededor, luego el macho fecunda los
del centro y colocándolo
huevos arrojando el esperma por
encima de estos, luego de éste proceso la hembra toma los huevecillos en su
boca, donde quedan adheridos en su mucosa bucal para ser incubados. El
tamaño de estos huevos varía entre 2 mm y 4 mm, así como el número,
dependen del tamaño de la hembra (peso). (Tabla 14)
Tabla 14. Talla y peso aproximado en diferentes estadios de desarrollo de la
tilapia
ESTADIO
TALLA(cm)
MASA(g)
TIEMPO EN DIAS
Huevo
0,2 – 0,3
0,01
3-5
Alevin
0,7 – 1,0
0,10 – 0,12
10 - 15
Cria
3–5
0,5 – 4,7
15 - 30
Juvenil
7 – 12
10 - 50
45 - 60
Adulto
10 – 18
70 - 100
70 - 90
Fuente : Arredondo & cols., 1994
a.
Huevos
Generalmente son de color amarillo claro, no translúcido, de un diámetro
de aproximadamente 2 mm a 3 mm de forma ovoide; normalmente dura de 3 a
5 días dependiendo de la temperatura, hasta la eclosión, (Incubación bucal).
b.
Alevín
Se llama así al pez recién salido del huevo y que aún conserva el saco
vitelino, el cual es la fuente de alimentación del pez durante varios días.
Este estadio dura aproximadamente de 10 dias a 15 días, en los que la
hembra protege a los alevines de 5 dias a 8 días, durante los cuales estos
entran y salen con frecuencia, teniendo una talla entre 0,7 cm a 1,4 cm
(Castillo, 1994; citado por Klinge & cols., 2000).
30
c.
Cría
Se denomina así al pez cuando absorbió por completo el saco vitelino y
comienza alimentarse por sí mismo.
Estado que sigue al alevinaje en donde el pez alcanza una talla de 3 cm
a 5 cm la cual se logra dentro de un período de 15 dias a 30 días. (Castillo,
1994; citado por Klinge & cols., 2000).
d.
Juvenil
Este estadío tiene una duración aproximada de 45 días a 60 días, en
donde alcanza una talla de 7 cm a 12 cm. En cuanto a las exigencias
alimenticias estos se semejan a los del adulto.
e.
Adulto
Este estadío se alcanza a partir de los 10 cm a 18 cm de longitud y
pesos entre 70 g y 100 g, características que se obtienen a los tres meses y
medio de edad. (Arredondo, 1994). Los ejemplares adultos pueden llegar a
alcanzar de 1kg a 3 kg de peso vivo. Siendo el peso mínimo de siembra en
machos de 150 g y 100 g para el caso de las hembras, (Castillo, 1994; citado
por Klinge & cols., 2000).
En general el pez alcanza la madurez sexual y presenta
todas las
características distintivas de su especie
1.1.1.9.
MADUREZ SEXUAL
La tilapia posee un tipo de reproducción dioica; es decir, los óvulos y
espermatozoides se desarrollan en individuos separados, existiendo por lo
tanto machos y hembras.(Figuras 5, 6 y 7)
La diferenciación de las gónadas en la tilapia ocurre en etapas
tempranas, entre los 16 y 20 días de edad, (tomando como referencia el primer
día en que dejó de ser alevín). Desarrollando las gónadas femeninas de 7 a 10
días antes que las masculinas.
Las tilapias alcanzan su madurez sexual a partir de los 3 a 4 meses en
machos. La frecuencia de desoves varía considerablemente dependiendo de
los factores ambientales, pudiendo ser desde 5 a 8 al año. Estos desoves
tienen por rango de temperatura ideal la de 24°C a 34°C .
Se reproducen en
31
Figura 5. Diferenciación del sexo en hembra de tilapia
ANO
OVIDUCTO
URETRA
PAPILA GENITAL
Figura 6. Diferenciación del sexo en el macho de tilapia
URETRA
ANO
PAPILA GENITAL
32
Figura 7. Proceso de reproducción en tilapias
Fuente : El autor
1. El macho construye el nido con su boca
2. El macho corteja (roces) y atrae a la hembra hacia el nido
3. La hembra deposita los huevos, que serán fertilizados por
el semen del macho
4. La hembra recoge los huevos fertilizados y los mantiene en
la boca
5. La hembra mantiene los huevos en la boca, con bastante
oxigenación
6. Después de un tiempo los huevos eclosionan y salen las
larvas al exterior
33
todo tipo de agua disminuyendo su capacidad reproductiva en aguas con
salinidad. El número de huevos varía de 200 a 2 500, siendo el máximo
alcanzado a los dos años de edad. Estos huevos son de tipo bentónico,
asociado inicialmente al fondo, son de coloración amarilla si están fertilizados
mientras que los no viables presentan un color blanco.
La construcción de los nidos es opcional; en un estanque de tierra el
macho puede construir un nido en forma de batea mientras que en un estanque
de concreto limpia el área del nido, (Castillo, 1994, citado por Klinge & cols.,
2000).
1.1.1.10. HABITOS ALIMENTICIOS
La tilapia del Nilo es una especie que se alimenta durante toda su vida
de Plancton (plantas y animales microscópicos que flotan en el agua).
También suele consumir huevos, larvas, gusanos y ciertos peces
pequeños (alevines), por lo cual es denominada como omnívora, por lo que en
muchos países es utilizada para limpiar estanques de insectos dañinos y otras
plagas.
Las tilapias son capaces de ingerir una amplia variedad de alimentos de
origen natural, entre los cuales figuran el plancton, hojas verdes, organismos
bentónicos, desperdicios domésticos (no todas las especies), torta de soya,
semillas, frutas fraccionadas, invertebrados acuáticos, bacterias y tejidos no
digeridos en el abono adicionado al estanque, larvas de peces, detritus y
materia
orgánica
en
descomposición.
En
estanques
con
una
carga
considerable de alimento complementario, la producción natural aporta de un
30% a 50% del crecimiento de la tilapia. El término filtrador para éstos peces
está mal empleado ya que lo que en realidad sucede es que éstos peces
extraen del medio acuático el fitoplancton y zooplancton adhiriéndolo en la
mucosa que rodea las agallas, formando un bolo de alimento el cual cuando
posee un determinado tamaño, es ingerido por el pez, (Klinge & cols., 2000)
Puede llegar a aceptar otros tipos de alimentos de origen natural como el
polvillo de arroz, harina de soya, trigo, maíz, plantas acuáticas como la Lemna
y en general todo resto de productos naturales; así como también acepta sin
problemas los alimentos artificiales o balanceados.
34
La tilapia tiene la facultad de obtener substanciales beneficios del
alimento natural que pueda ingerir durante su alimentación debido
a dos
mecanismos: Dientes del complejo mandibular faríngeo que trituran los tejidos
vegetales y el bajo pH que es capaz de romper las paredes celulares de las
algas verde-azules. Asimismo, es capaz de aprovechar las proteínas (no
utilizadas) eliminadas en las heces de otros animales. Todos éstos procesos se
llevan a cabo en el tracto digestivo que tiene mas o menos unas 6 veces la
longitud del pez, (Auburn University, 1996; citado por Klinge & cols., 2000).
La alimentación cesa apartir de los 16°C ó 17°C. Temperaturas menores
a los 10°C son letales, aunque hay especies como la O. aureus que es
tolerante a los 8°C ó 9°C. Temperaturas entre los 37°C y 38°C o más causa
problema de estrés y mortalidad, aunque se han reportado tolerancias hasta los
40°C. (Auburn University, 1996). Cabe mencionar que se han reportado un
máximo letal de 42°C, (Arredondo, 1994; citado por Klinge & cols., 2000).
En la producción comercial de peces, la alimentación tiene una prioridad
de mucha importancia para el crecimiento y desarrollo de los peces y para la
producción y productividad del estanque, por lo que se recomienda el alimento
natural, que puede ser producido sin mucho costo, además de aportar una muy
buena cantidad de proteínas, vitaminas y otros factores de crecimiento, los
cuales se encuentran en menor proporción en los alimentos complementarios
simples, los cuales incrementan además los costos de producción.
Para favorecer la producción de alimento natural (algas), es utilizado en
la actualidad diferentes compuestos y métodos como el abonamiento de los
estanques de cultivo; así según Edwards (1980; citado por Viteri, 1985), el
abonamiento constituye una forma de reciclaje de los desechos orgánicos
dentro de los estanques piscícolas.
Entre los desperdicios usados para fertilizar estanques tenemos: los
excrementos de cerdos, patos, ganado vacuno, etc. entre otros, los cuales han
sido utilizados en países asiáticos, Europa Central, Israel y los Estados Unidos.
El uso de materia orgánica como fertilizante en los estanques de cultivo
puede ser aplicado en diferentes formas: como compost, como estiércol líquido
y como estiércol fresco no tratado; lográndose así al final altas producciones.
Actualmente también es posible utilizar la materia orgánica proveniente
de las aguas residuales domésticas, previamente tratadas; aprovechándose
35
tanto el agua que muchas veces hace falta en zonas desérticas, como la
materia orgánica, la cual es degradada y transformada por acción de las
bacterias en compuestos más simples y nutritivos, que son aprovechados por
las microalgas, llegándose a producir una buena cantidad de alimento natural,
a la vez que van a oxigenar los estanques de cultivo, lo que es aprovechado
por los peces disminuyendo así los costos de producción; las aguas residuales
normalmente irían a parar a los ríos y costas marinas contaminándolas y
perjudicando la salud de la población costeña. Todo esto es posible siguiendo
las normas de sanidad y calidad establecidas por la Organización Mundial de la
Salud, la cual avala estos sistemas de reutilización y cuidado del medio
ambiente, (Ludwoig, 1989).
1.1.1.11. RENDIMIENTO Y COMPOSICIÓN PROTEICA DE LA TILAPIA
a.
RENDIMIENTO
Hoy en día se tiene conocimiento por experiencia, que para la mayor
obtención de filete, se deben cultivar los animales hasta pesos mayores a los
800 g.
Así Popma & Lovshin (1994); Isla Pe, (1997); citados por Wicki &
Gromenida (1997), reportaban una pérdida del 12% para el eviscerado con
cabeza , y la obtención de 33 a 40% de filete.
Otros autores atribuyen a determinadas especies y variedades como los
de mayor producción de filetes (40 - 44%).
Un trabajo realizado en la Unidad de Acuicultura de San Juan, permitió
obtener 33% de filete sin piel, a partir de animales con pesos superiores a los
1000 g. y con un fileteado realizado a mano.
En el Norte del País, los langostineros reportan un 31 % de obtención de
filete sin piel para exportación a los E.U.
b.
VALOR NUTRICIONAL
No existe, o por lo menos no se ha publicado en el país, un análisis
proteico en la tilapia y solo, se tiene información externa.
Así Balarín (1978), da a conocer en 12% de proteína cruda, 2,6 %
cenizas, 5,6 % grasas y 80,6 % de humedad ( en % de pescado entero)
36
Castillo (1994; citado por Wicki & Gromenida, 1997), menciona un 19,6 g
de Proteina, 172 calorías y 1,29 g de Lípidos (para 100 g de carne).
Un artículo publicado en internet por la Asociación Americana de tilapia,
menciona los siguientes valores en base a una muestra de 113 g de pescado
(tilapia)
___________________________________
Calorías
93
Calorías-grasa
9
Total grasas
1g
Grasa saturada
0,5g
Colesterol
55 mg.
Sodio
40 mg.
Proteína
21g
___________________________________
Así mismo Castillo (2001), ampliaría los valores nutricionales.
Talla servida : 100g (de carne)
___________________________________
Calorías
79,3 a 85
Calorías grasa
9
Grasas total
1 a 1,5 g
Colesterol
50 mg.
Sodio
35 mg
Potasio
0 mg.
Proteína
18 g
Omega - 3
0,3
___________________________________
Fuente : Sea Food international (2000; citado por Castillo, 2001)
2.1.2
LA TILAPIA ROJA
2.1.2.1.
CARACTERÍSTICAS BIOLÓGICAS
Dentro del genero Oreochromis, en forma intempestiva aparece la
tilapia roja como una mutación albina en un cultivo artesanal de tilapia O.
mossambicus de coloración normal (negra) cerca de la población de Tainan
(Taiwán) en 1968 (Castillo, 1994; citado por Klinge & cols., 2000). La tilapia
roja, se convirtió en la punta de lanza
para el desarrollo acelerado de la
37
piscicultura comercial a partir de la década de los 80 en países sudamericanos
sin tradición acuícola como Colombia (introducida en 1982), Venezuela
(introducida en 1989) y Ecuador (introducida en 1993) en forma casi simultánea
con países centroamericanos, caribeños y norteamericanos.
Las tilapias rojas por ser líneas de naturaleza híbrida obtenidos en
confinamiento, prefieren aguas estancadas o inactivas
(cuerpos de agua
lénticos, lagos, lagunas, reservorios, embalses y estanques) y encuentran
buenos escondites en la márgenes de los pantanos bajo el ramaje, entre la
piedras y raíces de las plantas acuáticas, esto se debe a su tolerancia a bajar
concentraciones de oxígeno disuelto.
El rango óptimo para su reproducción esta entre los 24°C y 32°C,
mientras que por debajo de los 24°C se torna lento el crecimiento en la mayoría
de las
líneas híbrido, por otro lado por debajo y por encima de las
temperaturas óptimas son altamente susceptibles a las infecciones.
Se les considera a las líneas de tilapia roja altamente resistentes a los
diferentes salinidades (eurihalinas), con muy buenos resultados tanto en cultivo
de agua dulce como de agua salada, basado en la
alta tolerancia de las
especies parentales, (Castillo, 1994; citado por Klinge & cols., 2000).
La atractiva coloración roja fue muy importante porque permitía,
relacionarla con otras especies como el Pargo Rojo, este mismo estimula a los
productores e investigadores a iniciar un acelerado e incontrolado programa de
hibridación que permitió la obtención de nueves líneas (Strain) de tilapia roja,
las más populares y que posteriormente fueron introducidos a diferente países.
La tilapia roja en comparación a la tilapia plateada (Figura 8 y 9), es un
pez que taxonómicamente no responde a un nombre científico, es el producto
del cruce de cuatro especies de tilapia: tres de ellas de origen africano y una
cuarta israelita, el cruce selectivo permitió la obtención de un pez cuya
coloración fenotípica puede ir desde el rojo hasta el albino, pasando por el
animal con manchas negras o completamente negro, (Espejo, 2001)
Las tilapias rojas son descritas a menudo como un cruce entre 2, 3 o 4
especies (Figura 10), pero en realidad su historia de entrecruzamiento es
mucho más complicada por lo que obliga a sus usuarios a darles nombres por
códigos.. Cabe recalcar ciertas ventajas del híbrido rojo adquiridas a partir de la
heterogeneidad genética, como lo son: Aumento en la porción de carne
38
Figura 8. TILAPIA ROJA (Oreochromis spp.)
Figura 9. TILAPIA PLATEADA (Oreochromis niloticus)
39
fileteable, reducción de porciones cefálicas, visceral, caudal, ausencia o
disminución de espinas Inter-intramusculares, sabor fresco (off - flavor), sin
olor, fácil reproducción, mesenterio sin coloración, aumento en la eficiencia de
conversión alimenticia, alta resistencia a enfermedades, fácil adaptabilidad a
diferentes condiciones de cultivo semi – intensivo y superintensivo, tolerancia a
diversas durezas y salinidades, (Castillo, 1994; citado por Klinge & cols., 2000).
Castillo (2001), aclara que en una publicación suya en 1989, cometió un
ligero error, ya que aseveraba que la tilapia roja era un TETRAHÍBRIDO, lo
cuál necesariamente no es cierto, tal como se puede apreciar con el origen
híbrido de las lineas anteriores, son muy contados en el mundo las líneas de
tilapia roja que realmente pueden ser considerados verdaderos híbridos.
La tilapia roja no puede ser enmarcado dentro de las grandes bondades
de cultivo que relativamente tienen otras tilapias que son cultivadas
comercialmente en el mundo.(Tabla 15)
Tabla 15. Características de las variedades de tilapia
TILAPIAS
1.Fácil adaptabilidad
TILAPIA ROJA
todo tipo de
ambientes.
como por ej. Temperaturas(24 a 30° C).
2.Tecnología sencilla para su manejo y
rusticidad.
2.Requiere de un paquete tecnológico depurado.
3.Requiere un completo programa de selección
3.Poca exigencia genética.
genética.
4.Mimetismo natural contra predadores.
5.Acepta todo tipo de alimentos, desde
productividad
1.Requieren condiciones especiales del medio,
natural
hasta
alimentación suplementaria.
6.Responde en altas densidades de
siembra.
7.Su adaptabilidad a la salinidad es
variable.
8.En líneas puras se obtiene 100 % de
machos
9.Alta resistencia a enfermedades
4.Su
coloración
y
comportamiento
lo
hace
altamente susceptible a la predación.(figura 11)
5.Su
condición
genética
y
exigencia
en
rendimientos(crecimiento, carne) obliga a su
alimentación con balanceados comerciales.
6.Responden en altas densidades de siembra.
7.Se adaptan fácilmente a altas salinidades.
8.La condición híbrida de muchas de las lineas,
afecta la proporción de machos y hembras, aun
después de la inducción sexual.
9.Su coloración y condición mutante la hace
susceptible a perdidas por mortalidad.
Fuente : Castillo, 2001
40
Figura 10. Origen de la tilapia roja
Figura 11. Algunos depredadores de tilapias
.
41
En muchos países el cultivo de la tilapia roja llegó a ser un fracaso,
debido principalmente al empleo de tecnologías foráneas similares a las
aplicadas al cultivo de otras especies con diferentes características de cultivo, y
por la aparición de numerosas empresas asesoras que aprovechando la moda
(BOOM) y la fe incondicional de nuestros inversionistas en los técnicos
extranjeros,
aprovecharon la gran oportunidad
para ofertar paquetes
tecnológicos fantásticos y muy costosos que posteriormente no llegaban a
rendir con lo prometido, dañando la imagen de la tilapia roja y de la actividad
acuícola en muchos países de América, (Castillo, 1994; Schramm, 1999;
citados por Castillo, 2001).
En la actualidad la experiencia ha enseñado que todo inversionista
requiere un paquete técnico adecuado, que debe ser aplicable a nuestra
realidad social, política, económica y ambiental; y no confiar del todo en
paquetes técnicos fantásticos, con un mercado inexistente, que en la gran
mayoría de los casos concluyen en el fracaso de grandes inversiones por su
desconocimiento de nuestro medio, (Castillo, 2001)
Finalmente, se debe recalcar que la tilapia roja es un pez costoso de
producir, requiere tecnología, mucho manejo, genética, semilla de alta calidad,
protección (malla antipajaros) y alimentación suplementaria, y sobre todo bajo
la dirección de profesionales con experiencia en el mismo país, ya que no es
una especie para programas de fomento, no es una especie para pequeños y
medianos productores con limitaciones financieras, no es una especie para
hacer ensayos.
2.1.2.2
TAXONOMÍA PARA TILAPIA ROJA
REINO
:
Animalia
PHYLUM
:
Chordata
SUBPHYLUM
:
Vertebrata
SUPERCLASE :
Gnathostomata
SERIE
:
Piscis
CLASE
:
Actinopterygii
ORDEN
:
Perciformes
SUBORDEN
:
Percoidei
GENERO
:
Cichlidae
ESPECIE
:
Oreochromis spp.
42
2.1.2.3
ORIGEN DEL HÍBRIDO DE TILAPIA ROJA
Una variedad que ha recibido particular atención a partir de los 80,
denominado tilapia roja, es un híbrido producto de dos o mas especies de
tilapia, cuyo origen todavía no esta bien documentada.
Scott & cols.(1987), reportan que en pruebas de hibridación han
demostrado un “mutante rubio” que muestra una marcada reducción de la
melanina en los cromatóforos que aparecen dentro
de una población de
laboratorio de O. niloticus (L) es debido solo a un gen autosomal recesivo,
llegando a discutir los posibles beneficios comerciales y de investigación de
este carácter.
Se tiene conocimiento de la obtención en Taiwán de una descendencia
F-2 de color anaranjado rojizo con cualidades superiores cruzando una hembra
mutante anaranjada rojiza de T. mossambica con un macho de color gris
normal de T. nilotica, (Pillay, 1995)
En Filipinas se obtuvo una descendencia anaranjado rojiza o dorado
similar mediante el cruzamiento de una hembra híbrida de T. mossanbica × T.
hornorum con una variedad de T. nilotica, (Pillay, 1995)
Galman & Avatlión (1983; citados por Pillay, 1995), observaron que la
tilapia roja es intermedia en varias características entre T. mossambica, T.
hornorum, T. nilótica y T. aurea, y especulan que dicho híbrido se origino a
partir de todas estas especies.
Otro autor menciona que la tilapia roja es un tetrahíbrido, es decir un
cruce híbrido entre cuatro especies representativas de género Oreochromis: O.
mossambicus, O. niloticus, O. hornorum, y O. aureus; y en vista de que
cada uno de estas especies, aporta al híbrido sus mejores características,
resulta el pez con mayor potencial para la acuicultura comercial en el mundo.
(Paz,1997).
El origen de este híbrido, se especula proviene de países asiáticos como
Taiwán, Filipinas, Guam y Singapur; siendo los primeros ejemplares importados
a Colombia, en 1982, inicialmente llegaron al Valle del Cauca y desde 1987 son
conocidos en todo el territorio (Paz, 1997).
Scott (1986), menciona la introducción de este híbrido en 1981 al estado
de Ceará, Brazil proveniente probablemente desde los E.U. a partir de ese
momento la Acuicultura tropical esta muy desarrollada en el noreste del Brazil,
43
especialmente en aguas dulceacuícolas, siendo muy apreciado por los
granjeros el híbrido de tilapia (O. niloticus x O. hornorum).
En Junio de 1984, la empresa Macropisces Aquaculture técnica,
localizada en Río de Janeiro obtuvo alevines de tilapia roja, con un buen
porcentaje de descendientes rojos; obteniendo buenos resultados de
crecimiento en estanques fertilizados en un periodo de 6 meses.
La tilapia roja aparece reportada por primera vez en 1968 como una
mutación en una población de coloración normal de tilapia mossambica
(Oreochromis mossambicus), su fenotipo variable indicaba que era una línea
incompleta con un peritoneo plateado (Kuo, 1988; citado por Klinge & cols.,
2000). El primer cruce híbrido que se conoció se realizó con la finalidad de fijar
la coloración de éste primer mutante (Liao y Chen, 1988; citados por Klinge &
cols., 2000):
O. mossambicus albina x O. niloticus normal
La evolución de la tribu TILAPINE no se ha caracterizado por cambios
importantes en sus cromosomas, lo que ha facilitado la hibridación de muchas
tilapias (Wohlwarth & Hulata, 1983; Crosetti & cols., 1988; citados por Klinge &
cols., 2000). El entrecruzamiento es usado con el fin de obtener combinaciones
deseables al incrementar el vigor híbrido o heterosis, basados en dos
conceptos básicos como Poliploidia y Transferencia de genes. Las cuatro
criterios para la realización de cruces han sido:
•
Obtención de solo machos que evita los problemas que ocasiona la
reproducción excesiva.
•
Aprovechamiento de las características que ofrecen los cruces ínter
específicos con la finalidad de obtener mejores rendimientos debido
a la Heterosis; pero se debe tener en cuenta que no todos los cruces
son compatibles (Behrends, 1982; citado por Klinge & cols., 2000).
•
Obtención de una apariencia atractiva para el consumidor y de rápida
adaptabilidad al cultivo comercial.
•
Apareamiento de los progenitores de acuerdo con el sistema de
“Apareamiento Clasificado”, el que no es aleatorio debido a que se
basa en el parecido fenotípico.
44
Modernamente, con la hibridación se busca un aprovechamiento de las
características de cada una de las especies del género Oreochromis como son,
el mayor porcentaje de crecimiento, tolerancia a aguas de baja temperatura,
mayor pigmentación rojiza y mayor variación isozímica de la especie O.
niloticus, gran resistencia a aguas de temperaturas bajas, rápidos crecimientos
a altas densidades y excelentes presentación de la O. aureus y por último las
especies O. mossambicus y O. urolepis hornorum que confieren gran
resistencia a los híbridos y gran adaptabilidad a aguas salobres, a pesar de
que su coloración y crecimiento no son óptimos, (Klinge & cols., 2000).
Una de las fases importantes en la obtención y trabajo con los híbridos
de tilapia roja, es el pleno conocimiento sobre los patrones morfológicos y
hereditarios que rigen la pigmentación de las tilapias, las que se encuentran
gobernadas por tres grupos de cromatóforos, los que se sitúan en la piel
inmediatamente debajo de la epidermis y la membrana basal. Los tres tipos de
cromatóforos conocidos son:
•
Melanóforos, responsables del color negro, café y rojo.
•
Xantóforos o Eritróforos, responsables del color amarillo, y
•
Iridóforo, responsable del color dorado.
Las líneas de tilapia roja presentan un problema en común para el
acuicultor, y consiste en la existencia de un número de individuos en cada
generación que presentan coloración normal o la presencia de parches
melanísticos, no siendo estos peces considerados como individuos rojos puros.
Kuo (1987; citado por Klinge & cols., 2000), encontró una nueva
característica en un 3% de los ejemplares que es la presencia de una
concavidad estrecha que se denomina “abdomen encogido” (Shrunken) y se
incrementa con la depresión genética. Estos peces presentan poca viabilidad,
evitan la luz, nadan lentamente cerca del fondo, crecimiento lento, baja
resistencia a condiciones de stress y coloración púrpura en la región ventral
durante el alevinaje.
Tave & cols.(1982; citado por Klinge & cols.,2000), reporta dos defectos
congénitos hereditarios conocidos como enanismo (Stumpbody = Dwarfish) y la
espalda en sable (Sableback).
45
Entre los años 1974 y 1985 se realizó un trabajo en donde luego de 400
generaciones seleccionados durante 11 años se pasa de un ejemplar de
coloración normal a uno completamente albino y después rojo, a la vez que se
incrementa el tamaño de la porción fileteable desde 27 hasta 44% del cuerpo,
con reducción de espinas intramusculares, (Klinge & cols., 2000)
Entre los años 1975 y 1979 aparece una hembra de tilapia roja con una
coloración que varía entre dorado y amarillo (Blond) que al ser cruzada con
machos híbridos de tilapia roja de origen desconocido tiene una progenie de
cuatro grupos de color normal (negra), café, roja y blanca con 25% cada grupo
(Mc Andrew & cols., 1988). Los trabajos de hibridación en O. niloticus se
iniciaron de manera detallada en 1978, cuando se introduce la tilapia nilótica de
pigmentación normal proveniente de Taiwán, Japón y Singapur (Galman &
cols., 1988; citado por Klinge & cols., 2000). De otro lado, Tave (1991; citado
por Klinge & cols., 2000) describe a la “Blond” nilótica como una variedad
determinada por la Universidad de Swansea en Gales de una población
originaria del Lago de Manzala (Egipto) de color negro desteñido con gránulos
de melanina pequeños y poco densos, cuyo mecanismo hereditario obedece a
un gen autosómico con dominancia completa, Syrup nilótica descrita por la
Universidad de Stirling en Escocia y también proveniente del Lago de Manzala
como un híbrido de color entre amarillo y anaranjado con un mecanismo
hereditario de las mismas características que en el caso anterior, Light (Pink)
nilótica encontrada en Israel a partir de stocks importados de Uganda y Ghana
de igual mecanismo hereditario, su coloración es rosada y Red nilótica
considerada como la tercera mutación del Lago de Manzala cuya genética
obedece también a un gen autosómico de dominancia completa pero con dos
fenotipos rojos, (Klinge & cols., 2000)
Según Castillo (1994; citado por Klinge & cols., 2000), los Híbridos de
tilapia roja reconocidos actualmente en todo el mundo son:
TILAPIA ROJA TAIWANESA:
O. mossambicus x O. niloticus
(kuo, 1984; Pruginin & cols., 1989).
TILAPIA ROJA SINGAPUR:
O. mossambicus mutante
(Pruginin & cols., 1988).
TILAPIA ROJA FLORIDA:
O. mossambicus
albina x O. urolepis
hornorum (Sipe, 1985).
46
TILAPIA ROJA AUREA:
O. mossambicus albina x O. urolepis
hornorum x O. aureus
TILAPIA ROJA MANZALA:
O. niloticus (egipcia) mutante
(Mc Andrew & cols., 1988; Tave, 1991).
TILAPIA ROJA TAILANDESA:
O. niloticus roja
TILAPIA ROJA YUMBO: N° 1
O.
mossambicus
albina
x
O.urolepis
hornorum x O. niloticus
(castillo, 1990)
TILAPIA ROJA YUMBO: N° 2
O. mossambicus albina x O. urolepis
hornorum x O. nilotucus x O. aureus
(Castillo, 1990)
Finalmente se puede decir que la tilapia roja es el resultado de la
mutación de especies puras o el cruce híbrido entre ellas, todas del género
Oreochromis (4-way-cross).
2.1.2.4
MATERIAL GENÉTICO
a. Material manejado por la industria mundial
Según Moscoso (2001), el crecimiento acelerado del mercado de tilapia
en las dos últimas décadas ha motivado un esfuerzo concertado entre
importantes instituciones y la actividad privada, especialmente en el sudeste
asiático. Actualmente se cuentan con excelentes líneas mejoradas de tilapia
de las especies nilótica, aurea, homorum y mossambica.
También algunos países como Israel han mejorado estas especies para
la producción masiva de híbridos de diversas líneas de tilapia roja. Sin
embargo, la tilapia roja mas cultivada actualmente corresponde a las líneas
denominadas trihíbrida y tetrahíbrida, que se manejan con reversión sexual
como la nilótica gris.
Recientes investigaciones están tratando de masificar la producción de
súper-machos (YY) para obviar la reversión, pero esta alternativa aún no es
comercial.
47
b. Material genético existente en el Perú
Según Moscoso (2001), la producción indiscriminada de alevinos en la
selva alta no permite asegurar que actualmente se cuente con un material
genético de buena calidad en esta zona.
En la costa se trabaja con la línea Panameña de tilapia nilótica
(plateada), mejorada en la Unidad de Acuicultura de San Juan en Lima,
respecto a su rusticidad, ya que ha sido expuesta a difíciles condiciones
ambientales durante los últimos 5 años. Como resultado, se tiene una línea que
hasta la fecha no ha mostrado problemas sanitarios. Igualmente se está
manejando la línea costarricense de Tilapia roja tetrahíbrida, material que
inicialmente se trabajó en San Juan y que ahora se está reproduciendo en el
Hatchery de Tilapia Perú en Piura, (Moscoso, 2001).
Se Sabe que un pequeño lote de cuatro líneas de tilapia procedentes de
Estados Unidos fueron introducidos por la Empresa Santa Mónica para su
producción privada en Piura, pero no se tiene referencias de sus cualidades y
rendimientos.
Por último, la Empresa Congelados y Exportaciones S.A. de Tumbes
trabajo en el año 2001 con alevinos importados de Ecuador. Se entiende que
se trata de la misma línea de tilapia roja tetrahíbrida que se maneja en el Perú.
2.1.2.5
IMPACTO AMBIENTAL
Debido a su coloración y comportamiento gregario, la tilapia roja se
encuentra ampliamente expuesta a la predación de peces nativos, aves de todo
tipo, larvas de insectos, etc. Lo que requiere de inversiones en estructuras
como mallas para reducir las pérdidas por éste concepto, (Klinge & cols., 2000)
Hasta ahora, no se ha tenido éxito en los intentos de adaptación a los
ambientes lóticos, no sólo por la predación sino por su poca adaptabilidad
como competidor.
En líneas como la Red Florida, es muy común que se den
comportamientos agresivos, lo que limita la supervivencia de otros peces más
débiles, son los que mejor probabilidad presentan para sobrevivir en el medio
natural, especialmente debido al componente de O. mossambicus (Castillo,
1994; citado por Klinge & cols., 2000).
48
2.1.2.6.
LA TILAPIA ROJA EN EL PERÚ
La tilapia roja en nuestro país resulta de una necesidad de mantenernos
a la par con otros países en cuanto al cultivo de esta especie como industria
en apogeo.
La tilapia roja ingresa a nuestro país en los meses de octubre
y
noviembre de 1996, como parte complementaria de otro lote de reproductores
grises, (con el objetivo de renovar la sangre), procedentes de la ESTACIÓN
DIVISA, PANAMA (líneas Costa Ríca), ingresando después de un engorroso
trámite y gracias a la perseverancia del Ing. Julio Moscoso C. responsable del
proyecto de Acuicultura en
aguas residuales tratados de San Juan de
Miraflores, proyecto en convenio entre la Dirección General de Medio Ambiente
(D.G.M.A.) del Ministerio de Transporte, Comunicación y Vivienda (M.T.C. y V.)
y el Centro Panamericano de Ingenieria Sanitaria (CEPIS-OPS-OM) proyecto
financiado con el apoyo del Programa de las Naciones Unidas para el
Desarrollo (PNUD), Banco mundial (BM) y la GTZ de Alemania. Su ingreso
paso desapercibido por el poco o casi nada de interés por esta especie en
esos años y solo unos cuantos tuvimos la oportunidad de apreciar semejante
evento (Figura 12).
Llegado los animales, inmediatamente fueron acondicionado en tanques
de concreto con agua clara, posteriormente se iniciaría el acondicionamiento de
los peces al agua de la pozas de San Juan(aguas residuales tratadas), (Figura
13). Esta acción que duraría por un espacio de aproximadamente 2 años hasta
su total aclimatación a nuestro medio y al tipo de agua.
Paralelamente se realizó una serie de experimentos (algunos detallados
en antecedentes), en cuanto a su comportamiento y crecimiento, pero el primer
trabajo a nivel productivo con tilapia roja a nivel nacional sería el presente
trabajo de tesis.
Gracias al D. S. N° 002-91-PE (del 07 de Octubre 1991), el cual prohibía
el cultivo de tilapia en ambientes naturales y artificiales en todo la cuenca del
amazonas, limitaría los trabajos con tilapia a zonas como el norte del país, así
como llevaría a buscar a otras zonas apropiadas como el sur chico (Ica) y
alrededores de la ciudad de Lima.
Para el año 1999, los trabajos realizados y el presente trabajo
demostrarían que la tilapia roja, es un pez caro de producir y mas aún difícil de
49
Figura 12. El autor mostrando las dos variedades de tilapia en la Unidad de
Acuicultura de San Juan
50
cultivar (en comparación con la
tilapia plateada) y que su cultivo estaría
limitada a sistemas mas complejos, y no para fines sociales como el caso de
la tilapia plateada, y el cual siempre fue mi intención de desarrollar en nuestro
país, con una población escasa de alimento y proteínas y con un consumo
promedio per cápita que no excede los 12 k al año, lamentablemente en
nuestro medio las
deberían
instituciones publicas ligadas a la actividad (los cuales
ser los primeros) no contemplaron y no contemplan hoy en día el
cultivo de tilapia en sistema extensivos como fuente de alimento bueno y
barato.
A mediados del 99, se puede decir que recién nace el interés de
instituciones pública y privadas, por la tilapia, los cuales nos comprarían semilla
(revertida a machos), con el fin de realizar trabajos experimentales y pilotos de
prueba, así tenemos por ejemplo la venta de semilla para las zonas de
Huachipa, lagunas de Puerto Viejo, Guacho y Bellavista (San Martín), del que
no tendremos respuesta, si no después de 3 años, cuando participando como
expositor en el 1° curso de cultivo de tilapia roja dictada por el Centro de
Entrenamiento Pesquero de Paita (CEP – Paita), me encontrase con el
propietario y el cual me comentaría la experiencia del primer ingreso de tilapia
roja a nuestra selva amazónica. Otras instituciones como la Universidad
Nacional Agraria La Molina (UNALM), también ingresaría a la investigación con
esta especie, así como la Universidad Nacional de Ingenieria (UNI) a través de
su Unidad de tratamiento de aguas residuales (UNITRAR) en estanques de
concreto y finalmente El Fondo nacional de desarrollo Pesquero (FONDEPES),
que recién participaría realizando experimentos de cultivo en Tambo de Mora
(Ica) cuyos resultados publicados posteriormente, no convencerían del todo.
El 28 de mayo de 1999, se comprobaría la presencia del virus de la
mancha blanca en el Ecuador. A partir de los meses de junio, julio y agosto y
en algunos casos en meses posteriores, se observaron las primeras
mortalidades masivas en estanques que tenían camarones (langostinos) de
talla menores de 5 gramos; en algunos casos de Litopenaeus stylirostris las
mortalidades fueron masivas en todos los tamaños.(Cordova & De Wind, 2000)
La primera reacción de los productores fue empezar a cosechar
inmediatamente la mayor cantidad de estanques posibles. La Mancha Blanca
se estableció en las provincias de Esmeralda, Guayas, El Oro y Manabi. Los
51
puntos más críticos fueron el estuario Cojimies - Pedernales, sur de Esmeralda
y Norte de Manabi: Pata de Posorja y Sabana Grande en Guayas.
El contagio se pudo generar por exportaciones clandestinas de insumos
para acuicultura a través de la frontera norte, por vías naturales, o quizás ya
existía en el medio ambiente.
En el Perú toda el área langostinera está afectada por el virus de la
mancha blanca desde setiembre de 1999, en que apareció en la
zona
fronteriza con Ecuador, distribuyéndose paulatinamente hacia el sur, luego
pasó a Tumbes contaminando la zona en un par de meses. La situación fue
agrandándose con el tiempo y se hizo incluso virulenta con la llegada de las
temperatura más altas.
Este virus provocaría la reducción de la producción hasta en más del
90% de las langostineras, las cuales buscaron otras alternativas como el cultivo
de la tilapia roja, y es así como en el año 2000 este evento elevaría a un más
el interés a los productores y las instituciones públicas por el cultivo de la
tilapia roja.
La publicación de las Resoluciones Ministeriales N° 277 - 99 - PE y 015 00 - PE de fechas 24 de setiembre de 1999 y 24 de enero del 2000
respectivamente, establecieron las disposiciones para el cultivo de la tilapia en
la costa y en 2° caso daría una autorización excepcional para que las personas
naturales y jurídicas que se dediquen al cultivo de langostinos en Tumbes,
puedan por un período de 12 meses diversificar su actividad y dedicarse al
cultivo de la tilapia, el cual posteriormente se ampliaría..
Así mismo mediante la promulgación del DS N° 010 - 2000 - PE, se
autoriza la siembra y cultivo de la tilapia plateada(Oreochromis niloticus) en
ambientes artificiales del departamento de San Martín, y deja sin efecto el DS
N° 002 - 91 - PE que prohibía el cultivo de la tilapia en la región de San Martín.
Es a partir del año 2000, que se aprecia recién el verdadero interés del
cultivo de la tilapia en el país, sobre todo al ver que países vecinos como
Ecuador pasan a ser los primeros exportadores de filete de tilapia refrigerada
a los EE. UU., desplazando a Costa Rica a un segundo lugar.
Es así que en enero del año 2000 una empresa privada denominada
Tilapia Perú S. R. L. , conformada por socios peruanos, en vista de la demanda
e interés suscitado, instala un Hatchery (Figura 14) en el distrito de Castilla,
52
Piura en el cual tuve
el honor de
participar como jefe de producción ,
abasteciendo de semilla inducida sexualmente (machos) a todo el norte y sur
chico del país, así como dedicarnos al engorde de tilapia roja y plateada en el
Valle de San Lorenzo (Tambogrande) Piura, obteniendo los primeros
resultados de su cultivo en el norte del país, evaluando los nuevos tipos de
alimento disponibles en el mercado (extruido)(Figura 15).
Casi inmediatamente después otra empresa privada, llamada Santa
Mónica,
introduce 4 especies de tilapia con el fin de producir híbridos y
dedicarse al engorde la
tilapia roja en el departamento de Piura,
lamentablemente terminado el trabajo experimental, no se tuvo mucho acceso
a la información obtenida, propio de las empresas privadas.
Posteriormente otra empresa denominada Congelados y Exportaciones
S.A., de Tumbes, introduciría alevinos revertidos de tilapia roja importada de
Ecuador que por el volumen manejado intentaron ingresar al mercado
Norteamericano y posteriormente al mercado nacional.
En abril del 2001, FONDEPES iniciaría el primer trabajo experimental,
cultivando tilapia roja en jaulas en el reservorio de Poechos, ubicado en la
provincia de Lancones, Piura y cuyo término estuvo programado para junio del
2002, con resultados satisfactorios.(Figura 16)
En Julio del 2001, FONDEPES, dándole la importancia debida, a
diferencia
de
años
anteriores,
realizaría
el
primer
WORKSHOP
INTERNACIONAL DE TILAPIA(Cultivo y comercialización), en la ciudad de
Tarapoto, en san Martín, el cual contó con la presencia de expositores
extranjeros y nacionales, teniendo mucha aceptación por parte de los
productores y profesionales de la carrera.
En esas mismas fechas, se firmaría el convenio entre FONDEPES e
INADE, con el fin de realizar la explotación integral de los reservorios a nivel
nacional (RM 295 - 2001 - PE).
A finales del año 2001, entre noviembre y diciembre, el CEP - Paita
realizaría el primer curso básico sobre cultivo de tilapia roja, evento en que
participé junto a otros profesionales del país; incursionando así la institución en
la capacitación de personal en el cultivo de esta especie, el cual se realizaría
cada año. Este evento tuvo mucha aceptación, sobre todo por productores de
la región San Martín.
53
Figura 13. Vista de las instalaciones de la Unidad de Acuicultura de San Juan
Figura 14. Vista de tanques para reversión sexual – TILAPIA TERU S:R:L:
Hatchery
54
Figura 15. Terminando la cosecha – Tilapia Perú S.R.L. granja
Figura 16. Cultivo de tilapia en jaulas - FONDEPES
55
Asimismo otra empresa privada, conformada en su mayoría por socios
extranjeros, iniciarían los trámites, para lo que sería la granja mas grande del
país en cuanto al cultivo de la
tilapia roja. La empresa American Quality
Aquaculture S.A., obtendrá la autorización para la adquisición de un predio
rústico denominado Señor de los Milagros, ubicado en el distrito y provincia de
Sullana (Piura), con el fin de implementar el cultivo de tilapia
en forma
superintensiva con la captación de 6 m3/s de agua de uno de los canales
abastecidos por la represa de Poechos (DS N° 025 – 2001 – PE).
Para mediados del año 2002, AQUA S. A. concluiría con las obras de
estanquería, dentro de la propiedad de 32 ha, para la instalación de futuros
reproductores de tilapia aurea (RAZA ND – 41), traídos desde Israel, teniendo
planificado comenzar con la producción de alevines machos para los meses de
Agosto y Septiembre, esperando alcanzar una producción de mas de 2000
toneladas de carne para el primer año, y el cual se incrementaría a mas de
3000 toneladas a partir del segundo año.
Casi por la misma fecha, otra empresa privada denominada MELI´S
FISHERY S. A. aprovecharía los datos obtenidos por FONDEPES, en el cultivo
de tilapia roja en jaulas, para empezar un proyecto mas amplio dedicado al
cultivo de tilapia en jaulas hexagonales, para la producción de mas de 600
toneladas de pescado al año.
Posteriormente se daría nuevos cambios en la parte legal, así se crearía
la ley de acuicultura, cambios menos burocráticos en el Texto Unico de
Procedimientos administrativos (TUPA) y recientemente la formación de la
Comisión Nacional en Acuicultura, presidida por el Viceministro de pesquería, e
integrado por representantes de FONDEPES, IMARPE, la Sociedad Nacional
de Pesquería, entre otras instituciones.
Estos y otros eventos no mencionadas por falta de tiempo, nos permitirá
tener referencia del cultivo de tilapia en todos los sistemas (extensivo, semi –
intensivo, intensivo y superintensivo), en jaulas con alimento balanceado
extruído y con sub-productos agrícolas, en aguas dulces y salobres, en
policultivo con langostinos, etc. Así como estar al día en los últimos avances
gracias a eventos realizados en nuestro país y el exterior en cuanto al cultivo
de la tilapia roja y su mercado nacional y extranjero.
56
Casi se podría decir que actualmente casi todo está dicho y trabajado
sobre tilapia en nuestro país, lo único que quedaría sería aplicarlo y adaptarla a
los diferentes medios de nuestro territorio nacional, dirigidos por personal
capacitado y con experiencia que permita traspasar los problemas que se
presenta sobre todo cuando recién se inicia una empresa dedicada a la
Tilapiacultura.
2.1.2.7.
REQUERIMIENTOS AMBIENTALES PARA LAS TILAPIAS
Las condiciones ecológicas más importantes que se toman en
consideración en el proceso del crecimiento y reproducción de éstos peces son
los siguientes:
2.1.2.7.1. Temperatura
La influencia de la temperatura sobre los procesos biológicos
suele ser muy decisiva, para la respiración, crecimiento, descomposición
bacterial de la materia orgánica y otros (Hepher, 1976; citado por Viteri, 1985).
La temperatura mínima letal para la tilapia del Nilo se encuentra por
debajo de 11°C y 12°C, estando su temperatura óptima entre los 26 y 30°C. La
temperatura máxima letal está alrededor de los 42°C. Ben - Tuvia (1968; citado
por Viteri, 1985).
Denzer (1968; citado por Viteri, 1985), encontró que la temperatura mas
baja letal para esta especie fue de 11°C.
Balarin (1979) reporta que las temperaturas menores a 12°C son letales
para la tilapia nilótica, pero tolera 8°C. Por espacio de 3 a 4 horas, el rango de
temperaturas que diversos autores indican para esta especie abarca desde los
8°C hasta los 40°C.
En nuestro medio la temperatura óptima de crecimiento alcanza los 26
a 28°C. en los meses de mayor temperatura (Noviembre a Abril) y la
temperatura mínima se aprecia en 17°C y 18°C. Se observa en los meses de
Mayo a Octubre, manteniéndose los animales sin crecer.
Los cíclidos son peces que requieren de temperatura elevada para su
desarrollo. La reproducción de la tilapia se da entre 22°C – 32 °C (Popma &
Green, 1990; citados por Marcillo & Landivar, 2000), el rango óptimo es de
26°C - 29 °C y la temperatura ideal para el engorde de estos peces es de 24°C
57
– 32 °C. En nuestro medio la temperatura ideal es de 28°C a 33 °C, los cuales
se aprecia en las zonas amazónica y parte Norte de la costa peruana.
El híbrido rojo se desarrolla muy bien entre los 24°C y 29°C, siendo muy
susceptible a infecciones por encima o por debajo de éstas temperaturas. El
rango óptimo para la reproducción es entre los 24°C y 34°C. Se deben evitar
las variaciones diarias de temperatura mayores a 5°C. La tasa metabólica tiene
una relación directa con la temperatura, a mayor temperatura más alto es el
metabolismo, mientras que a menor temperatura menor será el metabolismo.
Las temperaturas tanto de eclosión como de incubación óptimas se
encuentran también entre los 24°C y 30°C (Castillo, 1994; citado por Klinge &
cols., 2000). Temperaturas menores a los 20°C inhiben la reproducción
mientras que las menores a 15°C alteran el metabolismo (Arredondo & cols.,
1994).
2.1.2.7.2. Oxígeno
La tilapia del Nilo es una de las especies más tolerantes a fluctuaciones
de oxigeno (Chervinsky y Lahar, 1976; citado por Viteri, 1985).
Balarin (1979) manifiesta que la tilapia puede vivir anaeróbicamente con
bajos niveles de oxígeno y menciona a Coche (1976) quien encontró que las
tilapias mayores de 20 g parecen ser más tolerantes que los peces más
pequeños a bajas concentraciones de oxígeno, pudiendo soportar durante
periodos cortos concentraciones de 0,7mg/l.
Según Magid & Babiker (1975; citados por Viteri, 1985), mencionan que
esta especie puede soportar por pocas horas 0,1 mg/l de oxígeno. George
(1975; citado por Viteri, 1985) indica que puede sobrevivir a concentraciones de
1,2 mg/l en estanques
La concentración ideal para un buen crecimiento se encuentra entre 2 a
5 mg/l de oxígeno disuelto, lo cual es difícil de conseguir en sistemas
extensivos o semi - intensivos.
El oxigeno es uno de los parámetros más importante dentro de los
procesos de la reproducción, los niveles deseados están sobre los 6 ppm, pero
se desarrollan normalmente en concentraciones de 5 mg/l (Flores & Medrano,
1997; citados Marcillo & Landivar, 2000).
58
La tilapia tiene la facultad de reducir el consumo de oxígeno cuando la
concentración del medio son bajas, inferiores a 3 mg/l aquí el pez disminuye su
metabolismo (Fondepesca, 1988; citado por Marcillo & Landivar, 2000).
En la crianza intensiva de la tilapia roja, idealmente los niveles deben
mantenerse por encima de los 3mg/l, pero de preferencia se deben mantener
niveles mayores a 5 mg/l debido a que el valor adicionalmente disminuye por
reacciones químicas de descomposición de materia orgánica, alimento no
consumido, heces, aumentos en la tasa metabólica por incremento en la
temperatura, remoción del oxígeno en el agua efluente, desgasificación a la
atmósfera cuando la concentración excede la saturación o disminución de la
fotosíntesis por nubosidad (Castillo, 1994; citado por klinge & cols., 2000). Los
efectos de los diferentes concentraciones de oxígeno en el estanque se
observa en el cuadro 16.
Una ventaja de cultivar ésta especie es que, a pesar de tener una
presión parcial baja, su sangre es capaz de saturarse de oxígeno y aún de
reducir su consumo, si la concentración es inferior a 3mg/l usando un
metabolismo semianaeróbico (por medio del cual extraen el oxígeno de la
interfase agua - aire), con el cual soporta niveles de 1mg/l e incluso menor (por
cortos periodos), pero esto afecta el consumo de alimento y retarda su
crecimiento (Arredondo & cols., 1994).
Tabla 16. Efectos de la concentración de oxígeno disuelto en el agua
OXÍGENO DISUELTO (PPM)
0
0.3 – 1.0
2.0 – 4.0
5.0 – más
EFECTO EN PECES
Peces pequeños sobreviven cortos periodos
Letal en exposiciones prolongadas
Peces sobreviven, pero crecen lentamente en
exposiciones prolongadas.
Rango Deseable
Fuente: Swingle (1966; citado por Klinge & cols., 2000)
2.1.2.7.3. pH
Huet (1973; citado por Viteri, 1985), recomienda valores de pH entre 7 y
8, como los mejores para estanques piscícolas y cuanto menos fluctuaciones
de pH existan las condiciones biológicas serán mejores.
59
Hicking (1971; citado por Viteri, 1985), menciona que el pH de 4,0 puede
ser letal para los peces, refiriendo el caso de una fuerte mortandad de Carpas
comunes y Chinas en los criaderos de Malaca.
George (1975; citado por Viteri, 1985), encontró que la tilapia tolera altos
niveles de pH entre 8 y 11.
El pH óptimo de cultivo para tilapia, se encuentra entre los 7 y 8 de pH,
que en general es lo óptimo para la mayoría de especies acuáticas.
El rango óptimo de pH se encuentra entre 6.5 – 8.5, siendo el óptimo
7.5, en aguas cálidas la fotosíntesis normalmente lo eleva hasta 9-10,
disminuyendo hacia la noche al incrementarse el Dióxido de Carbono (CO2).
Valores por encima o por debajo de los óptimos, ocasionan aletargamiento,
sucediendo lo mismo en caso de presentarse grandes oscilaciones, la
reproducción se detiene, el crecimiento se reduce. Valores de pH por debajo de
4 y por encima de 11 son mortales, pero la muerte puede presentarse entre 2 y
6 horas al sobrepasar estos rangos. Los valores letales son: ácido con un pH
de 2 a 3, alcalino con un pH de 11 ó mayor (Auburn University, 1996; citado por
Klinge & cols., 2000).
En condiciones de manejo normal, el pH solo debe ser medido cuando
hay amonio presente, ya que el pH alto afecta la toxicidad de muchos
productos químicos (Castillo, 1994; citado por Klinge & cols., 2000).
2.1.2.7.4. Dureza y Alcalinidad
El agua utilizada para el cultivo de peces como la tilapia del Nilo no debe
exceder de 280 ppm de Carbonato de Calcio para un buen crecimiento y
desarrollo de los animales en el estanque.
Afectan directamente al metabolismo de los organismos reduciendo la
producción total de tilapia. Una alcalinidad de aproximadamente 75 mg. Ca
CO3 / l se considera adecuada y propicia para promover la productividad de los
estanques (Fondepesca, 1988; citado por Marcillo & Landivar, 2000)
Lo recomendable seria mantener una concentración de 100 a 110 ppm.
de Carbonato de Calcio en el agua para un óptimo rendimiento.
La variación de éstos parámetros, al igual que en el pH, influye sobre la
cantidad de alimento disponible para la tilapia y no directamente sobre ésta, por
lo cual no se recomienda una alcalinidad superior a 75 ppm ni una dureza total
superior a 350 ppm de carbonato de calcio (CaCO3), pues afecta la
60
productividad del estanque y a las branquias de las tilapias. El nivel óptimo de
alcalinidad y dureza es de 20 ppm de carbonato de calcio; los niveles inferiores
a 5 ppm inhiben el desarrollo de las plantas.
Cuando la concentración de carbonato de calcio es elevada, se produce
una excesiva presión osmótica asfixiando a los organismos y bloqueando el
mecanismo liberador de sal y cloro (Arredondo & cols., 1994).
2.1.2.7.5. Salinidad
La mayoría de las tilapias en general son eurialinas y pueden vivir en
aguas salobres, y alguna en agua de mar (kirk, 1972; citado por Hepher &
Pruginin, 1991) ; niveles sobre los 10 ppm no es recomendable para la
reproducción de O. niloticus (Popma, 1990; citado por Marcillo & Landivar,
2000)
La mayor cantidad de tilapias cultivadas son las dulceacuícolas, pero
todas resisten salinidades. El rango óptimo de salinidad para el híbrido rojo
resulta ser cualquiera menor a los 35 partes por mil (eurihalinas). A pesar de
esto, las tilapias crecen mejor en rangos más cercanos a la isotonía, ya que
reducen el gasto de energía para el control osmótico de sus fluidos corporales
(Arredondo & cols., 1994).
2.1.2.7.6. Sólidos Totales
El primer efecto que tienen las partículas en suspensión es sobre las
branquias de los peces, causando lesiones que son puertas de entrada a
infecciones por patógenos. Por otro lado impide la libre difusión de la luz en la
columna de agua lo que reduce la productividad natural (fitoplancton) y por lo
tanto, el alimento disponible para las tilapias. Por esto es recomendable que los
niveles de sólidos totales no excedan de los 100 mg/l (Arredondo & cols.,
1994).
2.1.2.7.7. Nitritos (NO2)
Ocasiona la enfermedad de la sangre café, los nitritos son tomados por
las branquias y se unen a la hemoglobina formando la “methaglobina”, la que
no puede transportar oxígeno por tanto el pez sufre de una significativa baja de
oxígeno, la cantidad tóxica de nitritos para las tilapias dependen de la cantidad
de cloruros, temperatura y concentración de oxígeno en el agua, por lo tanto
concentraciones tan bajas como 0,5 ppm pueden ocasionar problemas.
61
Los nitritos son tóxicos, adicionalmente cuando el pH está alto. La
mayoría de las veces los nitritos son formados a partir de un proceso de
nitrificación como fase intermedia en la transformación del amoniaco a nitratos,
desapareciendo a su vez por un proceso inverso llamado desnitrificación, que
es la degradación de nitritos y luego a nitrógeno, todos estos procesos
anteriores descritos son llevados a cabo por bacterias (Castillo, 1994; citado
por Klinge & cols., 2000).
2.1.2.7.8. Nitrógeno
El nitrógeno disuelto puede ser ignorado si permanece en el 100% de
saturación o por debajo de él, pero la sobresaturación (por encima del 100%)
ocasiona la formación de burbujas del gas, que enferman y ocasionan la
muerte de los peces. En muchos casos adicionar falsos sustratos que facilitan
la adhesión de algas y una importante fauna bacteriológica (Nitrosomonas,
nitrobacter), es suficiente para mantener los niveles (Castillo, 1994; citado por
Klinge & cols., 2000).
2.1.2.7.9. Cloruros
Protege a los peces de la toxicidad de los nitritos. La proporción mínima
de cloruro a nitrito requerida para proteger a los peces es de 3:1, pero 5:1 ó 6:1
es mejor, especialmente en peces con infección u otro problema o estrés
(Castillo, 1994; citado por Klinge & cols., 2000)
2.1.2.7.10. Amonio
El amonio es el principal producto final del catabolismo de las proteínas,
excretado por los peces, crustáceos y moluscos (Campbell, 1973; Colt &
Amstrong, 1981; citados por Viteri, 1985).
Ram & cols. (1980; citados por Viteri, 1985), indican que es también
producido en el estanque por un proceso de amonificación bacteriana de la
materia orgánica, bajo condiciones aeróbicas en la columna de agua y
anaeróbicas en el fondo.
En general la tilapia nilótica no tolera niveles de amonio superiores a 1,5
mg/l.
EL amonio en compañía de los nitratos y nitritos, son típicos indicadores
de la contaminación de aguas. Los peces en general excretan entre el 60% 90% del nitrógeno de deshecho a través de las branquias en forma de amonio,
por lo que reciben el nombre de “amonotélicos”. El amoniaco es formado por la
62
degradación de proteínas vegetales y animales en alimentos no consumidos,
heces fecales y la orina en los peces (Castillo, 1994; citado por Klinge & cols.,
2000).
El amonio excretado, existe en equilibrio en el agua, entre el
amonio no ionizado (NH3) que es tóxico para los peces y el amonio ionizado
(NH+4) no tóxico. Si el oxígeno disuelto es bajo, el pH es alto o la temperatura
es alta un porcentaje del amonio se transforma a su estado no ionizado tóxico
(Castillo, 1994; citado por Klinge & cols., 2000).
Las concentraciones de amonio libre puede determinarse teniendo en
cuenta el pH y las concentraciones de amonio total que se obtengan,
(Tabla 17).
La toxicidad por amonio es más grave en pozas con poca capacidad
tampón (alcalinidad menor a 30 mg/l CaCO3). En las tardes se presenta niveles
de pH entre 9 y 10. Cuando las concentraciones del oxígeno disuelto son bajas,
la toxicidad del amonio se eleva pero es compensado y reducido por la
creciente concentración de CO2 que aminora el pH. Estas condiciones se dan
para ambientes con un rango de temperatura entre los 24°C y 32°C (Aubum
University, 1996; citado por Klinge & cols., 2000).
Tabla 17. Grado de toxicidad del amonio
PH
GRADO DE TOXICIDAD
7
Menos del 1% está al estado Tóxico
8
Entre el 5% y 9% está al estado tóxico
9
10
Fuente: Castillo (1994; citado por Klinge & cols., 2000)
2.1.2.7.11. Dióxido de Carbono (CO2)
Es altamente soluble en el agua y actúa como un ácido en ella. Se
presenta como producto de la actividad biológica, su incremento lo da un mayor
proceso de respiración y un menor proceso de fotosíntesis, por lo que en la
madrugada se van saturando con dióxido de carbono. Se considera que niveles
por encima de 20 ppm es peligroso para los peces, (Klinge & cols., 2000).
63
2.1.2.7.12. Gases Tóxicos
Entre los más importantes figuran:
1. Ácido Sulfhídrico o Sulfuro de Hidrógeno (H2S)
2. Ácido Cianhídrico (HCN)
3. Gas Metano (CH3)
Los cuales en grandes concentraciones pueden causar grandes
mortalidades. El primero es peligroso en concentraciones de 0,1 ppm en
adelante, el segundo lo es a partir de 10 ppm en adelante mientras que el
tercero se acumula y es de acción más lenta. Estos gases son típicos de
estanques “viejos” o mal manejados con alto contenido de materia orgánica,
ocasionan altas mortalidades, la mejor manera de controlar este tipo de
problema consiste en secar el estanque y añadir cal viva, incrementar el
oxígeno disuelto y la mezcla de agua para obtener altas diluciones (Castillo,
1994; citado por Klinge & cols., 2000)
2.1.2.7.13. Turbidez.
Para los procesos de reproducción, la lectura del disco sechi entre 25 a
30 cm es lo recomendable, siempre que esta sea originada por la productividad
primaria, (Marcillo & Landivar, 2000)
2.1.2.7.14. Requerimiento de Agua
Debido a la tolerancia de la tilapia, esta puede sobrevivir tranquilamente
en agua estancadas, pero en ambientes extensivos, se debe reponer el agua
que se pierde por evaporación y filtración; siendo necesario un flujo
permanente en las etapas de reproducción y alevinaje.
En ambientes intensivos, se debe contar con un flujo constante de agua
para realizar el recambio del agua, así se recomienda 17 l/s Para estanques de
1000 m2.
En las etapas de obtención de alevines se debe contar con abundante
agua y de buena calidad para obtener una optima producción de semilla de
calidad.
64
2.1.2.8. SISTEMAS DE PRODUCCIÓN DE TILAPIAS.
Aunque resulta difícil establecer un limite entre un sistema y otro, se han
establecido parámetros para su diferenciación en 8 niveles que describen la
progresión de la intensidad del manejo del cultivo. Es importante mencionar
que cada nivel es el más apropiado de acuerdo a condiciones especificas como
lo son la disponibilidad de agua, infraestructura, capacidad de manejo,
disponibilidad de capital, costo de insumos y valor del producto en el mercado.
2.1.2.8.1. NIVEL EXTENSIVO
En cuanto a este nivel se realiza en estanques de tierra con sistemas de
drenaje, presenta bajas densidades de cultivo y el alimento natural constituye la
única fuente de alimentación y no se realiza fertilización. Los rendimientos que
se obtienen se encuentran entre 300 a 700 kg/ha.campaña.
Este nivel de intensidad es económicamente viable solo cuando la tierra
es barata y cuando no es necesario bombear el agua para el llenado de los
estanques.
En este nivel, se consideran a los cultivos realizados con la utilización de
abonos orgánicos, procedentes de los animales y las aguas residuales
domesticas previamente tratadas, con el fin de propiciar la producción de las
microalgas como alimento para las tilapias.
2.1.2.8.2. NIVEL SEMI-INTENSIVO
Este nivel de manejo es muy común en cultivos de tilapia de pequeña
escala, donde el capital es limitado o no existe disponibilidad de alimento de
buena calidad.
Los estanques reciben fertilización orgánica y/o inorgánica para
incrementar la productividad del agua o también se brinda alimento
suplementario como subproductos agrícolas. Se realizan recambios parciales
de agua de 5 % – 10 % día.
2.1.2.8.3. NIVEL INTENSIVO: CON AIREACIÓN DE EMERGENCIA
En sistema de cultivo se realiza en estanques donde el ingreso y
descarga del agua se encuentran controladas. El alimento esta conformada por
pellets de alta calidad, con una ración diaria entre 2 % y 4 % de la biomasa. La
aireación se realiza sólo cuando se produce una repentina baja en la
concentración disuelto en el agua.
65
En este nivel el costo de alimentación incrementa el costo de producción
por unidad de área, pero éste se diluye debido a los mayores rendimientos
obtenidos,
los
que
se
encuentran
en
un
rango
de
5 000 – 10 000 kg/ha.campaña.
2.1.2.8.4. NIVEL INTENSIVO: CON AIREACIÓN DE RUTINA
Este sistema de cultivo se emplea cuando el ingreso y descarga del
agua se encuentra completamente controlado. Los pellets proveen todos los
requerimientos nutricionales de la tilapia. La aireación se emplea para
mantener los niveles deseados de oxígeno, no se realiza recambio de agua.
Los principales limitantes en la calidad del agua en este nivel de cultivo son
amonio alto y baja concentración de oxígeno disuelto.
2.1.2.8.5. NIVEL INTENSIVO: CON AIREACIÓN CONTINUA Y RECAMBIO
DE AGUA
Este cultivo esta destinado a lugares donde el costo de los terrenos es
elevado y existe un escaso suministro de agua. El cultivo se realiza en
pequeños estanques donde se encuentra controlado el ingreso como la salida
de agua.
La aireación es continua y el flujo de agua permite la remoción de
sólidos de la unidad de cultivo. El recambio de agua es de 2 a 3 veces al día en
función de la necesidad de la descarga requerida de nitrógeno.
2.1.2.8.6. NIVEL INTENSIVO: CON FLUJO CONTINUO DE AGUA
Este tipo de cultivo se realiza en estanques pequeños donde se alimenta
solo con pellets. No se realiza aireación mecánica porque el recambio es
suficiente para mantener un nivel alto de oxigeno disuelto y también para
remover los residuos de nitrógeno. El recambio generalmente es de 1 a 3
veces por hora.
2.1.2.8.7. NIVEL INTENSIVO: USO DE JAULAS
Las jaulas son estructuras en forma de cajas, selladas con mallas o
redes. El tamaño de la malla retiene a la tilapia dentro de la misma y permite el
cambio de agua así como la remoción de desechos. Estas jaulas se colocan en
lagos, reservorios, ríos y en el mar. Este tipo de cultivo se realiza con
individuos monosexo en jaulas de pequeñas dimensiones y la alimentación se
realiza a través de pellets. El pellets utilizado es de tipo flotante (extruido), para
prolongar el periodo de hundimiento y facilita el consumo por parte de los
66
peces. Al fondo de la jaula se coloca una malla para poder retener el alimento y
evitar perdidas debido a la corriente de agua originada por el movimiento del
mismo pez.
El cultivo en jaulas no es muy practicado en estanques, pero si en lagos,
reservorios y remansos de ríos. Las jaulas en general, deben estar
suspendidas sobre el fondo del cuerpo de agua para evitar el desove dentro de
la jaula. El riesgo de predadores acuáticos es controlable, (Auburn University,
1996; citado por Klinge & cols., 2000)
2.1.2.8.8. NIVEL INTENSIVO: CON REHUSO DE AGUA
Este nivel de intensidad se practica normalmente solo en regiones donde
la temperatura del agua decae estacionalmente por debajo de los niveles
aceptables para la tilapia, o cuando se cuenta con limitaciones en cuanto a la
disponibilidad de agua. Muchos sistemas están localizados en ambientes
cerrados (bajo techo) lo que permite un mejor control de las condiciones
ambientales. Los niveles de temperatura del agua, oxigeno disuelto, amonio y
nitritos son controlados mediante la combinación de recambio de agua,
aireación y uso de biofiltros. Los biofiltros permiten reducir el costo de
calentamiento y conservación del agua. El agua es aireada en tanques o
mediante el suministro de oxigeno puro para mantener niveles altos de oxigeno
disuelto.
El riesgo por fallas en el cultivo es alto, la mortalidad de los peces puede
ocurrir en pocos minutos causa del alto nivel de densidad de cultivo.
El costo de producción unitario es más alto que en sistemas de cultivo
menos intensivos, lo que hace difícil competir con tilapia procesada, cultivada
en climas tropicales, (Auburn University, 1996; citado Klinge & cols., 2000).
2.1.3. LA TILAPIA Y EL PROCESO DE INDUCCIÓN SEXUAL
2.1.3.1 ASPECTOS BIOLÓGICOS DE LA DETERMINACIÓN DEL SEXO DE
LOS CICHLIDAE.
Los mecanismos de la determinación del sexo de las tilapias se
encuentran en una condición lábil primitiva, tal como acontece en la mayoría de
67
los peces teleósteos, (Lagler & cols., 1984; citado por Marcillo y Landivar,
2000).
El sexo en la tilapia lo definen los cromosomas sexuales; esto ha sido
demostrado en varios trabajos, en la que se establecen que los cromosomas
sexuales juegan un papel importante en la determinación del sexo (Jalabert &
cols., 1971, Guerrero 1975, Shelton & cols., 1978 y Clahoun & Shelton, 1983;
citados por marcillo & Landivar, 2000).
Moav, (citado por Arredondo & cols., 1994), propone que el sexo lo
define los cromosomas sexuales y un gen sexual autosómico simple que tiene
alelos múltiples.
En 1988 se establece la participación del “Factor determinante del
Testículo” (FDT) en un gen de los cromosomas para Y, que libera una
sustancia proteica que preserva la definición Testicular y demás estructuras del
sistema reproductor de un macho. La no presencia de FDT, provoca pérdida
de la señal específica de la proteína, por los que los órganos sexuales que se
encuentran indiferenciado se definen como ovarios y otras estructuras del
sistema reproductor de la hembra (Tave, 1989; citado por Marcillo & Landivar,
2000).
De las investigaciones realizadas de los diferentes fenotipos del género
Oreochromis, se determinó un número diploide de 44 cromosomas
autosómicos, tal como se presenta en los cariotipos elaborados en machos y
hembra fenotípicas (Castillo, 1994; citado por Marcillo & Landivar, 2000).
Es así que para poder tener un mejor entendimiento del mecanismo de
la diferencia sexo en el género Oreochromis, se propone apreciaciones
arbitrarias, los cuales son:
1) Similar a la especie humana. En donde al macho es el que va a
determinar el sexo de los descendientes.
XY para el macho (heterogamético)
XX para la hembra (homogamético)
Las especies que presentan este tipo de características son:
O. nilóticus (Jalabert & cols., 1974)
68
O. mossambicus (Chen, 1969)
2) El opuesto al caso anterior. En donde la hembra por poner los gametos
diferentes es el que determina el sexo de los descendientes
ZZ
para el macho (homogamético)
WZ para la hembra (heterogamético)
Entre los rapaces que presentan estas características tenemos:
O. urolepis hornorum (Chen, 1969)
O. aureus (Guerrero, 1975)
Lovshin (1982; citado por Marcillo y landivar, 2000), asegura que el
Gene con el factor determinante para macho con cromosoma Z ejerce una
dominancia con respecto al Gene con el factor determinante para las hembras
en el cromosoma X, mientras que el Gen con el factor determinante para
machos con el cromosoma Y es ligeramente dominante sobre el Gen con factor
determinante para las hembras con el cromosoma W, lo cuál unido a los Genes
de origen autosómico A y a ademas el FDT permiten explicar las alteraciones
frecuentes en las proporciones mendeliana de sexos esperados.
2.1.3.2 INDUCCIÓN SEXUAL EN LARVAS DE TILAPIA
El impulso definitivo a la producción comercial de tilapia evitando el
sobrepoblamiento de los estanques y disminuyendo las áreas requeridas para
los reproductores y alevinaje, se inicia con los trabajos de Clemens en 1968,
quien emplea por primera vez un estrógeno masculinizante, la 17 alfa
Metiltestosterona adicionada al alimento (10 - 40 mg/kg) para producir progenie
100 % machos en O. mossambicus, trabajos complementarios en forma
independiente con las tesis de grado de Guerrero (1975) y Nakamura (1975)
adicionando 60 mg/kg de alimento, (Castillo, 2001).
Vega (1984), aplica el método usado por Guerrero, utilizando la hormona
mesterolona, conocida como Provirón, determinando una cantidad de 40 a 60
mg de hormona por kilo de alimento.
69
Hoy en día se tiene conocimiento que existe gran diferencia entre la
hormona Metiltestosterona y la mesterolona, sobre todo en la eficiencia y
cantidad, recomendándose 90 mg/kilo de alimento de hormona mesterolona o
Provirón a usar en la inducción sexual.
En cuanto a la Metiltestosterona, trabajos realizados
por Rodríguez
(1989), con la aplicación de diferentes cantidades de hormona en la inducción
sexual de tilapia roja(15, 30 y 60mg), dieron resultados fuera de lo común, al
concluir que las mejores producciones (y mejor eficiencia de inducción sexual),
se dieron con las de menor cantidad.
Esto nos lleva a pensar que aun no esta definido este punto, y mas aún
si hoy en día el reducir costos con menos insumos, es lo que se busca para
obtener mayores rendimientos.
Así mismo, se tiene conocimiento por experiencia que ya no solo se
puede confinar la inducción sexual al uso de sofisticados laboratorios y tanques
de concreto, ya que también se puede realizar la inducción sexual en
estanques de tierra usando jaulas (hapas), aprovechando la productividad
primaria como fuente de nutrientes y vitaminas que no se encuentran en los
alimentos balanceados, tal como se comprobó en trabajos realizados por el
autor en la ciudad de Piura.
Según Marcillo & Landivar (2000), para la producción al nivel comercial
de alevinos machos (monosexo) de Tilapia, se aprovecha la condición lábil
primitiva en la definición del sexo de estos peces, las características biológicas
de las tilapias que permite la aplicación de la inducción sexual son:
a.
El sexo en las Tilapias es muy inestable poco después de la
eclosión de las larvas, y puede ser afectado por factores
externos e internos.
b.
El sexo en estos peces se define en un estadio final del
desarrollo de la post larva, en una longitud que puede variar
dependiendo de la especie de entre 18 y 20 mm (Hepher &
Pruginin, 1985) o 15 y 18 mm (Popma, 1987); citados por
Marcillo & Landivar, 2000.
70
La inestabilidad sexual de las larvas recién eclosionados permite poder
intervenir para determinar el sexo final en toda o casi toda la población de
peces descendientes. Para la obtención de una población de machos es común
la aplicación de una hormona andrógena por vía oral, lo cual nos permite
obtener una descendencia de entre 95 y 99% machos, los cuales servirán para
un cultivo monosexual con un alto rendimiento en la producción por hectárea
en piscigranjas comerciales, (marcillo & Landivar, 2000)
2.1.3.3. DESCRIPCIÓN DE LOS ANDRÓGENOS
Los andrógenos son compuestos derivados del ciclo pentano – per
hidrofrenanteno, se encuentran estructurados por cuatro anillos unidos entre si,
de designación literal; los anillos: A y B y C se encuentran conformados por
seis átomos de carbono, mientras que el anillo D contiene cinco átomos de
carbono. La numeración de los
átomos de carbono se efectúan
correlativamente, (marcillo & Landivar, 2000).
Los andrógenos pertenecen al grupo de los compuestos denominados
C19 derivados del androstano. La testosterona, hormona sexual masculina en
forma natural se caracteriza por presentar un grupo hidróxilo en la posición de
C17, este compuesto sirve de referencia para la síntesis de algunos
compuestos importantes que presentan efectos diferentes:
1. Mediante la esterificación con el ácido propionico o con el ácido
enántico se obtiene compuestos androgénicos de elevada actividad con
diferente duración de su efectividad.
2. Introduciendo un grupo metilo en posición C17 se obtiene la
metiltestosterona, andrógeno de gran efectividad por vía oral.
3.
Introduciendo un grupo etinilo en la posición del C17, y además
eliminando en forma simultánea el grupo metilo en la posición de C19,
se obtiene un gestágeno, que también presenta efectividad por vía oral.
Los órganos testiculares y los ovarios segregan testosterona (Ufer,
1972).
71
2.1.3.4. ACCION HORMONAL
Los andrógenos actúan sobre los órganos y los caracteres sexuales
secundarios, actúa en el sexo masculino, así como también en el femenino. Su
acción fundamental consiste en el desarrollo de los caracteres sexuales
secundarios; comportamiento reproductor; maduración de los gametos en los
machos (Lagler & cols., 1984; citado por Marcillo & Landivar, 2000), los
andrógenos también contribuyen al crecimiento general y a la síntesis de
proteína tal como acontece con las proteínas miofibrilares, presentado por la
mayor masa muscular de los machos en relación a las hembras en muchos de
los vertebrados (Eckert & cols., 1992; citado por Marcillo & Landivar, 2000). En
el sexo femenino se produce el fenómeno de virilización y puede inhibir y
suprimir la maduración de los folículos ováricos.
2.1.3.5. ANDRÓGENOS UTILIZADOS EN EL PROCESO DE LA INDUCCIÓN
QUÍMICA DEL SEXO.
Dentro de la tecnología de producción de alevines monosexo de tilapia,
se utilizan los andrógenos que son activos por vía oral, con dosis que varían
entre 40 a 80 miligramos por cada kilo de alimento, dependiendo del tipo de
hormona empleada, así:
•
Metiltestosterona (Mt)
•
Etiniltestosterona (Et)
17α - Metiltestosterona (17α - hidroxi – 17 - α - metil 4 – androstan 3 –
ona).Es el andrógeno que mas se emplea en los procesos a escala comercial,
por las ventajas que presenta este fármaco, como es la inmediata disolución
de sus cristales en el alcohol.
El 17 – alfa – metiltestosterona, se caracteriza porque posee el grupo metilo en
el carbono 17.
Cabe mencionar que este medicamento se encuentra aprobada por la
FDA de los EE.UU.(Figura 17)
72
Figura 17. Estructura química de la 17 alfa-metiltestosterona
OH
17
12
11
13
16
14
15
9
1
10
2
8
5
3
CH3
7
6
4
Fuente : Tomado de A. Arias, 1995; citado por Marcillo & Landivar, 2000
Figura 18. Estructura quimica de la etiniltestosterona
O
CH2 – CH3
17
12
11
10
2
14
15
8
5
4
16
9
1
3
13
7
6
Fuente : Tomado de A. Arias, 1995; citado por Marcillo & Landivar, 2000
73
Etiniltestosterona (17α - hidroxi – 17 - α - etil 4 – androstan 3 – ona).La etiniltestosterona, da resultados análogos a la Metiltestosterona, se
caracteriza porque requiere de varias horas para que
los cristales puedan
disolverse en el alcohol con temperaturas del medio ambiente (Hepher y
Pruginin, 1985; citado por Marcillo & landivar, 2000)( Figura 18)
Arias (1995; citado por Marcillo & Landivar, 2000), demostró la eficacia
de Mesterolona (ME), como hormona sustituta de la 17 α – Metiltestosterona, la
Mesterolona (17α - hidroxi – 1 - α - metil 5 – androstano 3 – ona), tiene la
característica de poseer un grupo metilo en el carbono 1.( Figura 19)
Figura 19. Estructura química de la mesterolona
OH
17
12
CH3
11
10
2
14
15
8
5
4
16
9
1
3
13
7
6
Fuente : Tomado de A. Arias, 1995; citado por marcillo & Landivar, 2000
2.1.3.5.
EFECTIVIDAD DE LA INDUCCION SEXUAL EN LOS CICHLIDAE
El éxito de la inducción química del sexo de las tilapias, está basado
principalmente en los resultados positivos obtenidos con O. niloticus, con el
mismo procedimiento hormonal se ha tratado otras variedades de tilapia como:
O. mossambicus, O. aureus, O. hornorum y el híbrido rojo de tilapia.
74
2.1.3.6.
EFECTOS QUE TIENE EL CONSUMO DE PESCADO TRATADO
CON HORMONA EN LA ALIMENTACIÓN DEL HOMBRE
El justificativo
uso de los compuestos androgénicos en la inducción
química del sexo en las tilapias, que establece que sea apto para el consumo
humano, se basa en las consideraciones de la cantidad total de hormona que
es suministrado a los peces durante el proceso y la tasa de eliminación,
finalizado el tratamiento de la inducción, es pequeña en comparación con las
dosis normales usados en los humanos, (Marcillo & Landivar, 2000)
La dosis mínima recomendada de testosterona, para el hombre es 100
veces mayor que para el total consumido por la tilapia durante la inducción
química del sexo. En realidad, la mayor cantidad de la dosis de hormona es
metabolizada y eliminada antes que el pez alcance su tamaño comercial;
paralelamente el hígado convierte al compuesto androgénico en sustancias
mas solubles, y al final es eliminado en la orina y en la bilis, (Marcillo &
Landivar, 2000).
Cuando la Metiltestosterona es suministrado oralmente durante el
tratamiento de la reversión química del sexo, el 90% de la hormona es
excretado en las 24 horas siguientes, y solo 3 semanas después menos del 1%
de la hormona permanece en el cuerpo del pez, (Marcillo & Landivar, 2000).
En el engorde a tamaño comercial, alevinos, juveniles y adultos, el pez
continua eliminando el remanente de 1% de la hormona.
En el momento de captura de poblaciones inducidas, el contenido de
hormona es insignificante en los peces, si se toman en relación con la cantidad
de hormona que los peces presentan en un medio natural para un adulto
macho de tilapia.
El uso de Metiltestosterona para la reversión química del sexo de los
peces para consumo ha sido aprobado por
el departamento de drogas y
alimento de los EE. UU, (Popma & Greem, 1990).
2.1.4.
AGUAS RESIDUALES TRATAMIENTO – REUSO
2.1.4.1.
BASES CIENTÍFICAS RELACIONADAS CON EL TEMA
El ser humano, siempre ha buscado un elemento sustituto de la escasez
de recursos de aguas dulces, bien por su inexistencia o por su inutilización por
la contaminación, el hombre actual tiene su mirada puesta en la desalinación
75
del agua de mar, pero el costo energético necesario incluso con el empleo de
energía atómica, si bien es aceptable para el consumo doméstico, es alto para
su uso en agricultura e industria.
Hay quien piensa, como solución del recurso de agua,
las lluvias
artificiales y la modificación de la condiciones meteorológicas. Esta teoría va
contra el pensamiento de científicos, como Waggoner, Sargent y McDonald,
que insisten en las precauciones necesarias antes de efectuar modificación
alguna.
Los investigadores, empeñados en la reutilización completa, parten del
aprovechamiento de la energía solar, residuos, CO2, orina y agua, buscando
regenerar oxígeno y agua.
Para ellos, la ecuación fundamental viene dada por la materia residual +
organismos
gases respirables y agua potable.
En la Acuicultura, la producción de organismos acuáticos bajo
condiciones controladas, y los métodos de reciclaje de desperdicios orgánicos
y excretas de fuente humana y de la agricultura, son originalmente de China
donde ambas actividades están integrados de la manera mas perfecta,
(Ludwoig, 1989).
El rehúso de desperdicios orgánicos y excretas para propósitos de
acuicultura esta proporcionando un suministro libre de fertilizantes orgánicos,
los productos perdidos son reciclados en alimentos valorables, el ambiente
esta protegido de la polución incontrolable e incluyendo el biogás biodigestor
dentro del sistema es posible obtener adicionalmente de las pérdidas de
energía libre, (Ludwoig, 1989).
En China no hay nada como los desperdicios (basura), la basura es un
recurso mal ubicado que se puede convertir en valuable para otro producto
(FAO 1977; Taiganides,
1978). Asi, como
Edwards (1985; citados por
Ludwoig, 1989), manifiesta “Sin el reciclaje de excretas los chinos no serían
capaces de mantener su producción de agricultura”.
También en otras partes del mundo el reuso de las excretas y la
integración de la labranza animal y la acuicultura se está volviendo una práctica
más y más standard y hoy en día está ampliamente aplicada en el sudeste de
Asia, India y también Europa.
76
La razón principal para añadir excretas (aguas crudas sin tratar), a los
estanques de peces es para proveer materiales orgánicos para el crecimiento
de las bacterias. El fitoplancton forma la base de la cadena alimenticia que
soporta el crecimiento del pez y otros organismos acuáticos.
La composición química del abono usado en la acuicultura cumple todos
los requerimientos para el crecimiento de la fauna bacterial y fitoplantónica.
Las excretas presentan altos valores de nitrógeno, fósforo y potasio. En
la tabla 18 están puestos en una lista los principales componentes de las
excretas que son ampliamente usadas en acuicultura.
Tabla 18. Principales componentes de las excretas usadas en acuicultura
VACA
CHANCHO LECHERA
Agua (%)
71
79
POLLO
56
PATO
57
HOMBRE
HECES
ORINA
70-85
93-96
En % de Materia Seca
Materia Orgánica
86
81
59
60
88-96
65-85
Nitrógeno
1,7
2,4
3,6
2,3
5-7
15-19
Fósforo
1,4
0,5
3,4
3,3
3-5
2,5-5
Potasio
1,0
2,4
2,0
1,4
1-25
3,0-4,5
Calcio
0,3
_
5,5
4,2
4,5
4,5-6,0
Recopilado de: Woynarovich, 1979; Shroeder, 1980; citados por Ludwoig, 1989
En vista del incremento de los costos mundiales para los fertilizantes
químicos y para los suplementos alimenticios para la acuicultura, el uso de
excretas de los animales domésticos y también del hombre están ganando más
y más importancia para la fertilización de estanques, especialmente en países
tropicales donde varias especies de peces son cultivados si se mantienen en la
parte baja de la cadena alimenticia como las tilapias, las
especies de carpa
china, la carpa común, el milkfish (Chanos chanos) y los salmonetes (Mugil
spp.), (Ludwoig, 1989).
Sin embargo el reuso de las excretas de los animales domésticos y del
hombre sin previo tratamiento, tiene dos consecuencias: por un lado las
77
excretas proveen una fuente barata de nutrientes para promover el crecimiento
del fitoplancton y por este alimento para los organismos acuáticos; pero por
otro lado el estiércol sin tratar, principalmente los humanos, contiene una
amplia variedad de bacterias, virus, protozoos y nematelmintos patógenos, que
pueden ser transmitidos vía organismos acuáticos al hombre y por ende
presentar un posible riesgo de salud pública.
Entonces queda definido que el uso de excretas sin un previo
tratamiento para disminuirle la carga bacteriana y microbiana, representa un
peligro para la salud, el cual no se equilibra con el beneficio en el aporte de
nutrientes, por tal motivo actualmente se esta utilizando un sistema de
tratamiento natural o biológico que disminuye o elimina este riesgo, y provee
agua de mejor calidad para la acuicultura.
2.1.4.2.
BASES TEORICAS DE LA TECNOLOGÍA ACTUAL SOBRE EL
TRATAMIENTO DE LAS AGUAS RESIDUALES
Con relación a las aguas residuales urbanas normales, se sabe que la
contaminación queda integrada por una serie de productos inorgánicos y
orgánicos, siendo éstos los que realmente producen las perturbaciones más
importantes.
Se sabe también que de forma natural, millones de microorganismos,
como trabajadores incansables, utilizan para su alimentación la transformación
de la materia orgánica de los residuos, siendo los elementos esenciales que
garantizan la permanencia de la vida, manteniendo, entre otros, los ciclos
esenciales del nitrógeno y carbono. Estos procesos, debidos a la actividad de
los organismos, se conocen bajo la denominación de “metabolismo”.
También es sabido que las reacciones químicas desarrolladas en el
metabolismo quedan limitadas por la temperatura y presión, parámetros que
pueden afectar a las células vivas, y se sabe que dichas reacciones químicas
son posibles en presencia de catalizadores orgánicos, que son compuestos
proteínicos producidos por las células vivas, y que se denominan “enzimas”.
Puede decirse que el desarrollo normal de una depuración biológica
estriba en la
adecuada producción las enzimas en el metabolismo de las
células.
78
Tomando en cuenta la captación de oxígeno por los microorganismos,
se contemplan dos procesos totalmente diferenciados, los procesos aeróbicos
y anaeróbicos.
De acuerdo con la OMS (1988; citado por Rivas, 1997), menciona que
las lagunas de estabilización son la alternativa de tratamiento no convencional
que teniendo un buen diseño, no requiere de desinfección con cloro, lo que se
traduce en una reducción de costos y prevención en la formación de
trihalometanos (agentes cancerígenos). El agua tratada en sistemas lagunares
bien diseñados y operados, cumple con las normas establecidas para su reuso
en riego, algunos tipos de industria y en acuicultura.
Así mismo Buck (1976, citado por Rivas, 1997), menciona que en
Hungría se utiliza lagunas con peces para mejorar la calidad de agua de
efluentes de plantas de tratamiento antes de ser descargadas al rio Blaton.
Gloyna (1971; citado por Rivas, 1997), recomienda el uso de peces de los
géneros Gambusia, Tilapia y Poecilia para el control de mosquitos (larvas de
los géneros Culex y Anopheles) en lagunas con problemas de operación,
principalmente en lagunas facultativas y en las de maduración.
Otro sistema actual sin colaboración de microorganismos es el
tratamiento químico, ya usado desde 1762. este tiene como objeto el separar
del agua los elementos extraños por precipitación, rompiendo, mediante la
atracción de los coagulantes, la estructura coloidal de las partículas.
2.1.4.3.
USO DE AGUAS RESIDUALES TRATADAS
En regiones como América Latina y el Caribe, aproximadamente el 49%
de la población tiente servicios de alcantarillado, colectándose diariamente 40
millones de metros cúbicos de aguas residuales que se vierten a los ríos, lagos
y mares. Si se lograra ampliar este servicio básico al 90% de la población,
estaría arrojando más de 100 millones de metros cúbicos de desagües que
agravarían mas la contaminación, (Tabla 19).Del volumen colectado por los
sistemas de alcantarillado, menos del 10% recibe tratamiento previo antes de
ser descargado a un cuerpo de agua superficial o antes de su uso para el riego
directo de productos agrícolas (OMS, 1985; citado por León & Moscoso, 1996).
79
Tabla 19. Distribución de coliformes fecales en los ríos
N° DE COLIFORMES
N° DE RIOS EN CADA REGION
FECALES POR 100 ML.
América
A. Central y
Europa
Asia y el
del Norte
del sur
< 10
8
0
1
1
10 - 100
4
1
3
2
100 - 1 000
8
10
9
14
1 000 – 10 000
3
9
11
10
10 000 – 100 000
0
2
7
2
> 100 000
0
2
0
3
Numero total de ríos
23
24
31
32
Pacifico
Fuente : CEPIS – OPS – OMS (1996)
De acuerdo con Carrasco y Muños (1995), se descargan al Pacífico, sea
en forma directa o indirecta a través de ríos, sin ningún tratamiento y en
algunos casos con tratamientos deficientes, 1 343,5 miles de metros cúbicos de
efluentes municipales por año, que significan una carga anual de 397 miles de
t/año de DBO, con esas descargas ingresan al Pacífico sudeste 81,4 miles de
t/año de nitrógeno y 7,1 miles de t/año de fósforo.(tabla 20)
Tabla 20. Carga anual de efluentes domésticos en la región del pacífico
sudeste a 1994.
PAIS
Colombia
VOL.
TOTAL
MILES
t/años
DBO5
STD
SS
N
P
Millones
M/a
En miles de toneladas al año
45,70
7,26
12,17
26,00
1,32
0,29
Chile
672,40
166,90
169,90
309,20
27,95
3,38
Ecuador
128,30
48,28
73,89
54,00
4,89
0,60
Perú
418,70
124,00
229,70
125,89
20,77
2,51
78,20
50,55
16,47
29,40
26,62
0,32
1 343,40
396,99
397,86
648,51
81,55
7,10
Panamá
P/SE
Fuente : Carrasco y Muños, (1995)
80
La mayor producción de desechos domésticos se presentan en Chile y
Perú (73% de la carga total que ingresa al pacifico regional por este frente). Las
áreas mas contaminadas con estas descargas corresponden a Tumaco y
Buena Ventura en Colombia; Iquique, Valparaíso y Concepción en Chile; varias
localidades de la provincia de Guayas, en especial Guayaquil y Manta en
Manabi, Ecuador; Bahía de Panamá, en Panamá y Callao, Miraflores en Perú,
(Tabla 21).
Tabla 21. Principales áreas contaminadas con descargas domesticas en el
pacífico sudeste al 1994.
PAIS
AREAS DBO5
miles t/a
% CON
RESPECTO AL
PAÍS
COLOMBIA
Buena Ventura
3,97
54,7
Tumaco
0,74
10,2
CHILE
Iquique
6,32
16,4
Valparaíso
11,79
30,7
Concepción
6,84
17,8
ECUADOR
Pta. Guayas
30,15
62,8
Guayaquil
18,85
39,1
Pta. Manabí
10,13
21,0
PANAMÁ
B. Panamá
50,55
s.i.
PERÚ
Callao
8,91
7,2
Chimbote
3,92
3,2
Lima
80,59
65,0
Trujillo
10,96
8,8
Fuente : Modificada de Carrasco y Muños op. Cit.
% CON RESPECTO
A LA REGIÓN
1,0
0,1
1,6
3,0
1,7
7,6
4,7
12,7
2,2
0,9
20,2
2,7
En el Perú el 72.2% de materia orgánica se descarga al mar del Callao y
Miraflores como DBO contenida en los afluentes municipales. El volumen total
de descargas domésticas al mar peruano supera los 418,75 millones de
m3/año, con una carga orgánica asociada estimada en 123,9 miles de t/año de
DBO5. De este Volumen, Lima y Callao vierten 330 millones de m3/año y 89,5
ton/año de DBO5. Otras ciudades importantes comprometidas en la
contaminación corresponden a Trujillo con 40,6 millones m3/año y 10,96 miles
t/año de DBO5 y Chimbote con un aporte de 3,92 miles de t/año de DBO5
(Sánchez y Muños, 1995).
81
La descarga de estas aguas residuales sin ningún tratamiento
contaminan las playas y los productos hidrobiológicos que crecen en las
cercanías. Esta situación también ocasiona un grave impacto económico sobre
las exportaciones de productos hidrobiológicos y el turismo.
La disposición de aguas residuales sin tratamiento previo en aguas
superficiales afecta su posterior uso. Mucho de los ríos y lagos utilizados como
fuentes de abastecimiento de agua tienen altos niveles de contaminación
microbiológica; 16 ríos de América superan los 1 000 coliformes fecales/100 ml
y el nivel de riesgo al que esta expuesto la población es alto si se considera
que menos del 50% de los servicios del agua potable produce agua
desinfectada. Esto es la causa de la propagación de enfermedades en la
población, como la diarrea, causante de muerte en la población infantil menor a
los 5 años a nivel mundial, debido al consumo del agua contaminada, (León &
Moscoso, 1996).
La capacidad de renovación de los cuerpos de agua es finita, no
obstante, muchos asumen que la naturaleza puede asimilar en forma ilimitada
todo tipo de contaminantes. Es por ello que en los niveles de decisión política
de nuestros países no se ha otorgado la prioridad necesaria a la
descontaminación de los cursos superficiales de agua.
Recientemente el estado peruano ha iniciado una campaña destinada a
realizar el tratamiento de las aguas servidas de 13 distritos de Lima,
aproximadamente unos 600 millones de litros de aguas servidas. Este proyecto
denominado proyecto de aguas residuales de Lima metropolitana (Promar),
cuenta con una inversión de unos 150 millones de dólares, financiado por el
gobierno japonés, el plazo de ejecución de la obra es de dos años y medio; las
obras consisten en llevar una parte de las aguas de Lima hacia las lagunas de
San Bartolo y la otra parte será previamente tratada en la Chira y después
evacuada, a través del emisor submarino, tres kilómetros mar adentro. Estas
obras serán utilizadas para actividades de agricultura, ganadería, y otras
relacionadas en la localidad de San Bartolo, en un área de unas 8000 has.,
pero no contemplan la actividad de la acuicultura, actividad que debería ser
tomada más en cuenta y apoyada por instituciones como las Universidades, los
cuales deberían ser los primeros en exigir proyectos en el área, (El Comercio y
La República, 1998).
82
2.1.4.4. Tratamiento de aguas residuales: Objetivos y selección de
tecnologías en función al tipo de rehúso.
En los países en desarrollo el objetivo prioritario del tratamiento de las
aguas residuales debe ser la remoción de parásitos, bacterias y virus
patógenos pues son males endémicos en nuestros países y no la remoción de
materia orgánica y nutrientes, que si es el principal objetivo del tratamiento en
los países desarrollados, en donde una tifoidea o un caso de parasitismo son
excepcionales.
La opción tecnológica mediante la cual se alcanza plenamente el
objetivo de “no patógenos” corresponde a las lagunas de estabilización. Las
investigaciones realizadas por el CEPIS, demostraron la gran eficiencia de la
remoción de parásitos (huevos de helmintos y quistes de protozoos), virus y
bacterias patógenas, incluido el Vibrio cholerae, ningún sistema convencional
puede competir con la eficiencia de remoción de patógenos que se logra en las
lagunas a menos que se adicione un pulimento al proceso de desinfección del
efluente, que encarece y hace más compleja la operación y el mantenimiento.
Sin embargo, al considerar esta alternativa tecnológica se debe tomar en
cuenta la disponibilidad y costo del terreno, variable que puede limitar la
elección de lagunas de estabilización. La decisión final deberá obedecer a un
análisis económico financiero que involucre los costos de inversión inicial,
operación y mantenimiento.
Los métodos convencionales, tales como filtros biológicos, lodos
activados, zanjas de oxidación, entre otros, tienen la desventaja de tener altos
costos de inversión, dificultades de operación y mantenimiento, y requiere de
desinfección para garantizar una calidad microbiológica comparable a las
lagunas de estabilización. Por otro lado, las lagunas de estabilización requieren
operaciones y mantenimiento mínimos ya que sus procesos biológicos son
naturales y por lo tanto no necesitan equipo electromecánico, combustible ni
energía eléctrica, adecuándose de esta forma a las posibilidades económicas,
de espacio, valor de la tierra y de los recursos de los países de la región.
Los efluentes de las lagunas de estabilización, por su calidad
bacteriológica, pueden usarse en cualquier actividad agropecuaria, desde la
horticultura, los cultivos agroindustriales y acuicultura hasta la forestación. El
83
dimensionamiento de estos sistemas estará ligado a la calidad de los efluentes
requerido para cada tipo de uso.
Aprovechando los efluentes de excelente calidad bacteriológica y de
riqueza de nutrientes, es posible obtener beneficios de una producción
agropecuaria próxima a los centros de consumo. El uso de las aguas
residuales también permiten obtener otros beneficios, como el uso eficiente del
agua, provisión de abonos naturales y generación de alimentos, empleo e
ingresos económicos, y la ampliación de la frontera agrícola en zonas
desérticas como la costa peruana.
De la tabla 22, podemos observar que en el mejor de los casos, los
procesos convencionales de tratamiento pueden remover dos ordenes de
magnitud de bacterias equivalentes, en un porcentaje de remoción de 99%. Las
aguas residuales de tipo doméstico tienen bacterias del orden de 1010
por
100ml ; en América Latina, la concentración típica de coliformes fecales (CF)
en las aguas residuales crudas es 108 por 100 ml con un tratamiento
convencional el efluente tendría una concentración de coliformes fecales
de106/100 ml, lo que corresponde a un agua de muy mala calidad desde el
punto de vista microbiológico, pero el tratamiento lo ha clarificado y la ha hecho
susceptible de ser desinfectado con cloro.
2.1.4.5. Sistema de tratamiento de Aguas Residuales
Cuando las aguas residuales se descargan en las lagunas de
estabilización, ocurre en forma espontánea un proceso conocido como auto
depuración o estabilización natural mediante fenómenos de tipo físico, químico,
bioquímico y biológico. Este proceso se lleva a cabo en casi todas las aguas
estancadas
con
alto
contenido
de
materia
organica
putrescible
o
biodegradable.
Según la Organización Panamericana de la Salud (OPS), la tecnología
alternativa más recomendada para nuestro contexto socioeconómico es el
sistema de lagunas de estabilización, basado en la actividad biológica de
microorganismos acuáticos, principalmente bacterias y plancton, (León &
Moscoso, 1996).
El proceso se inicia con la captación del crudo de la red colectora de
desagües mediante una unidad diseñada en función al caudal máximo, los
84
Tabla 22. Eliminación esperada de microorganismos por diferentes procesos
de tratamientos.
ELIMINACIÓN ESPERADA DE MICROORGANISMOS
Proceso de
Tratamiento
Sedimentación primaria
• Simple
• Con coagulación
previa
Lodos activados
Biofiltros
Zanja de oxidación
Desinfección
Laguna Aireada
Lagunas de estabilización
Reducción de ordenes de magnitud o reducción de
unidades logarítmicas
Bacterias
Helmintos
Virus
Quistes
0–1
1–2
0–2
1–30–1
0–1
0–1
0–1
0–1
0–2
0–2
1–2
2–6
1–2
1–6
0–2
0–2
0–2
0–1
1–3
1–3
0–1
0–1
0–2
0–4
1–2
1–4
0–1
0–1
0–1
0–3
0–1
1–4
Fuente : Feachem & cols. (1983; citado por León & Moscoso, 1996)
canales de distribución conducen el crudo a los estanques, los cuales son
íntegramente de tierra cuya superficie fluctúa entre 1 ha a 3 ha. Estos
estanques constituyen la primera etapa del tratamiento y se denominan
lagunas primarias de estabilización, su principal función consiste en retener por
sedimentación los elementos sólidos y propiciar su descomposición en
nutrientes orgánicos e inorgánicos de menor peso molecular. Esta degradación
de la materia orgánica la realizan principalmente bacterias aeróbicas y
anaeróbicas hasta su nitrificación total, que originan condiciones favorables
para el desarrollo de las algas.
Luego de un corto periodo de retención (10 a 50 dias), cuya duración
depende de diversos factores, tales como la temperatura del agua y la carga
orgánica se, logra en esta primera etapa la remoción casi total de parásitos y
sus huevos, así como la sedimentación de metales pesados y otros
compuestos de alto peso molecular.
Los sólidos solubles y el agua son evacuados por rebose hacia las
“lagunas secundarias”, de dimensiones similares a la primaria, en las cuales el
desarrollo de organismos autótrofos (principalmente algas unicelulares), da
lugar a condiciones aeróbicas, cuyo principal efecto es la inhibición del
desarrollo de microorganismos patógenos (bacterias y virus), y su posterior
eliminación, ya que las condiciones ambientales no les son propicias. La carga
orgánica que había decaído notoriamente en las lagunas primarias vuelve a
85
incrementarse por el desarrollo del plancton en las secundarias, debido
principalmente a las condiciones favorables de la temperatura del agua;
lográndose además la remoción de coliformes que en esta laguna alcanza
niveles que permiten su utilización en la mayoría de cultivos agrícolas,
incluyendo la acuicultura, con un nivel de riesgo mínimo de contaminación,
tanto para el personal que labora en la planta como para los consumidores de
los productos obtenidos.
La materia orgánica generada en el proceso se incrementa a medida
que el periodo de retención se prolonga.
Al culminar este proceso de estabilización se obtiene un agua, cuya
riqueza en contenido de nutrientes es notable. En promedio, cada metro cúbico
de agua tratada contiene 4,80g de potasio, entre los más importantes.
Si fuese necesario un mayor periodo de tratamiento sin reducir el
caudal del sistema, el agua podría ser derivada a una laguna terciaria cuya
función es permitir el desarrollo de procesos bioquímicos similares a los de las
lagunas secundarias para reducir aún más la carga de coliformes, (Sáenz
,1987; citado por León & Moscoso, 1996).
La principal ventaja de esta tecnología reside en su carácter inercial, ya
que el proceso de estabilización se desarrolla sin intervención alguna de
mecanismos artificiales, características de las otras técnicas ampliamente
difundidas en países industrializados.
Por otro lado, la operación del sistema requiere de escasa mano de
obra necesaria sólo para efectos de control y seguimiento. En tal sentido, la
coexistencia de una actividad productiva integrada al sistema de tratamiento
puede llegar a absorber no sólo los costos de infraestructura del sistema, sino
también los costos operativos.
2.1.4.6.
Directrices sanitarias para la Acuicultura con agua residuales
tratadas
Varias infecciones causadas por agentes patógenos son motivo de
preocupación cuando se emplean aguas residuales en acuicultura. Los
caracoles acuáticos son huéspedes intermedios de varios parásitos helmintos,
incluida la especie Schistosoma. La transmisión puede ocurrir cuando las
personas se bañan en estanques de peces donde hay caracoles infectados, ya
86
que las larvas de los esquistosomas penetran en la piel humana. Ciertas
especies de peces son los huéspedes intermedios secundarios de varios
parásitos helmintos, por ejemplo de la especie Clonorchis (tremátodos). La
transmisión ocurre cuando se consume pescado crudo o mal cocido; los
quistes que contiene la carne de pescado se incuban en el intestino humano.
Algunos helmintos forman quistes en plantas acuáticas comestibles (por
ejemplo, la especie Fasciolopsis se enquista en el abrojo acuático) y la
transmisión puede ocurrir cuando se consume la fruta de la planta. Los peces
que crecen en estanques fertilizados con excretas o que contienen aguas
residuales también se pueden contaminar con bacterias y virus. Estos son
transportados pasivamente en las escamas o las agallas, el líquido
intraperitoneal, las vías digestivas o el músculo de los peces. El pescado que
se consume crudo o mal cocido puede transmitir varias infecciones bacterianas
o víricas.
Strauss (citado por León & Moscoso, 1996), analizó las publicaciones
sobre la supervivencia de agentes patógenos en el interior y la superficie del
organismo de los peces y llegó a la conclusión de que:
a. Es probable que las bacterias invadan el músculo de los peces cuando
éstos se cultivan en estanques con coliformes fecales y Salmonellas en
concentraciones superiores a 104 y a 105 por 100 ml., respectivamente, y
el potencial de invasión muscular aumenta cuando es mayor la
exposición de los peces al agua contaminada.
b. Ciertas pruebas sugieren que hay poca acumulación de organismos
entéricos y agentes patógenos en el interior o en la superficie del tejido
comestible de los peces, cuando la concentración de coliformes fecales
en el agua de los estanques es inferior a 103 por 100 ml.
c. Aún cuando la contaminación es menor, puede haber elevadas
concentraciones de agentes patógenos en las vías digestivas y en el
líquido intraperitoneal de los peces.
Son limitados los datos de campo y de experimentos sobre los efectos
sanitarios del empleo de aguas negras como fertilizantes en acuicultura. Por
87
tanto, se necesita investigar más antes de establecer una norma definitiva
sobre la calidad bacteorológica para piscicultura. Se recomienda, con carácter
provisional, una directriz sobre la calidad bacteorológica de una medida
geométrica de 103 coliformes fecales por 100 ml para estanques de peces. En
vista de la dilución de las aguas residuales que ocurre en la mayoría de esos
estanques, se puede tratar las aguas que alimentan el estanque hasta lograr
una concentración de coliformes fecales de 103 a 104 por 100 ml. Convendría
aplicar la misma norma sobre coliformes fecales al agua de estanques en
donde se cultivan verduras acuáticas (macrofitas) porque en algunas zonas se
consumen crudas.
Esta directriz sobre la calidad bacteriológica, basada en el conocimiento
actual sobre el uso de aguas residuales en acuicultura, deberán prevenir la
invasión microbiologica y virica del músculo de los peces. Los microorganismos
patógenos acumulados en las vías digestivas y líquido intraperitoneal de los
peces pueden presentar un riesgo de contaminación de la carne y otras partes
comestibles del pescado, ocurriendo la transmisión a los consumidores si no se
observan las debidas normas de higiene en su preparación. Por lo tanto, en
beneficio de la salud pública, se debe asegurar el cumplimiento de estrictas
normas de higiene durante el manejo del pescado, sobre todo durante la
evisceración. Esto se puede lograr con mayor facilidad en las operaciones
comerciales antes que en la acuicultura de subsistencia y se necesitan
programas continuos de educación para la salud. La práctica de cocinar el
pescado, común en muchas regiones donde se emplean aguas residuales en
acuicultura, es una importante medida de protección de la salud.
Se sabe que la transmisión de la clonorquiasis y la Fasciolopsiasis, dos
infecciones causadas por helmintos, ocurre solo en limitadas zonas del Asia
Oriental. Dada la preferencia cultural en algunas de estas zonas por el
consumo de verduras acuáticas y pescados crudos, la transmisión sólo se
puede prevenir impidiendo la entrada de huevos al estanque o mediante el
control de los caracoles. Esto último resulta poco probable en la práctica, sobre
todo en los pequeños estanques de subsistencia comunes en Asia. Por ello, el
único medio de control factible consiste en eliminar todos los huevos viables de
trematodes en las aguas residuales antes de que entren a los estanques. Será
preciso eliminar la viabilidad de todos los huevos porque los parásitos se
88
multiplican asexualmente en gran escala dentro de su primer huésped
intermedio.
Existen
consideraciones
similares
para
el
control
de
la
esquistosomiasis, enfermedad endémica en una zona más extensa. Por lo
tanto, la directriz apropiada sobre el contenido de helmintos para el uso de
aguas residuales en acuicultura es la ausencia de huevos viables de
tremátodos. Ese requerimiento se logra fácilmente con el tratamiento en
lagunas.
2.1.4.7. Aspectos de Salud Pública
La posibilidad de que los peces sean vectores, activos o pasivos, de
organismo patógenos bacterianos y virales, fue un gran impedimento sobre los
sistemas de acuicultura con aguas residuales, el cual ya en la actualidad
queda demostrado que con un previo tratamiento a las aguas residuales se
reduce el riesgo al mínimo.
A diferencia de los animales de sangre caliente, los peces normalmente
no sufren de infecciones de Sallmonella, Shigella y otras enterobacterias. Sin
embargo, existía la
controversia sobre si las enterobacterias se pueden
multiplicar en el intestino, mucosa y tejidos de los peces y así convertir a los
peces en vectores potenciales a largo plazo de enfermedades humana, o sí
los peces son simplemente transmisores pasivos. Buras (citado por Léon &
Moscoso, 1996), descubrió que cuando la concentración de patógenos en el
agua del estanque es alta, (estanque sin tratamiento) estos se encuentran no
solo en el tracto digestivo de los peces, sino también en los tejidos. Los
estanques para peces tiene una alta capacidad
natural para purificar el agua
de desecho sin tratar y reducir la cantidad de patógenos, mientras más
patógenos hay en el agua del estanque, mayor es el peligro de su transmisión
por los peces, lo que no ocurre utilizando aguas residuales puramente tratadas,
siendo mucho mejor si se aplica posteriormente la técnica de almacenar una
alta densidad de peces en estanques de agua dulce durante un período de
depuración de 2 o 3 días, anterior a la comercialización.
La técnica de depuración de peces es una buena alternativa, incluso
para el cultivo de peces en agua residuales sin tratar, solo que en este caso el
periodo de depuración debe ser mayor.
89
2.1.4.8.
Actitudes del consumidor
No menos serio que los problemas sanitarios es la actitud del
consumidor hacia al consumo del agua de desecho en los estanques para
peces. No tendría caso cultivar peces en estanques con aguas residuales
tratadas si no se pueden vender los peces.
Esta actitud no está necesariamente relacionada con la
seguridad
higiénica asociada con el consumo de estos peces.
Aún cuando los peces puedan ser consumidos, había cierta oposición
por parte de los consumidores, a pesar de esto, de alguna manera, se pudo
reducir mediante una buena educación y la
difusión de la información
adecuada. La mejor forma de contrarrestar la leve oposición del consumidor
parece ser eliminar al contacto directo entre los peces y las aguas negras, lo
que no ocurre con aguas tratadas, en donde los estanque de cultivo muestran
una alta producción primaria que no se semeja a aguas residuales levemente
tratadas o sin tratar (mal olor, color negro o lechoso, etc) y finalmente con la
técnica de depuración en agua potable mejora las condiciones del pez a ser
consumido, (León & Moscoso, 1996).
2.1.4.9.
El modelo de Acuicultura de Lima (San Juan de Miraflores)
El sistema de tratamiento permitió reducir los niveles de DBO total hasta
rangos de 112 a 68 mg/l. La alta producción de algas se sitúa entre los 1 573
a 718 mg/l de clorofila A, de acuerdo al clima. El amonio total fluctúa entre 2,62
a 0,45 mg/l valores tolerables para la
tilapia del Nilo. La remoción de
coliformes fecales en el proceso de tratamiento confirma que el sistema es
capaz de reducirlos hasta en 5 logaritmos y permite un efluente con niveles de
104. Debido a que los estanques piscícolas trabajan en serie, se logra reducir
la concentración de coliformes en un logaritmo y
obtener el nivel de 103
recomendado por la OMS,(Tablas 23 y 24).
Las características fisicoquímicas del efluente terciario utilizado para
alimentar los estanques de acuicultura se presentan en la Tabla 26. Los
resultados obtenidos en los cultivos experimentales permiten afirmar que es
posible la
acuicultura comercial, asociada al uso eficiente de las aguas
residuales tratadas en lagunas de estabilización.
90
Tabla 23. Limites permisibles de los niveles de coliformes fecales en el sistema
de lagunas de estabilización
EFLUENTES
COLIFORMES FECALES (NMP/100 ml)
Crudo
1,7 E + 09
Primario
6,1 E + 07
Secundario
1,5 E + 05
terciario
1,0 E + 04
Fuente : CEPIS, 1991
Tabla 24. Limites permisibles de los niveles de coliformes fecales en el
producto
ESPECIE
COLIFORMES FECALES (NMP/g)
Oreochromis niloticus
4,0 E + 02
En climas templados como Lima, el crecimiento de tilapia del Nilo es
positivo y similar al obtenido en zonas tropicales durante los meses de verano.
Las tilapias revertidas con un peso inicial de 60 g pueden cultivarse
durante 112 días de calor a densidades de 2 peces/m2 para alcanzar un peso
comercial de 250 g.
La máxima productividad de los estanques de acuicultura durante el
verano fue de 30,79 kg/ha.día, obtenida a partir de una biomasa inicial de 960
kg/ha.
La máxima capacidad de carga permisible se ha fijado en 4 400 kg/ha,
lograda exclusivamente con el alimento natural que aporta el efluente de las
lagunas de estabilización. Dada la alta productividad primaria, en la practica
se ha verificado que la adición de alimento artificial complementario no
consigue elevar la capacidad de carga de los estanques. Pillay (1990) señala
que en Brasil los estanque fertilizados con abonos orgánicos logran altas
producciones de
tilapia, como 1,35 t/ha, sin necesidad de alimento
suplementario. Lovshin (1977) reporta que con poblaciones de tilapia (solo
machos)
se
ha
logrado
cosechar
3,2
t/ha,
utilizando
alimentación
suplementaria.
91
En el período invernal, cuando la temperatura del agua desciende hasta
17 °C, no es factible efectuar una campaña de producción debido a la baja
tasa de crecimiento de la tilapia. Balarín & Hatton (1979) señalan que entre
17,2 °C y 19,6 °C se encuentra el límite inferior para posibilitar el crecimiento
de la tilapia. Por ello, se propone almacenar los peces a manera de una pre
cría invernal hasta que mejore la temperatura.
La supervivencia obtenida en el segundo experimento fue de 88%, valor
normal en el cultivo de tilapia. En cambio, los valores de 80 % y 64%
registrados en los cultivos de invierno, denotan la fragilidad de esta especie
frente a temperaturas bajas.
La campaña de producción en condiciones climáticas como la de Lima,
quedaría conformada en tres fases:
a)
Reproducción, reversión sexual y pre - cría estival, durante los meses
calurosos de diciembre a abril, hasta lograr un peso de 2 g.
b)
Pre - cría invernal, durante los siete meses fríos de mayo a
noviembre hasta alcanzar un peso final mínimo de 60 g.
c)
Producción, durante los cuatro meses calurosos de diciembre a
marzo, hasta obtener un peso comercial de 250 g.
En zonal tropicales, la crianza se puede realizar en forma continua,
acortando la segunda fase a tres meses. Estas tres fases se ejecutarían en
forma simultánea para lograr hasta tres campañas al año.
2.1.4.10. EL SISTEMA DE LAGUNAS DE OXIDACIÓN DE SAN JUAN
a.
Características del sistema
Vinces & cols. (1971; citados por Moscoso y Galecio, 1978), mencionan
que al inicio de 1958 se puso en operación el tratamiento de las aguas
residuales de las
poblaciones aledañas como San Juan de Miraflores,
Pamplona y Ciudad de Dios, ubicados en la zona sur de Lima, mediante el
sistema de lagunas de oxidación, estabilización o biológico .
Dicho sistema esta constituido de un conjunto de lagunas primarias y
secundarias, dispuestas en dos baterías a diferentes niveles que abarcan una
92
extensión total de 21,18 ha, aptas para recibir un caudal total de 460 l/seg de
aguas crudas a razón de 600 kg de DBO/ha.día, soportando un traslado de 250
kg de DBO/ha/día hacia las lagunas secundarias, (Manalti, 1976; citado por
Moscoso & Nava, 1991).
b.
Características del agua
Los valores promedios de los parámetros físico – químicos, medidos en
el sistema de lagunas de oxidación, durante el período de julio de 1988 al 9 de
abril de 1990, se mencionan en la siguiente Tabla 25.
Así mismo la presencia de diferentes géneros de algas en los estanques
de acuicultura, sirven muchas de ellas como alimento para las tilapias (Tablas
26 y 27).
Tabla 25 : Parámetros fisico-quimicos de las lagunas de oxidación.
PARAMETRO
DQO total (mg/l)
DQO soluble (mg/l)
DBO 5 total (mg/l)
DBO soluble (mg/l)
Sólidos suspendidos totales
Sólidos suspendidos volátiles
Fósforo total (mg/l)
Ortofosfatos (mg/l)
Nitrógeno orgánico (mg/l)
Nitratos (mg/l)
Nitritos (mg/l)
Nitrógeno amoniacal (mg/l)
Alcalinidad total (mg/l)
Clorofila A (ug/l)
Caudal en verano (l/s)
Caudal en invierno (l/s)
c.
CRUDO
PRIMARIAS
SECUNDARIAS
TERCIARIAS
562
149
278
67
270
229
7,70
4,02
19,25
202
67
53
15
96
88
4.,73
2,22
8,16
183
53
91
19
111
100
4,76
1,12
10,58
47,49
260
0
30,0
15,1
22,15
210
943
27,9
13,0
7,12
154
1139
26,0
11,1
171
46
80
15
103
94
4,54
1,60
10,55
0,72
0,43
1,78
135
1113
23,8
9,0
Unidad de Acuicultura
La Unidad de Acuicultura; se concluyó su construcción en junio de 1988
como
una
unidad
experimental,
ocupando
una
extensión
de
4
ha
aproximadamente, ubicado dentro de las Lagunas de estabilización de San
Juan, ubicado a la altura de km. 15 ½ hacia la
margen izquierda de la
Carretera Panamericana Sur, el tipo de suelo predominante corresponde al del
tipo franco arenoso, su ambiente corresponde a la zona de vida denominada
93
Tabla 26. Géneros de algas en los estanques de acuicultura
AZUL VERDES
Microcystis
DOMINANTES
VERDES
PIGMENTADAS
Chlorella
Chlamidomonas
Nitzchia
Scenedesmus
Euglena
Gomphonema
Ankistrodesmus
Cyclotella
Agnelium
Sphaerocystis
Pyrobrotris
Oscillatoria
Actinastrum
Phacus
Dietyosphaeriu
Phacolus
SUBDOMINANTES
DIATOMEAS
Navicula
Pediastrum
Eudorina
Pleorodina
Tabla 27. Las algas en los estanques de acuicultura según las estaciones.
ESTACION
TEMPERATURA AGUA (°C)
Invierno
16,4 – 22,6
GENEROS
Ankistrodesmus
Chlamydomonas
Chlorella
Scenedesmus
Verano
23,4 – 28,4
Actinorastrum
Ankistrodesmus
Chlamydomonas
Chlorella
Dietyosphaerum
Euglena
Microcystis
Pediastrum
Scenedesmus
94
desierto desecado subtropical, con
ecosistemas naturales de
escasa
presencia vegetal.
La Unidad de Acuicultura esta constituida por:
-
Doce estanques experimentales de 400 m2 cada uno;
-
Seis estanques de servicio de 100 m2 cada uno;
-
Dos estanques demostrativos de 1 700 m2 y 3 200 m2;
-
Tres estanques de engorde o acabado de 1,2 ha a 1,5 ha cada uno; y
un laboratorio temperado para la producción de alevinos revertidos
de tilapia.
2.2.
ANTECEDENTES DE ESTUDIO
2.2.1.
ANTECEDENTES DEL USO DE ABONOS ORGANICOS
COMO
FERTILIZANTES DEL AGUA
El cultivo de tilapia practicada en mono y policultivo, desarrollado en
asociación a otras actividades agropecuarias como la cría de aves de corral y
ganado diverso (vacuno, porcino, etc.), así como agrícolas, como el cultivo de
arroz han sido reportados, (Stikney & Hesby 1978; Balarin 1979; Pretto 1980;
Schroeder 1980; Woynarovich 1980; citados por Delgado, 1983).
Las modalidades citadas anteriormente han sido desarrolladas desde la
antigüedad (2 500 años a. C.), en países del África (Balarin, 1979),
posteriormente en Asia (Chimits, 1957; Brown, 1977) y últimamente en América
(Collis & Smitherman, 1978; Maddox & cols., 1978; Pretto, 1980; Lovshin,
1980), donde actualmente Costa Rica, Brasil, Cuba y Panamá han logrado
impulsar su producción piscícola utilizando esta especie.
Huet (1973, citado por Velarde, 1986), menciona el uso de fertilizantes
naturales (abonos orgánicos), para promover el desarrollo de las microalgas
en los estanques, como alimento para peces como la tilapia nilótica.
Los abonos orgánicos comúnmente usados son de: bovinos, cerdos,
aves, etc; Así:
95
Mar (1996; citado por Velarde, 1986), señala el empleo de 560 a 1 680
kg de estiércol de gallina por ha/semana.
Lira y Dasilva (1975; citado por Velarde, 1986), manifiesta es uso de
1400 kg./ha/semana de estiércol de bovino.
Del Rio & cols. (1970; citado por Velarde, 1986), menciona que en
policultivos de carpas chinas se
usa estiércol de ganado fermentado;
agregándose entre 1% a 3% de cal, aplicándose a razón de 3 000 kg./ha
antes de la siembra.
Con el objetivo de probar el crecimiento de la tilapia del Nilo, asociado
con el pato pequinés, Arias domesticus subflava, en el período de invierno,
se realizó un experimento de 180 días, utilizándose estanques de tierra natural
con un área individual de
100 m2 cada uno. El primer estanque fue poblado
con 100 alevines de tilapia sexada, de 90 días de
edad, y en el segundo
estanque fue repetida con la misma población de tilapia, pero recibió un lote de
10 patos pequines (1 000 individuos/ha). Los
peces
recibieron un
suplemento alimenticio a base de yuca con sangre de buey y los
patos
fueron alimentados con una ración de crecimiento de pollos a una base de
4 kg/día.
Durante el período fueron engordados 4 lotes de patos, totalizando 40
individuos. El tamaño medio de la tilapia cultivada con el pato (21,4 cm), fue
significativamente superior (P<0,01), a la
obtenida por el cultivado sin patos
(14,6 cm). La biomasa total de la asociación fue 23 kg de tilapia y 42,9 kg de
patos, correspondiente a 2 300 kg y 4 290 kg respectivamente; la biomasa de
la tilapia en el monocultivo fue de 9 kg a 900 kg/ha. (Rozas,1988).
La producción de machos de tilapia nilótica (1 pez/m2), en estanques de
0,1 ha cada una, fertilizados con diferentes tazas de gallinaza fue estudiada,
utilizando un diseño completamente al azar, realizada en la Estación Piscícola
Experimental, “El Carao”, Comayagua, Honduras.
Este trabajo tuvo como objetivo cuantificar la producción de tilapia (T.
nilótica), para diferentes tazas de aplicación de gallinaza, el cual fue aplicada,
en base seca, a razón de 125 kg, 250 kg, 500 kg, y 1 000 kg/ha.semana.
Después de 150 días la producción neta
total fue de 895 kg, 1 321 kg,
1 612 kg y 1 950 kg/ha, para cada uno de los tratamientos respectivamente; la
producción neta total y la taza de aplicación de gallinaza fueron analizadas
96
usando análisis de regresión, la cual dio la ecuación ў = 933,5 + 1,09X,
r = 0,87. Existiendo una relación positiva (P <0,05), entre la taza de aplicación
de gallinaza y la producción neta total de tilapia, (Green & Alvarenga, 1987).
Otro trabajo similar al anterior buscó evaluar el efecto de los estanques
fertilizados, en la producción de tilapia en los meses secos y de lluvia; se
utilizó una densidad de 0,1 pez/m2, en estanques de 0,1 ha cada uno.
Utilizando un diseño completamente al azar se aplicaron a razón de
125, 250, 500 y 1 000 kg/ha.semana de gallinaza en base seca. Después de
150 días la producción neta total fue, 1 116, 1 399, 1 884 y 2 295 kg/ha de
pescado en la época seca y 1 159, 1 589, 1 856 y 2 229 kg/ha en la época
lluviosa.
Las producciones fueron similares (P<0,05) entre estaciones a cada
nivel de fertilización. La producción de peces aumentó significativamente (P<
0.005) en cuanto aumentaba la cantidad de gallinaza utilizada; la ecuación
ў = 832 693 + 2 813X, r2 = 0,893, describió esta relación, (Hermes & Green,
1987).
Se estudió el crecimiento de Tilapia aurea (O. aureus), a altas
densidades de
siembra, en condiciones de cultivo semi-intensivo y con
fertilización orgánica a base de cerdaza, efectuado entre junio a setiembre de
1985 y de nov. de 1985 a febrero de 1986. se cultivaron en estanques con
fondo de tierra, a densidades de
siembra de
5, 10 y 15
peces/m2,
previamente fertilizados con estiércol de cerdo, correspondiente a 35 kg al
estanque de 5 peces/m2, 65.3 kg al estanque con 10 peces/m2 y 86 kg al de
15 peces/m2, en suministrados en horas de la mañana de lunes a viernes,
durante todo el período de investigación.
Para los ensayos se utilizaron 56 550 alevinos de tilapia aurea, en una
relación hembra - macho de 1:1 los muestreos fueron realizados al azar,
colectándose un mínimo de 1% de la población. obteniéndose los siguientes
resultados:
1.
El cultivo de O. aureus, a altas densidades por 100 días permite un
aprovechamiento máximo de los recursos del ecosistema ya que con
una
densidad baja de siembra se están desperdiciando recursos
alimenticios a nivel de productividad natural.
97
La densidad de siembra de 10 peces/m2, fue lo que optimizó los
2.
rendimientos en ganancia de peso en kilogramos y producción de
alevinos.
A una densidad de 15 peces/m2 se obtiene una escasa producción
3.
de alevinos.
4.
De los resultados se concluye que el cultivo de tilapia aurea a altas
densidades de siembra en condiciones de cultivo semi-intensivo, es
factible; por tanto se recomienda su implantación. (Porras,1987).
Otro trabajo realizado para determinar los efectos de la fertilización
orgánica e inorgánica, en larvas y alevinos de tilapia aurea, realizada en la
Estación Piscícola
Experimental “GRAL. OMAR TORRIJOS HERRERA”,
Managua, menciona lo siguiente:
En una primera etapa se utilizaron diferentes niveles de fertilización
utilizándose larvas de tilapia aurea a una densidad de
150 larvas/m2, con
pesos iniciales de 0,02 a 0,05 g obteniéndose a los 45 días incrementos en
peso de hasta 1,57 g.
Concluyéndose al final que el mayor incremento en peso, en la etapa
larval, se obtuvo aplicando 50 kg de urea/ha, 60 kg 20 –20 – 0/ha y 700 kg de
gallinaza/ha, quincenalmente aplicada, usando el método de maduración.
En una segunda etapa se utilizaron las mismas tazas de fertilización
para alevinos en 3 densidades de siembra (35, 45 y 55 alevinos/m2), con un
peso inicial de entre 1,18 y 1,58 g, obteniéndose al finalizar (45 días), medias
de peso de 6,9 y 12,4 g.
Concluyéndose que, el alevinaje dio los mayores incrementos de peso
diario, a una densidad de 35 alevinos/m2, aunque no existió una diferencia muy
marcada con las otras densidades. (Saavedra, 1986).
Así mismo el ICA (International Center for Acuaculture, Auburn
University, Al, U.S.A.; citado por Delgado, 1983), resumen en cuanto a la
producción de tilapia nilótica, para climas templados:
-
1 000 a 25 000 kg/ha.año; utilizando fertilizantes
orgánicos, sin
mortalidades significativas, con tasas de siembra entre 6 039 y
40 000 peces/ha.
98
-
Usando el predador Cichla ocellaris, 2 491 kg/ha, todos de de
tamaño comercial.
-
Sin predador, 4 994 kg/ha, con ningún pez de tamaño cosechable.
-
El policultivo con Carpa, otras especies de Tilapia, Lisas, Sabalote,
bagres, etc; la producción varía entre 5 292 kg/ha.año en Israel y 7
500 kg/ha.año en China, con carpas chinas.
-
2 800 kg/ha.180 días en cultivo asociado con cerdos, alimentados a
una densidad de 10000 peces y 120 cerdos/ha.
-
3043 kg/ha.193 días, logrado con 60 cerdos y 10 000 peces/ha, con
alimentación a cerdos y solo torta de semilla de algodón a tilapia.
Para climas tropicales y para tilapia en general, se han registrado las
siguientes producciones:
-
2 000 a 5 000 kg/ha.6 meses, utilizando la tasa 60-25 000 a 30 000
cerdos-peces/ha, en Tailandia (Delmendo, 1980).
-
5 850 kg/ha.270 días, aplicando la tasa 60-20 000 cerdos-peces/ha,
en Filipinas. (Cruz & Shehadeh, 1980).
-
1 490 kg/ha.189 días, aplicando las tasas 70 – 8 000 cerdospeces/ha, en Brasil. (Lovshin, 1976).
-
3 t/ha.año, aplicando 5 000 a mas de 10 000 kg/ha.año de estiércol
fermentado, en la China (FAO, & Schroeder, 1980).
-
20 kg/ha.día, aplicando 20 a 40 t/ha de estiércol fermentado, en
Israel (Schroeder, 1980).
Entre los trabajos hechos en el País, utilizando fertilizantes orgánicos
tenemos los siguientes:
En el laboratorio de Huachipa del IMARPE, en el periodo comprendido
entre octubre de 1980 y agosto de 1982, se realizaron varios experimentos
para determinar el efecto del tipo del estanque, densidad de carga, calidad y
cantidad de fertilizante en el crecimiento y la producción de tilapia nilotica;
obteniéndose los siguientes resultados:
99
-
En un primer experimento utilizando una densidad de 6 017
peces/ha, tanto para estanques de tierra y de concreto, fertilizados
con estiércol de pato y cerdo combinados a la tasa de 2 000
kg/ha.mes, durante 11 meses (Junio a Abril), se
obtuvo un
crecimiento de 27,7 g a 271 g para estanques de concreto y de
13,3 g a 189 g para estanques de tierra, tanques de concreto y de
20.5 g a 147.4 g para estanques de tierra.
-
En un segundo experimento similar al primero, pero con una
densidad de siembra de 12 035 peces/ha se obtuvo de 23,0 g a
228,8 g para estanques de concreto y de 20,5 g a 147,4 g para
estanques de tierra.
-
En un último experimento se compararon el crecimiento de la .tilapia
nilotica, a diferente calidad de fertilizantes y tasa de fertilización
utilizando 821 patos/ha, 60 cerdos/ha (1 kg estiércol/cerdo.día) +
2200 kg/ha.mes de estiércol de cerdo y 4 000 kg/ha.mes de estiércol
de cerdo; obteniéndose finalmente un crecimiento de 26 g a 245 g en
un periodo comprendido entre octubre a abril. Reportándose
finalmente un promedio de producción de 5,6 kg/ha.día de tilapia, en
el laboratorio de Huachipa, (Delgado, 1982).
Otro trabajo realizado entre los meses de febrero a julio (5 meses), en la
localidad de Sta. Rita de Siguas, en Arequipa, en la cual se estabularon 3
estanques con alevines de tilapia del Nilo, a una densidad de 5 000 peces/ha,
utilizándose fertilizantes orgánicos (estiércol de vacuno) a una tasa de 1 100
kg/ha.día (materia seca). El primer estanque fue fertilizado, el segundo
estanque fue suministrado de alimento consistente en polvillo de arroz y el
tercero, fue fertilizado y con alimento suplementario.
Los resultados indicaron; que el tercer estanque dio los mejores
resultados, pues los peces, lograron un peso de 393,9 g en promedio, en
comparación con el segundo estanque que alcanzo un promedio de 276,1 g y
el primer estanque con un peso promedio de 304,6 g; alcanzado los tres
estanques un porcentaje de supervivencia del 94,3 % en promedio. (Velarde,
1986).
100
2.2.2.
Antecedentes del uso de aguas residuales en estanques para
peces
2.2.2.1.
Efectos de las aguas residuales en el cultivo de peces
El uso de aguas residuales domésticas en estanques para peces se
puede considerar como una de las
mejores formas de abonar, esperándose
una producción mas altas de peces en aquello que se obtienen normalmente
en la misma área. Estanques para peces con agua de desecho en Munich,
Alemania, a los cuales se introdujo agua residual tratada después de una
dilución cuádruple con aguas de río, produjeron cerca de 500 kg/ha, (Demoll,
1926; citado por Hepher & Pruginin, 1991).
Wolny (1962; citado por Hepher & Pruginin, 1991), utilizando aguas
residuales tratadas sin diluir, proveniente de la ciudad de Kielce, Polonia, en
estanques experimentales obtuvo una producción de 1 318 kg/ha, lo que,
según establece él, es un record para Polonia. Producciones más altas se
obtienen en regiones tropicales. En Indonesia, Vaas (1948; citado por Hepher &
Pruginin, 1991) reportó una producción de 3 t/ha de carpa común y de Puntius
javanirus en un estanque, recibiendo agua de desecho después de diluirla
primero en una proporción de tres partes de agua de río por una parte de agua
de desecho. Jhingra (1974) obtuvo una producción de 3,2 t/ha.año de carpas
de la India, en un estanque para peces con agua de desecho en el oeste de
Bengala, India y recientemente Sreenivasan y colaboradores concluyeron, a
partir de experimentos en Guiday, India, que pueden obtener 25 tn/ha.año de
peces (tilapia, carpa y mrigal) en estanque con agua de desecho. Hepher y
Schroeder(1977), han demostrado los beneficios de la acuicultura con aguas
de desecho en tres estanques para peces con un área total de 2 a 7 ha, que
reciben agua de desecho de un pueblo de 500 habitantes. La tabla 28, resume
la producción de estos estanques, y de los
estanques regulares en la granja
sin abono. Obviamente, al añadir agua residual incrementa tanto la producción
de peces (175%) como la eficiencia de la utilización del alimento (una
reducción de la proporción de conversión de alimento al 53%).mejorando las
condiciones para los peces en cultivo.
101
Tabla 28. Producción de peces y conversión de alimento con o sin aguas
residuales
ESTANQUES
REGULARES
ESTANQUES CON ESTANQUES
AGUA RESIDUAL ABONADOS
Área de estanques (ha)
1,4 2,2
0,7 1,0
1,0 2,0
Prod. De peces(t/ha/8meses)
4,7 4,7
8,0 8,6
8,1 7,5
1,8 1,6
0,6 1,0
0,8 1,1
Proporción de conversión de
alimentos
De Hepher y Schroeder (1917)
Mencionado por Baltour Hepher y Yoel
En un segundo caso, una proporción mayor de aguas residuales se
agrego a dos grandes reservorios de 4 hectáreas cada uno (profundidad 4 m),
construidos en serie para acumular una gran cantidad de agua durante el
invierno. La primera agua de desecho tratada (únicamente sedimentada), de un
pueblo cercano de 5 000 habitantes, fluyó dentro del primer estanque y se
derramó en el segundo. La cantidad total de agua de desecho fue de 700 a
1 000 m3/dia.
La tabla 29, muestra los valores para almacenar y cosechar en estos
estanques. Debido a que el agua se uso para riego de algodón, los estanques
fueron desaguados a principios de agosto y el periodo de crecimiento fue de
solo 151 días. Se puede ver que la mayor parte de la materia orgánica del agua
de desecho se utilizó en el primer reservorio. Probablemente se hubiera
obtenido producciones mas altas si se hubiesen incluido especies adicionales
como la tilapia, (Hepher & Pruginin, 1991).
En otro trabajo realizado en México, se analizó el efecto de peces del
genero Tilapia en la remoción de coliformes fecales, en reactores “batch”,
utilizando agua de una laguna facultativa. La constante de mortandad
bacteriana de cayo proporcionalmente con el incremento del numero de peces,
por lo que se concluye que estos afectan en la eficiencia de remoción de
coliformes fecales. Así mismo menciona que en trabajos anteriores se refiere
102
Tabla 29. Producción de peces en dos reservorios abastecidos (en serie) con agua residual municipal (de 700 a 1000 m3 / día)
RESERVORIO ESPECIES
FECHA DE
TASA DE
MASA
ALMACENAMIENTO ALMACENAMIENTO PROMEDIO
(por ha)
1
Carpa
(g)
Marzo 10
2 750
Marzo 14
875
FECHA
DE
COSECHA
25 Julio 23
N° DE
MASA
PECES PROMEDIO
(ha)
PRODUCCIÓN ALIMENTO PROPORCIÓN
(kg/ha)
(kg/ha)
(g)
DE
CONVERSIÓN
2 632
745
1 899
616
1 286
687
total
2 585
prod/día
17,1
común
Carpa
120 Agosto 9
plateada
2
Carpa
Marzo 10
1 500
25 Julio 21
1 321
280
332
Marzo 14
900
120 Julio 21
875
750
547
total
879
prod/día
5,8
2 465
1,05
803
1,47
común
Carpa
plateada
Fuente: Hepher & Pruginin, 1991
•
Cada reservorio cubre 4 ha y es de 4 m de profundidad (alrededor de 16 000 m3).
103
que uno de los factores principales que intervienen en la remoción de bacterias
es el pH, con valores superiores a 8,5. Cabe aclarar que en este caso se
consideran los peces como medio de reducir la concentración de bacterias en
las aguas residuales sin tratar y no para consumo, (Rivas, 1997).
2.2.3.
ANTECEDENTES
DEL
CULTIVO
DE
PECES
EN
AGUAS
RESIDUALES TRATADAS.
Utilizar aguas residuales en el cultivo de peces, es considerado como
una de las mejores formas de abonamiento. La mayoría de experimentos y
cultivos a escala comercial con aguas residuales, reportan mayores
producciones de peces, que aquellas obtenidas normalmente en la misma área
(Hepher & Pruginin, 1979).
Las aguas negras que contienen desechos humanos son utilizados para
fertilizar estanques de tilapia en el sureste de Asia y se han sugerido su
utilización en las regiones semiáridas de Africa, donde no abundan los abonos
verdes, y los abonos animales son utilizados preferentemente en la agricultura.
Esta sugerencia a sido acogida con poco entusiasmo ya que a diferencia de los
asiáticos, los africanos son tan escrupulosos con respecto a los desechos
humanos como los europeos y los americanos, (Bardach, 1990).
Entre los estanques de Shek Wu Hui al norte de Hong Kong, según
Chan (1976) mencionado por Moscoso y Galecio (1978), se obtuvo altas
producciones cuando se usaron las aguas residuales tratadas con lodos
activados y filtración biológica. Trabajando con especies como bagres y tilapia
mossambica, sin previa fertilización, ni alimentación, se obtuvieron los
siguientes rendimientos descritos en la tabla 30.
La alta mortandad de bagres fue ocasionada por el deterioro de la
calidad del sistema de filtración biológica.
El mismo autor menciona un segundo experimento con varias
especies de carpa e igual tratamiento de aguas residuales, reportándose los
siguientes resultados resumidos en la tabla 31.
En 1978 fueron realizados diversos trabajos en Bangkok, Tailandia,
sobre la crianza de tilapia nilotica en estanques
alimentados con aguas
residuales tratadas. Edwards & cols. (1981; citado por Viteri, 1985), manifiesta
104
Tabla 30 : Rendimiento del cultivo de tilapia y bagres en aguas residuales en
hong kong. (1978)
TILAPIA
Periodo de crianza (días)
Densidad inicial (peces/ha)
Masa inicial promedio (g)
Carga inicial (Kg/ha)
Densidad final (peces/ha)
Población sembrada
Población nacida
Peso promedio final (g)
Población sembrada
Población nacida
Carga final (Kg/ha)
Población sembrada
Población nacida
Supervivencia (%)
BAGRE
190
2 000
41,4
67,9
190
4 210
33 6
141 6
1 650
24 300
335
1 220
298,8
71 6
135 4
49 2
493 0
1 739,5
82,5
45 4
61 1
80
Fuente: MOSCOSO y GALECIO (1978).
Tabla 31 : Rendimiento de cultivo de capas en aguas residuales en Hong kong
(1976)
TIPO DE
TRATAMIENTO
ESPECIE
MASA INIC.
PROM. (g)
DENSIDAD
(peces/ha)
MASA FINAL
PROM. (g)
Estanques
Con aguas
Tratadas
Con lodos
Activados
Estanques
Con aguas
Trat. Con
Lodos act.
Y filt. Biol.
C. plateada
C. cabezona
C. forrajera
C. común
6,4
7,9
6,1
25,0
600-1200
400- 900
600- 900
600- 900
998,7
1 125,5
477,6
246,9
C. plateada
C. cabezona
C. forrajera
C. común
6,5
7,5
6,0
25,6
600-1200
400- 900
600- 900
600- 900
113,4
1 421,0
395,8
639,3
SUPERVI.
(%)
78,3
79,2
27,7
90,7
Total :
80,0
59,2
43,0
42,3
Total :
PRODUC.
(kg/ha)
671,7
552,4
94,6
327,9
1 646,6
703,8
521,1
123,1
120,0
1 468,0
Fuente: MOSCOSO y GALECIO (1978)
105
que los peces fueron cultivados en un sistema de cuatro estanques de tierra
de 200 m2, con los siguientes tratamientos:
a) Efluente de un estanque con alto grado de estabilización
b) Aguas crudas.
c) Fertilizante comercial y
d) Alimento pelletizado.
Fueron evaluados por un periodo de 112 días y a una densidad de 4
peces por m2, obteniéndose los siguientes resultados en la tabla 32.
Tabla 32. Rendimiento del cultivo de tilapia nilotica en aguas residuales
tratadas, en diferentes tratamientos
TRATAMIENTO
Peso promedio inicial (g)
EFL. CON ALTO
GRADO DE
ESTABILIZACION
AGUAS
CRUDAS
FERTILIZANTE PELLETS
COMERCIAL
0,81
0,98
0,84
0,76
Peso promedio final (g)
73,80
71,30
39,20
25,50
Tasa de crecim. (g/día)
0,65
0,62
0,34
0,22
Supervivencia (%)
69,00
68,00
73,00
28,00
Producción (Kg/ha.año)
6090
5826
3450
851
Hepher & Pruginin (1979; citados por Viteri, 1985), describe el uso de
aguas residuales tratadas a nivel primario, provenientes de un poblado
(aproximadamente 5 000 habitantes), en el cultivo de carpa común y carpa
plateada durante 151 días. El agua era conducida en forma sucesiva a través
de dos reservorios de 4 ha cada uno. Los peces cultivados con alimentación
suplementaria, mostraron los siguientes rendimientos resumidos en la tabla 33.
Virtualmente, el uso de aguas residuales en Acuicultura se inicio en
Alemania a fines del siglo XIX, Prein (1988) y en Calcuta, India, en 1930,
Edwards (1985).
Se documenta que el uso de aguas residuales en las granjas de peces al
este de Calcuta, India, es el sistema mas grande de este tipo de acuicultura en
106
Tabla 33. Rendimiento del cultivo de carpas en aguas residuales y
alimentación suplementaria, Israel.
R.
1
ESPECIE
C. común
DENSIDAD
(peces/ha)
2 750
C. plateada
2
C. común
C. plateada
MASA PROM. (g)
INICI. FINAL
25
748
TASA DE SUPERVIV
CRECIM.
(%)
4,8
97,5
PROD. PRODUCT.
(kg/ha)
(kg/ha.d)
1 899
17,1
875
120
1 286
7,7
70,4
687
1 500
25
280
1,7
88,0
332
900
120
750
4,2
97,2
547
5,8
Fuente: citado por VEGA (1986)
.
el mundo. Reportándose para 1987, unas 3 000 ha dedicadas a esta actividad
(Strauss & Blumenthal, 1989; citados por León & Moscoso, 1996).
Las granjas reciben el agua cruda de Calcuta en estanques de 5 a 20 ha
y luego de 12 días la agitan, para facilitar la oxidación de la materia orgánica.
Se consideran que a los 25 días el estanque esta listo para ser sembrado con
peces. El agua cruda ingresa, cada 7 días durante la mañana equivalente a
una tasa diaria de 130 m3 por ha (Olah & cols, 1986; citados por León &
Moscoso, 1996).
El sistema es manejado en policultivo conformado por varias especies
de carpas indias: catla (Catla catla), mrigal (Cirrhinus mrigata), rohu (Labeo
rohita); carpa común (Cyprinus carpio); y tilapia (Orechromis niloticus). Se
siembran con un peso promedio inicial de 20 a 30 g a una densidad de 3,5
peces por m2 y una biomasa inicial de 900 Kg/ha. Las cosechas parciales se
inician a los 120 días y a los 300 días, drenándose por completo el estanque.
Los estimados de la producción total y de pescado de las piscigranjas
varia de 4 516 t de pescado producido en 6 993 ha en 1948 (0,6 t/ha.año) a 4-9
t/ha.año en 1984.(Edwars, 1992). Las piscigranjas proveen a los mercados de
la ciudad con 10-20 t de pescado por día, lo que representa 10 % - 20 % de la
demanda total, (León & Moscoso, 1996).
En una reunión de expertos de la materia realizada en diciembre de
1988 en Calcuta, India, se formularon las siguientes conclusiones respecto a
esta tecnología, (Bartone 1990; citado por León & Moscoso, 1996).
107
a. Los sistemas integrados, si se diseñan y administran adecuadamente,
representan una alternativa viable de bajo costo en comparación con las
tecnologías convencionales.
b. La producción neta de 5 a 7 t/ha.año de pescado se reporta en climas
tropicales en donde la producción anual es continua y no se recurre a la
alimentación suplementaria ni a la aireación.
c. En climas templados se obtienen tasas similares de producción de 15 a
20 Kg/ha.día durante el periodo estival.
d. La acuicultura opera con niveles del orden de 10 a 20 Kg de
DBO/ha.+día
para
garantizar
un
adecuado
equilibrio
entre
la
productividad, la demanda de oxígeno y el crecimiento de los peces.
e. En general, se utilizaron tres tipos de sistemas integrados:
Un solo estanque de peces que recibe aguas servidas crudas
directamente (por ejemplo, Calcuta).
Estanques de crianza precedidos por algún tratamiento primario
(por ejemplo, Hungría); y
Estanques de crianza donde se vierten aguas residuales tratadas a
las que se ha eliminado agentes patógenos presente en el crudo.
(por ejemplo, Lima).
Otro proyecto efectuado en Mirzapur, Bangladesh, en 1990 (Proyecto
Shobuj Shona), ejecutado por el grupo PRISMA, el cual utilizó aguas residuales
para el crecimiento de especies de la familia Lemnaceae (Lenteja de agua), la
cual sirvió de alimento para carpas y tilapias.
El sistema de tratamiento consistía en un canal serpentino largo sobre el
cual se hizo crecer las Lemnaceae, las plantas eran contenidas por los
bambúes colocados a intervalos a través del canal, esto llego a dar una
producción
cercana a la media tonelada de Lemnaceae por día, dando
ingresos por venta de pescado y por la Lemnaceae cosechadas. Además de
obtener una buena calidad de agua que excedio los patrones mas altos para
aguas servidas tratadas, ordenada en los EE.UU.
Entre los primeros trabajadores realizados en nuestro país tenemos:
108
El CEPIS (Centro Panamericano de Ingeniería Sanitaria y Ciencias del
mbiente), y la UNALM, ejecutaron el Proyecto de Reuso en Acuicultura de las
aguas residuales en las Lagunas de Estabilización de San Juan durante los
periodos 1983-1984 y 1986-1990.
Durante el primer periodo (preliminar), se logro definir que las condiciones
ambientales
de
las
lagunas
cuaternarias
eran
satisfactorias
para
la
supervivencia y crecimiento de los peces tilapia del Nilo (Oreochromis
niloticus), y carpa común (Cyprinus carpio). Sin embargo, estas lagunas no
resultaban prácticos para el cultivo y se recomendó el usar estanques
piscícolas abastecidos con efluentes terciarios.
En
la
segunda
fase
(definitiva),
se
efectuaron
cuatro
campañas
experimentales con tilapia del Nilo, lográndose los siguientes resultados:
Las tilapias con un peso inicial de 60 g pueden cultivarse durante los
cuatro meses de calor a densidades de 2 peces/m2, para alcanzar un
peso comercial de 250 g.
A partir de una biomasa inicial de 960 kg/ha, durante el periodo
mencionado se obtiene un producto final de 4 400 kg/ha sin adicionar
alimento artificial;
No se llego a detectar la presencia de bacterias ni virus patógenos en
los peces cultivados en aguas residuales tratadas con niveles inferiores
a 10 000 coliformes fecales /100 ml. (Tabla 34)
Tabla 34. Calidad sanitaria de los peces cultivados, según la clasificación
propuesta por Buras (1987), en porcentaje.
CALIDAD
CONCENTRACIÓN DE BACT.
POR GRAMO DE MÚSCULO
1
EXPERIMENTO
2
3
4
Muy bueno
0-10
100
100
86
100
Aceptable
10-50
0
0
8
0
mas de 50
0
0
6
0
Rechazable
109
Entre
los
primeros
trabajos
experimentales
con
tilapia
roja
(Oreochromis spp.), con aguas residuales tratadas en nuestro país tenemos:
a. Cultivo de tilapia roja y plateada (ambos sexos), realizado en la Unidad
de Acuicultura de San Juan en 1997, durante un periodo de 90 días (20
de noviembre - 18 de febrero), a una densidad de 2,38 peces/m2 en
estanques de 400 m2 cada uno. Utilizando alimentación únicamente
natural, se obtuvo un incremento de peso de 4 g a 61,9 g para tilapia
roja y de 5,7 g a 84,9 g para tilapia plateada; concluyéndose que la
tilapia plateada es la que mejor se adapta al sistema. (Tabla 35)
Tabla 35. Resumen de los resultados del experimento.
PARAMETRO
T. ROJA PANAMA T. PLAT. SAN JUAN
950
237
370
607
343
950
415
420
835
115
Supervivencia (%)
63,89
87,89
Proporc. Hembras/machos
1,56
1,01
Masa inicial población (g)
Masa final machos (g)
Masa final hembras (g)
Masa final población (g)
Tasa Crec. Población (g/día)
Tasa crec. Machos
Tasa crec. Hembras
Biomasa inicial (kg/ha)
Biomasa final (kg/ha)
4,0
73,5
54,5
61,92
0,64
0,77
0,56
76
752
5,7
103,8
66,0
84,79
0,88
1,09
0,67
106
1 416
Productividad (kg/ha.día)
7,51
14,53
Pob. Inicial total (N°)
Pob. Final machos (N°)
Pob. Final hembras (N°)
Pob. Final total (N°)
Peces muertos (N°)
b. Se realizó el cultivo de machos de tilapia roja y plateada, en la
Unidad de Acuicultura de San Juan, en un periodo de 68 días (18 de
febrero – 27 de abril de 1997), realizado en estanques de 400 m2
cada uno, se sembraron a una densidad de 0,59 peces/m2, con
alimentación exclusivamente natural. Se obtuvo un incremento en
110
peso de 73,5 g a 87,2 g para tilapia roja y de 103,8 g a 151,3 g para
tilapia plateada; . apreciándose nuevamente la mejor adaptación al
medio de la tilapia plateada, (Tabla 36).
Tabla 36 : Resultados finales del experimento
PARÁMETRO
T, ROJA PANAMA
T. PLAREADA S.J.
0,59
237
25
212
10,55
73,5
87,2
0,20
348
44
-0,42
0,59
237
197
40
83,12
103,8
151,3
0,69
492
596
1,51
Densidad inicial (peces/m2)
Pob. Inicial tota (N°)
Pob. final (N°)
Peces muertos (N°)
Supervivencia (%)
Peso inicial población (g)
Peso final población (g)
Tasa crec. Población (g/dia)
Biomasa inicial (Kg/ha)
Biomasa final (Kg/ha)
Productividad (Kg/ha.dia
c. Finalmente una serie de experiencias desarrollados en la planta de
tratamiento de aguas residuales en la UNI (Unitrar), entre los años 9798, los cuales se realizaron para completar el programa de evaluación
sobre la factibilidad de producción de Tilapia con aguas residuales
tratadas, combinándose en Reactor Anaerobio de Flujo Ascendente
(RAFA) y lagunas de estabilización, dieron los siguientes resultados:
Primer experimento ; Evaluar el comportamiento de la Tilapia plateada
Primera experiencia.
Fecha inicio
03-feb-97
Fecha término
18-mayo-97
Variedad
Tilapia plateada
Población inicial
4 200
Mortalidad por adaptación
1 700
Población restaurada
2 500
111
% mortalidad
40,41
Resiembra 03-Mar-97
1 500
Población reinicio 03-03-97
4 000 peces
Población final 12-May 97
3 200 peces
Peces muertos
800
% mortalidad
20%
Peso inicio
0,1 g
Peso 98 días
41,7 g
Incremento Peso
41,6 g
Taza de crecimiento
0,42 g/día
Se realizó una resiembra el 03-Marzo de 1997, debido a una mortalidad
por falta de adaptación.
Segundada experiencia realizado en dos estanques A y B
Fecha inicio
12 Mayo 1997
Fecha término
19 Enero 1998 (252 días)
A
B
Población inicial
1 600 peces
1 600 peces
Población final
1 137 peces
1 506 peces
Mortalidad
463 peces
94 peces
% Mortalidad
28,94%
5,88 %
Masa inicial
41,70 g
41,70 g
Masa final
144,48 g
152 18 g
Incremento en peso
102,78 g
110 48 g
Tasa de Crecimiento
0,41 g/día
0 44 g/día
Biomasa
164,48 kg
229,19 kg.
Carga
2 347 kg/ha
3 274 kg/ha
112
Tercera experiencia
Fecha inicio
19-enero-98
Fecha término
18 mayo 1998
Estanque
B
C
2
700 m2
Areas
700 m
Densidad
1,62 peces/m2 2,14 peces/m2
Población inicial 19-01-98
1 132 peces
1 500 peces
Mortalidad 22-01-98
0
9
El 30 marzo 98
32
124
Población reinicio 30-03-98
1 100 peces
1 367 peces
Población final 18-05-98
1 100 peces
1 367 peces
Mortalidad
0 peces
0 peces
% Mortalidad
0%
0%
Masa Inicial 19-01-98
144,48 g
152.18 g
Masa Final 30 Marzo 98
243,9 g
252.75 g
Incremento
99,42
100,55
Tasa de crecimiento
1,42
1,44
Predistribución de población
CONCLUSIONES DEL PRIMER EXPERIMENTO CON TILAPIA PLATEADA
Chavez (2000), menciona que al término del trabajo de investigación se
pudo definir algunos puntos como:
La mortalidad, se redujo notablemente al mantener un flujo estático ó
“bach” del agua tratado en los estanques, debido a que un flujo continuo
elevaba las concentraciones de amonio en un 9% más alto de lo normal,
lo que causaba las mortalidad altas. (hasta 20% normal)
Se debe tener mucho cuidado y énfasis en el proceso de sembrado,
sobre todo en el proceso de aclimatación de los alevines a las aguas
residuales tratadas, un buen aclimatamiento reduce el riesgo del estrés y
posterior muerte de los peces.
Las mortalidades por debajo del 20% son considerados normales y
aceptados, en este sistema de cultivo.
113
Las diferencias de peso, es debido en su mayoría al variado peso de
siembra de los alevinos, por lo que se recomienda la siembra de su solo
lote (el mismo día) con animales parejos (misma edad)
Los pesos obtenidos están dentro de los valores esperados y fueron
favorecidos por las altas temperaturas de esta época del año.
Finalmente se pudo concluir que en menos de 470 días, 16 meses, se
pueden obtener peces con un peso promedio final de mas de 250 g que
ya son considerados comerciales.
Segundo Experimento: Evaluar las variedades de Tilapia roja y plateada
Fecha de inicio
06 Feb 98
Fecha Término
23 May 98
(100) días
Estanque
A
B
Variedad
Roja
Plateada
Área
700 m2
700 m2
Densidad
5,7 peces/m2
5,7 peces/m2
Población Inicial
2 000 peces
2 000 peces
Población final
2 000 peces
2 000 peces
Peces muertos
0 peces
0 peces
% Mortalidad
0%
0%
Masa Inicial
1,20 g
0,10 g
Masa final 30-03-98(52 días) 38,77 g
15,35 g
Incremento de Peso
37,57 g
15,25 g
Taza de crecimiento
0,38 g/día
0,15 g/día
Por motivos no mencionados por el autor, no se pudo terminar el
experimento a los 100 días, como se estaba planeado, teniéndose que terminar
el experimento el día 30 de marzo de 1998, (Chavez, 2000)
Conclusiones del segundo experimento, cultivo de Tilapia roja y
plateada.
Lamentablemente, por motivos no mencionados por el autor no se logró
culminar con el tiempo previsto para este experimento, teniendo datos
inconclusos, que por lo menos nos dieron las siguientes conclusiones:
114
La diferencia de pesos, rojos (38,77 g) y plateada (15,35 g) se interpreta
al inicio como un mejor rendimiento en las primeras, pero se debió a la
diferencia de pesos a la hora de la siembra.
Los animales no llegaron al peso estimado de 41,6 g a 76 g
Se recomienda no cultivar ambas variedades en un solo estanque.
La tilapia roja no se adapto de igual forma
que la tilapia plateada,
trabajar con peces adaptados previamente.
Los peces cosechados, microbiológicamente fueron aceptados.
Se estimo un precio de venta de 2,25 por kilo de pescado.
Realizado una encuesta, se determinó que mas del 89% de las personas
que probaron los peces, lo volverán hacer nuevamente demostrándose
que el producto cosechado es aceptado por el público.
Actualmente el cultivo de la tilapia roja con aguas residuales tratadas en
nuestro país solo es desarrollado en la Unidad de Acuicultura, del Complejo
Biotecnológico de San Juan , hoy en Villa el Salvador DGMA-MTC y CEPISOPS-OMS y de forma experimental por la Universidad Nacional de Ingeniería,
en su planta de tratamiento reuso de aguas residuales, (Figura 20).
2.3. DEFINICIÓN DE TÉRMINOS USADOS
2.3.1.
En la Tilapia nilotica
o
ACUICULTURA INTEGRADA.-
Sistema por el cual la
acuicultura esta ligada o asociada con otras actividades como
la ganadería o agricultura. Ejemplo: usando el estiércol de los
animales para
fertilizar un estanque e incrementar la
producción primaria en el agua de un estanque para irrigar un
huerto o jardín.
o
ALBINO.-
Organismo viviente que carece de color natural,
propio o característico, por falta congénita total o parcial del
pigmento que le da a los organismos sus colores propios de
cada especie.
o
ALEVIN O DEDIN.-
Pez menudo que se emplea para
repoblar los cuerpos de agua.
115
Figura 20. Unidad de tratamiento de aguas residuales - UNI
1. Captación
1era. Laguna
RAFA
2
4
3
C
2da. Laguna
B
5
A
1. Ingreso Crudo
2. Afluente RAFA
3. Efluente RAFA
4. Salida 1era Laguna
5. Salida 2da Laguna
A. Estanque para cultivo
B. Estanque para cultivo
C. Estanque para cultivo
116
o
ALIMENTO.-
Es todo producto natural, semielaborado o
elaborado, que le da sustancias nutritivas al
el organismo.
Materia de origen animal o industrial cuyo consumo sirve para
cubrir las necesidades nutritivas. Los
alimentos son las
fuentes a partir de las cuales el organismo obtiene tanto los
nutrientes básales como los esenciales que necesita.
o
BIOMASA.- Peso total de todos los organismos de un hábitat
en particular.
o
COSECHA PARCIAL.- Cosecha periódica de una porción de
peces que desde su cultivo ya han alcanzado el tamaño
comercial dentro de un estanque de cultivo.
o
CULTIVO MIXTO.- Cultivo de organismos machos y hembras
criados en el mismo estanque.
o
CULTIVO MONOSEXO.- Cultivo de peces de un mismo sexo
(machos preferentemente) para el mercado.
o
DENSIDAD.- Numero de individuos con relación al espacio en
que están presente.
o
DESOVAR.- Es el acto de depositar óvulos.
o
DESOVE.- Expulsión de los óvulos al exterior del cuerpo.
o
EVALUACIÓN.-
Estimar el valor de las
cosas, estimar,
apreciar, someter a prueba para verificar.
o
FERTILIZANTE.-
Sustancia
agregada
al
agua
para
incrementar la producción natural de organismos.
o
HABITAT.-
Residencia natural de una
especie animal ó
vegetal; zona física en la cual se encuentran los animales.
o
HORMONA MASCULINA.- Sustancia utilizada para inducir a
la
postlarva de tilapia
a
desarrollar gónadas masculinas,
produciendo una población de organismos machos.
o
INCUBACIÓN BUCAL.- Sistema por el cual el pez mantiene y
cría a sus huevos en la boca.
o
LARVA..- Pez recién nacido cuyo peso es menor a 1 g y de
2,5 cm de largo en total. Es la primera fase generalmente de
un animal después del embrión y distinta del adulto.
117
o
MORTALIDAD.- Es un índice constante y/o estándar de muerte
que será tomada como referencia.
o
NUTRIENTE.- Elemento simple y absorbible de la ración
alimenticia que debe cubrir las necesidades nutricionales del
organismo.
o
PECES COMERCIALES.- Son aquellos que han alcanzado
ciertas características tales como una talla promedio de 25 a 30
cm y un peso superior a 250 g.
o
PLANCTON.- Organismos diminutos flotantes y fluctuantes de
los reinos animal y vegetal que prácticamente viven en todas
las aguas naturales del planeta.
o
POBLACIÓN.- Grupo de individuos de una sola especie que se
reproducen entre si de organismos heterótrofos.
o
POLICULTIVO.-
Cultivo simultáneo de dos o más especies
acuáticas de diferentes hábitos alimenticios.
o
PRODUCCIÓN.- La elaboración de materia orgánica por los
organismos de un área o volumen específico y en un
determinado período de tiempo.
o
RACION.-
Porción fija de alimento, que generalmente se
expresa como la cantidad
de una dieta
que se permite
consumir diariamente.
o
REPRODUCCIÓN.- Es preservar o perpetuar la especie.
o
SACO VITELINO.- Bolsa membranosa que posee el alevín
con sustancias nutritivas lipoproteicas.
o
SEXADO MANUAL.- Método por el cual se
examina a un
pez para determinarle el sexo.
o
SUSTRATO DE DESOVE.-
Material utilizado por los peces
para colocar los huevos (Desove).
2.3.2. En las Lagunas de Oxidación
o
BACTERIAS AERÓBICAS.- Son aquellos que necesitan de
oxígeno disuelto para descomponer la materia orgánica en
nutrientes que son aprovechados por las microalgas.
118
o
BACTERIAS ANAERÓBICAS.- Son aquellos organismos que
no necesitan del oxígeno para degradar la materia orgánica
debido a que para ellos el oxígeno es un tóxico.
o
BACTERIAS FACULTATIVAS.- Son aquellos organismos que
se adaptan muy bien a ambientes aerobios y anaerobios para
degradar la materia orgánica.
o
EFLUENTES.- Descarga líquida de material de desecho en el
ambiente el cual puede estar tratado o sin tratar.
o
FITOPLANCTON.- Porción vegetal del plancton, la comunidad
de plancton en aguas marinas y dulce que flota libremente en
ellos e incluye numerosas especies de algas y diatomeas.
o
FOTOSÍNTESIS.- Síntesis de carbohidratos a partir del dióxido
de carbono y agua con la clorofila, para la cual se emplea a la
luz como energía y de la cual resulta el oxígeno como productor
secundario.
o
PRODUCCIÓN PRIMARIA.- Es la biomasa de algas presentes
en el estanque.
o
REBOSE.- Pasar, exceder de cierto límite.
o
SEDIMENTACIÓN.-
Acción y efecto de decantación de los
sólidos suspendidos.
o
ZOOPLANCTON.- Animales que forman parte del plancton; la
comunidad de animales de aguas marinas y dulces que flora
libremente en el agua que se mueve pasivamente con las
corrientes.
119
Figura 21. Ubicación de la Unidad de acuicultura de San Juan
120
Figura 22. Proceso de reproducción, reversión y control biométrico de peces.
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
9.
1
2
3
4
5
6
7
8
9
Vista de estanque de reproducción y experimental
Estanque con peces en reproducción o en experimentación
Pesca de larvas para reversión sexual
Vista de larvas recolectadas
Conteo de larvas antes de ir a los tanques de reversión
Vista de tanques de reversión
Pesca de tilapias rojas para control biométrico
Tilapia plateada para control biométrico
Realizando el control biométrico
121
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