REPÚBLICA BOLIVARIANA DE VENEZUELA. INSTITUTO
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REPÚBLICA BOLIVARIANA DE VENEZUELA. INSTITUTO
REPÚBLICA BOLIVARIANA DE VENEZUELA. MINISTERIO DEL PODER POPULAR PARA LA EDUCACIÓN UNIVERSITARIA INSTITUTO UNIVERSITARIO DE TECNOLOGÍA ALONSO GAMERO. DEPARTAMENTO ACADÉMICO DE QUÍMICA OBTENCIÓN DE GLUCOSAMINA A PARTIR DE LOS DESECHOS DEL CAMARÓN Caso: Camaronera Golfomar Export, municipio Carirubana, estado Falcón Autor (es): Alvares Helsy C.I: 20.980.543 Bracho Orlando C.I: 18.153.148 Tutor (a): Ing. Chirinos Elizabeth. Esp C.I: 14.263.325 Santa Ana de Coro; Junio de 2011 REPÚBLICA BOLIVARIANA DE VENEZUELA. MINISTERIO DEL PODER POPULAR PARA LA EDUCACIÓN UNIVERSITARIA INSTITUTO UNIVERSITARIO DE TECNOLOGÍA ALONSO GAMERO. DEPARTAMENTO ACADÉMICO DE QUÍMICA OBTENCIÓN DE GLUCOSAMINA A PARTIR DE LOS DESECHOS DEL CAMARÓN Caso: Camaronera Golfomar Export, municipio Carirubana, estado Falcón. Trabajo especial de grado presentado como requisito para optar al título de Técnico Superior Universitario en Química. Autor (es): Alvares Helsy C.I: 20.980.543 Bracho Orlando C.I: 18.153.148 Tutor (a): Ing. Chirinos Elizabeth. Esp C.I: 14.263.325 Santa Ana de Coro; Junio de 2011 AGRADECIMIENTOS A Dios todopoderoso y especialmente a mí doctorcito José Gregorio Hernández por darme la oportunidad de llegar a este mundo y explorar las maravillas de la vida; también por darme la sabiduría, constancia, perseverancia de luchar por una de mis más grandes metas. A mis padres, Eduardo y Vidalia por estar allí en cada momento, cuando se me presento un problema, cuando festejaron conmigo uno de mis logros, por enseñarme que todo con sacrificio y esmero todo es posible. A el Instituto Universitario de Tecnología "Alonso Gamero" por abrirme las puertas y darme la oportunidad de ser una estudiante mas de esa casa de estudios. A mis profesores que fueron un pilar fundamental en este camino, ellos que dieron lo mejor de sus conocimientos, paciencia e integridad para la preparación de mi futura vida profesional. A Elisabeth Chirinos por aceptar ser nuestro tutor académico en tan importante trabajo de investigación. A mis profesoras Yolibeth Medina y María Márquez por ser nuestras asesoras en el trabajo especial de grado y brindarnos el apoyo incondicional en cada momento. A mi HERMANO y compañero de tesis Orlando Bracho por darme la oportunidad de entrar a su vida y formar parte de ella, así como también soportar con cada uno de mis estados emocionales…. GRACIAS! A mis amigos: Yhonny, Laura, Vanessa, Mileidy, José (el gocho), Marcos (el gocho morón), Jean Carlos (yaco), Claudymar, Marianni (kati), Julimar (mi madrina), Leomardis, leodys, por estar allí cuando más los necesite. A los auxiliares de los laboratorios René, el señor Ricardo, Fran y Alexis por estar siempre al pendiente y darnos la ayuda necesaria para la elaboración de los análisis. A ti, que siempre has estado allí para motivarme, cada vez que lo necesite, por ensenarme lo bello y maravilloso del amor incondicional… Gracias. A todas aquellas personas que de una u otra manera me acompañaron y dieron fuerzas en cada momento para llegar al final de este logro que tanto he anhelado en mi vida. ! Mil gracias a todos que Dios los bendiga…! Helsy Alvares AGRADECIMIENTOS Principalmente a Dios por permitirme vivir, tener salud y fuerzas para seguir adelante en los momentos difíciles de mi vida A mis padres por apoyarme en todo por estar siempre allí cuando los necesite por enseñarme a dar los primeros pasos de mi vida, por regalarme una sonrisa A mis hermanos por el apoyo que siempre me brindan por su cariño y que en este mundo no hay mejores hermanos que ellos. A los profesores del departamento de química por la formación que me dieron durante toda la carrera A mi compañera, amiga y hermana Helsy Alvares por aceptarme como compañero de tesis por estar ahí en los malos momentos apoyándome y sobre todo por aguantar todas mis locuras durante toda la cerrara y lo más importante de todo por quererme como su hermano. A la profesora Elisabeth Chirinos por aceptar tutor académico de este trabajo de investigación y compartir sus conocimientos con nosotros A la profesora Yolibeth Medina y la Profesora María Marques por ser nuestras asesoras y por ayudarnos las veces que las necesitamos por regalarnos su precioso tiempo A mis amigos José chirinos, Mariannys (Kati), Laura, Vanessa, Leomardis, el José (gocho), Jeancarlos (Jaco), Marcos (Gocho), francisco, Ociel, Liodys, Yhonny, Claudymar, Yuli, Mirian, Josnagli, Yenifer, Danielo, Mileidys por su apoyo y su amistad en todo momento A los auxiliares de laboratorio René, Fran, el señor Ricardo por su ayuda y apoyo no solo en la realización de este trabajo si no durante toda la carrera Orlando Bracho DEDICATORIA A Dios todopoderoso, él ha sido muestra de que no necesitas ver para creer, él que camina tomado de mi mano, me da la fortaleza y fe para continuar en cada lucha, cada sueño por alcanzar. A mis padres, Eduardo y Vidalia porque este logro no es solo mío, también es de ellos, por todo su esfuerzo, su confianza, su cariño, por ser un pilar fundamental y ejemplo a seguir en mi vida. A mis hermanos por estar ahí con sus palabras de aliento y que todo se puede lograr con esmero y dedicación. A mi sobrina bella Ysled Maldonado por motivarme cada día más a seguir y por ser esa luz en mi vida dándome el entusiasmo a continuar y a superarme. Te Quiero mi purrú! A mi hermano Orlando por aceptarme tal y cual soy, porque este triunfo es de los dos, porque fue mi fuerza cuando me desvanecía y esa frase MENTE POSITIVA hermana cuando más la necesité. Gracias. A mis amigos por compartir conmigo cada minuto de mi vida y enseñarme lo bello y hermoso de una verdadera amistad. Helsy Alvares DEDICATORIA Este trabajo de investigación se lo dedico a toda aquella persona que forman parte de mi mundo e de una u otra forma siempre están dándome fuerzas apoyándome porque gracias a ellos puedo sonreír puedo levantarme cada vez que caigo A mis padres por que esto lo hice pensando en ellos solo para que se sientan orgullosos de mi A mis hermanos por que cuando uno cuenta con el apoyo de personas como ustedes nada es imposible, y por formar parte de mi vida A mi hermana Helsy porque ella más que nadie sabe todo lo que pasamos para llegar aquí porque este logro es de los dos y sin ella este logro no fuera igual. Pues llegamos a donde muchas veces pensábamos que nunca llegaríamos pero todo lo que uno se propone lo logra. A mis amigos por permitirme formar parte de su vida y por brindarme su amistad. Orlando Bracho REPÚBLICA BOLIVARIANA DE VENEZUELA MINISTERIO DEL PODER POPULAR PARA LA EDUCACIÓN UNIVERSITARIA INSTITUTO UNIVERSITARIO DE TECNOLOGÍA ALONSO GAMERO DEPARTAMENTO ACADÉMICO DE QUÍMICA OBTENCIÓN DE GLUCOSAMINA A PARTIR DE LOS DESECHOS DEL CAMARÓN Caso: Camaronera Golfomar Export, municipio Carirubana, estado Falcón Autor (es): Alvares Helsy Bracho Orlando Tutor (a): Ing. Chirinos Elizabeth. Esp. Junio de 2011 RESUMEN La Glucosamina es un amino azúcar, utilizada comúnmente en medicina como suplemento alimenticio. Esta se puede obtener de la quitina mediante el proceso de hidrólisis ácida. La quitina se encuentra en los exoesqueletos de muchos artrópodos principalmente en los desechos de los camarones. El objetivo de esta investigación fue la obtención de la Glucosamina a partir de los desechos del camarón. Esta investigación fue de campo con diseño no experimental de tipo transaccional. Los análisis se realizaron en el Instituto Universitario de Tecnología “Alonso Gamero”. La recolección de la muestra se llevó a cabo mediante un muestreo aleatorio simple en la camaronera Golfomar Export municipio Carirubana estado Falcón. Se le realizó un pre tratamiento a la muestra para la eliminación de impurezas, además del secado, tamizado y molienda. Seguidamente se procedió a la obtención de la quitina para luego mediante una hidrólisis ácida obtener Glucosamina. Para la identificación del compuesto se realizaron pruebas de reconocimiento físicas y químicas para esto fue empleado Glucosamina comercial de la marca (Nolver), con la finalidad de comparar los resultados. Se obtuvieron resultados positivos en las pruebas de identificación llevadas a cabo para la presencia de glucosa y monosacáridos, no aldehídos. Así mismo en relación al rendimiento obtenido con respecto a la cantidad de materia prima utilizada se obtuvo un 29,27% de Glucosamina, se puede decir que esta investigación es factible ya que a través de un desecho se obtiene un producto de interés comercial e industrial. Palabras claves: Desechos, Hidrólisis ácida, Quitina, Glucosamina. ÍNDICE GENERAL Pág AGRADECIMIENTO…………………………………………………………... Iv DEDICATORIA……………………………………………………………........ Vii RESUMEN……………………………………………………………………… Ix ÍNDICE GENERAL…………………………………………………………….. X LISTA DE TABLAS……………………………………..……………..………. Xiv LISTA DE FIGURAS…………………………………………………………... Xv INTRODUCCIÓN………………………………………………………………. 1 CAPÍTULO I. EL PROBLEMA…………………………………………….... 3 Planteamiento del Problema……………………………………………………. 3 Objetivos de la Investigación…………………………………………………… 5 Objetivo General……………………………………………………………....... 5 Objetivos Específicos…………………………………………………………... 5 Justificación de la Investigación……………………………………………....... 5 Alcances de la Investigación……………………………………………………. 7 Limitaciones de la Investigación………………………………………….......... 7 CAPÍTULO II. MARCO REFERENCIAL………………………………….. 8 Antecedentes de la Investigación…………………………………………..…… 8 Bases Teóricas…………………………………………………………..……… 11 Los Crustáceos...…………………………………………………………….. 11 El Camarón o Quisquilla...………………………………………………....... 11 Exoesqueleto…………….……..………………….………………………… 12 Producción del Camarón en Venezuela……….………………………........... 12 Uso de Desecho del Camarón………………………………………….......... 13 La Glucosamina………………………………………………………........... 14 Uso de Glucosamina………………………………………………………… 15 Procesos de Obtención de la Glucosamina………………………………...... 16 La Hidrólisis………………………………………………………………… 16 La Hidrólisis Acida………………………………………………………...... 16 La hidrólisis Acida de la Quitina………………………………………......... 17 Pruebas de Identificación……………………………………………………. 17 Pruebas Químicas……………………………………………………............ 17 Pruebas Físicas………………………………………………………………. 20 Definición de Términos Básicos……………………………………………....... 21 Operacionalización de Variables………………………………………………. 23 CAPÍTULO III. MARCO METODOLOGICO………………………..…… 24 Tipo de la Investigación………………………………………………………… 24 Diseño de la Investigación……………………………………………………… 25 Población y Muestra de la Investigación……………………………..………… 25 Etapas de la Investigación………………………………………………………. 26 Etapa I: Revisión Bibliográfica……………………………………………… 26 Etapa II: Selección de la Muestra…………………………………………… 27 Etapa III: Pre tratamiento y ensayo de la Muestra…………………………. 27 Etapa IV: Montaje del Ensayo para Obtención de la Glucosamina………… 27 Obtención de Quitina………………………………………………………... 29 Obtención de Glucosamina………………………………………………….. 33 Hidrólisis Acida de Quitina...……………………………………………….. 33 Etapa V: Identificación de Compuesto...…………………………………… 35 Pruebas Físicas………………………………………………………………. 36 Pruebas Químicas……………………………………………………………. 37 Etapa VI: Calculo de Porcentaje de Rendimiento………………................... 38 Etapa VII: Comparación de barridos de la Glucosamina..……………..…..... 38 CAPÍTULO IV: ANÁLISIS Y REPRESENTACIÓN DE RESULTADOS 40 Pruebas de Reconocimiento Físico……………………………………………... 40 Pruebas de Reconocimiento Químicas…………………………………………. 42 Determinación del Porcentaje de Rendimiento………………………………… 48 Comparación de barridos de la Glucosamina Comercial y Obtenida…………... 49 CONCLUSIONES………………………………………………………………. 51 RECOMENDACIONES………………………………………………………… 52 REFERENCIAS………………………………………………………………… 53 ANEXOS……………………………………………………………………….. 56 LISTA DE TABLAS Tabla Pág. 1 Punto de Fusión en la Glucosamina Obtenida ……………………………….. 40 2 Temperaturas para la Determinación del Punto de Fusión en la Glucosamina Comercial………………………………………………………………………. 57 3 Temperaturas para la Determinación del Punto de Fusión en la Glucosamina Obtenida ………………………………….……………………………………. 57 4 Resultados de Punto de Fusión y Promedio en la Glucosamina comercial…........................................................................................................... 59 5 Resultados de Punto de Fusión y Promedio en la Glucosamina Obtenida…… 59 6 Datos para el Cálculo de la Varianza y la Desviación Estándar en la Glucosamina Comercial………………………………………………………… 60 7 Datos para el Cálculo de la Varianza y la Desviación Estándar en la Glucosamina Obtenida………………………………………………………….. 61 LISTA DE FIGURAS Figura Pág. 1 El Camarón Lipotenaus Smithtti…………………………………………… 12 2 Estructuras de la Glucosamina……………………………………………... 15 3 Hidrólisis Ácida de la Quitina……………………………………………… 17 4 Pre tratamiento de la Muestra………………………………………..…….. 27 5 Desproteinizacion de la Muestra…………………………………………… 29 6 Decantación de la Muestra…………………………………………………. 29 7 Blanqueo o Despigmentación de la Muestra………………………………. 30 8 Desmineralización de la Muestra…………………………………………... 31 9 Purificado y Filtrado de la Muestra………………………………………… 31 10 Secado de Quitina………………………………………………………… 32 11 Quitina Obtenida………………………………………………………….. 32 12 Hidrólisis Acida de la Quitina…………………………………………… 33 13 Filtración al Vacio de la Glucosamina…………………………………… 34 14 Glucosamina en el Desecador…………………………………………… 34 15 Glucosamina Obtenida…………………………………………………… 35 16 Glucosamina Comercial y Glucosamina Obtenida……………………… 35 17 Punto de Fusión…………………………………………………………… 36 18 Punto de Fusión Vs Glucosamina………………………………………… 41 19 Identificación de Glucosa en la Glucosamina Comercial mediante Reactivo de Benedict………………………………………………………… 42 20 Identificación de Glucosa en la Glucosamina Obtenida mediante Reactivo de Benedict…………………………………………………………………… 43 21 Identificación de Carbohidratos en la Glucosamina Comercial mediante Reactivo de Barfoed………………………………………………………….. 44 22 Identificación de Carbohidratos en la Glucosamina Obtenida mediante Reactivo de Barfoed………………………………………………………….. 45 23 Identificación de Monosacáridos en la Glucosamina Comercial mediante Reactivo de Fehling………………………………………………………….. 46 24 Identificación de Monosacáridos en la Glucosamina Obtenida mediante Reactivo de Fehling…………………………………………………………... 46 25 Identificación de Aldehídos en la Glucosamina Comercial mediante Reactivo de Tollens…………………………………………………………... 47 26 Identificación de Aldehídos en la Glucosamina Obtenida mediante Reactivo de Tollens…………………………………………………………... 48 27 Barrido de la Glucosamina Comercial y Obtenida……………………….. 49 INTRODUCCIÓN Los desechos industriales traen como consecuencia pérdidas comerciales y contaminación al ambiente por su inadecuada disposición final, principalmente los generados por las industrias alimenticias procesadoras de mariscos, estos tienen un gran potencial para ser utilizados como materia prima, debido a factores como la facilidad de recolección del desecho, cantidad generada y pre tratamiento. En particular, el desecho de conchas de camarón, tiene múltiples ventajas frente a los residuos de los otros mariscos, ya que se obtiene en grandes cantidades Estos desechos están constituidos por la concha, patas y cola del camarón, según estudios realizados en los desechos de camarones se encuentran presentes proteínas, quitina, sustancias solubles y grasa. La quitina es un carbohidrato, que tiene una estructura parecida a la celulosa. Es un polisacárido de β- (1,4) –(Nacetilglucosamina), Los polisacáridos son polímeros, cuyos monómeros constituyentes son monosacáridos, los cuales se unen repetitivamente mediante enlace glucosídicos estos descomponerse, por hidrólisis de los enlaces glucosídicos (Ortiz, 2009). La Glucosamina es un monosacárido que se encentra en el cuerpo humano y cumple funciones muy importantes en la rama de la medicina, este se puede obtener mediante la hidrólisis de la quitina, en esta investigación se emplearon los desechos del camarón para la obtención de Glucosamina, por medio de la hidrólisis ácida de la quitina. La metodología del trabajo se llevó a cabo con un tipo de investigación de campo de nivel descriptivo y un diseño no experimental de tipo transaccional El compuesto obtenido fue identificado mediante pruebas de reconocimientos físicas: punto de fusión y químicas: Benedict, Barfoed, Fehling y Tollens donde el cambio de color indicaba la existencia de la Glucosamina en la muestra procesada. Esta investigación está conformada por cinco capítulos que se describen a continuación: El primer capítulo, se estructura de la siguiente manera: planteamiento de problema y formulación de interrogantes, objetivos que se desean cumplir con esta investigación, justificación, alcances y limitaciones. El segundo capítulo, se constituye por los antecedentes de la investigación basados en investigaciones anteriores que fueron de utilidad para el desarrollo de este proyecto. Bases teóricas donde se precisan los aspectos relacionados con la obtención de Glucosamina de los desechos de camarón. En la definición de términos se definen las palabras poco conocidas en la investigación. El tercer capítulo, marco metodológico, en este se explica el tipo, el diseño, el muestreo y la población de la investigación a estudiar así como también los métodos empleados en dicha investigación. En el cuarto capítulo, se describen los análisis y resultados obtenidos en la investigación basándose en los métodos y técnicas utilizadas. Y por último conclusiones, recomendaciones establecidas mediante el desarrollo de la investigación así como también las referencias y anexos que sustentan la investigación. CAPÍTULO I EL PROBLEMA Planteamiento del Problema En un mundo globalizado la conservación del ecosistema y el aprovechamiento al máximo de la materia prima, son objetivos principales de las industrias, principalmente las de producciones alimenticias, generando desechos que traen como consecuencia pérdidas industriales e impactos negativos al ambiente. La comunidad industrial por lo general no ha considerado el beneficio que estos desperdicios ofrecen como materia prima para la obtención de otros productos de interés comercial. Los problemas ambientales de la sociedad se han ido incrementando a medida que los países avanzan en su desarrollo y en el implemento de nuevas tecnologías, cada día nacen nuevas industrias que solo se preocupan en generar productos para el consumo humano, dejando a un lado la protección del hábitat. Cabe mencionar, que las camaroneras se consideran una de las industrias alimenticias que expulsan al ambiente gran cantidad de desperdicios orgánicos no biodegradables, según la entrevista realizada a la Ingeniera González, jefa del departamento de calidad de la camaronera Golfomar Export se dio a conocer que cada camarón representan un 35% de desechos y 65% de producto y teniendo en cuenta que los residuos son exoesqueletos y que la quitina se encuentra principalmente en ellos y otros artrópodos, se pudo considerar la obtención de la Glucosamina utilizando como materia prima los desechos de los crustáceos específicamente los del camarón. Los suplementos de Glucosamina se obtienen a partir de la quitina, esta sustancia se encuentra en las carcasas del camarón, cangrejo, langosta y otras criaturas del mar (Ortiz, 2009). La Glucosamina, se utiliza principalmente en la rama de la medicina, debido a que cumple funciones importantes sobre el cuerpo humano, por ejemplo participa directamente en la desintoxicación y protección contra la inflamación del hígado, en la estimulación del aumento de los intestinos infantiles, controla el crecimiento de la célula y a su vez para tratar la úlcera, la artritis, reparación de cartílagos, músculos y ligamentos; también es ampliamente utilizada en alimentos. De hecho es un compuesto que se encuentra naturalmente en el cuerpo, como la glucosa y el aminoácido glutamina (Linoflax, 2009). Adicionalmente, la Glucosamina se utiliza en las industrias alimenticias, farmacéuticas, textil, agrícola, cosmética, papel y biotecnología, estas empresas buscan el método más viable y rápido para la extracción de la misma (Bid Network, 2008). Sin embargo en la República Bolivariana de Venezuela, no se han realizado estudios para la obtención de la Glucosamina debido a que esta es importada de otros países llegando al mercado venezolano con un precio elevado. Por tal motivo, en esta investigación se empleó como materia prima los desperdicios del camarón para la obtención de Glucosamina exclusivamente los desechos generados por la camaronera Golfomar Export, municipio Carirubana estado Falcón, considerando que la República Bolivariana de Venezuela es un país rico en costas, se pudiera considerar factible y conllevaría a disminuir la importación de la misma si se desarrolla el proceso a nivel industrial. De lo anteriormente expuesto surgieron las siguientes interrogantes: ¿Se podrá identificar la Glucosamina obtenida mediante las pruebas de reconocimiento? ¿Cuál será el rendimiento obtenido en la extracción de la Glucosamina a partir de estos desechos? Objetivos de la Investigación Objetivo General Obtener Glucosamina a partir de los desechos generados por la camaronera Golfomar Export, municipio Carirubana, estado Falcón. Objetivos Específicos Establecer el plan de muestreo válido y representativo para recolección de las conchas de camarón (Lipotenaus Smithtti). Realizar la hidrólisis ácida de la quitina para la obtención de la Glucosamina. Identificar la Glucosamina obtenida por medio de pruebas físicas: punto de fusión y pruebas químicas de reconocimiento como: Felhing, Tollens, Benedict, Barfoed. Determinar el rendimiento de la Glucosamina a partir de los residuos del camarón empleados como materia prima. Justificación de la Investigación La República Bolivariana de Venezuela es un país conformado por 27 estados, 14 están rodeados por costas que se extiende en límites geográficos de este a oeste, entre estos el estado Falcón donde una las actividades económicas principales y generadoras de empleo es la adquisición y comercialización de los alimentos marinos; lo cuales son: peces, ostras, langostas, cangrejos, pulpos, chipichipi y camarón, estos alimentos una vez sacados del mar son sometidos a un proceso de limpieza antes de ser comercializados, específicamente los camarones son despojados de su exoesqueletos, el cual es desechado. Estos desperdicios traen como consecuencias impactos negativos al ambiente como por ejemplo contaminación de suelos y aire, y a su vez perdidas industriales a las camaroneras, esto ocurre porque muchas de las industrias no han tenido inquietud en utilizar estos desechos para otro fin común como lo es, ser aprovechadas para la obtención de 2-amino-2-desoxi-D-glucosa quitosamina ya que la concha de ostión contiene un alto porcentaje de quitina polímero precursor de la Glucosamina. La Glucosamina está constituida en un 50% por ácido hialurónico, el cual se encuentra en el líquido sinovial, también interviene en la producción de colágeno y proteoglicanos, dos constituyentes necesarios para el mantenimiento y restauración del cartílago articular. Los proteoglicanos tienen dos funciones importantes; la primera es absorber cantidad adecuada de agua para dar al cartílago la elasticidad necesaria para la compresión; la segunda está relacionada con la organización del colágeno. Además de esto está siendo un popular suplemento debido a su alto rango de aplicaciones desde osteoartritis hasta alteraciones articulares producidas por la edad o el ejercicio físico, también ha mostrado propiedades antiinflamatorias mediante un mecanismo que inhibe la actividad de enzimas proteolíticas (Ortiz, 2009). Además de esto, traerá beneficios a las industrias farmacéuticas ya que toda la Glucosamina es importada de otros países, al mismo tiempo, si se lograra la obtención a gran escala dentro del país se reducirán los costos de dicho suplemento y será mucho más fácil su adquisición para todas aquellas personas que necesitan de este suplemento. Alcances y limitaciones de la Investigación Alcances de la Investigación Esta investigación permitió obtener la Glucosamina a escala piloto a partir de los desechos del camarón de la camaronera Golfomar Export del municipio Carirubana estado Falcón. Esto conlleva a darle un valor agregado a estos desechos, disminuyendo el impacto generado por la disposición final de los mismos. Limitaciones de la Investigación En esta investigación se logró el compuesto de quitina porque al hidrolizarlo se obtuvo Glucosamina y esta depende de la misma, lo que quiere decir que si hubo presencia de quitina mas no se garantizó su pureza mediante la realización de un espectro de infrarrojo debido a que el Instituto Universitario de Tecnología “Alonso Gamero” no cuenta con el equipo de espectrofotometría de infrarrojo así como tampoco se tenía un patrón de quitina para su identificación y donde podía haber realizado el análisis el tiempo era un factor limitante. CAPÍTULO II MARCO REFERENCIAL Antecedentes de la Investigación La revisión de fuentes bibliográficas permitió ubicar algunas investigaciones referidas a la obtención de la Glucosamina e identificación de la misma, los cuales sirvieron de apoyo para enriquecer esta investigación. Entre las más importantes cabe citar las siguientes: Ortiz, (2009). Realizó un trabajo titulado “Obtención de Glucosamina a partir de la Concha de Ostión del Género Crassostrea virginica” en México. El objetivo del presente trabajo fue obtener un amino azúcar denominado Glucosamina (2-amino2-desoxi-D-glucosa quitosamina) a partir de hidrólisis ácida del segundo polímero natural más abundante en la naturaleza la quitina de las conchas de ostión del género Crassostrea virginica. Este tipo de investigación fue de campo y experimental para lo cual, las conchas se obtuvieron de restaurantes de la ciudad de México en base a las características físicas. Se analizó mediante las pruebas para glucosa (Felhing, Molisch, Tollens, Benedict, Barfoed, ácido periódico y Formación de osazona). Para confirmar la presencia de 2-amino-2-desoxi-D-glucosa quitosamina, se efectuaron las pruebas de punto de fusión y análisis espectroscópico de (IR) utilizando como estándar 2-amino-2-desoxi-D-glucosa quitosamina marca Merck. El estudio demuestra que la concha de ostión del genero Crossostrea virginica contiene 2-amino-2-desoxi-D-glucosa quitosamina entre un 49 y 53 % mediante hidrólisis ácida, se logró la hidrólisis del segundo polímero más abundante en la naturaleza la quitina, se demostró que con ácido cítrico no se logra hidrolizar la quitina, pero se obtiene citrato de calcio. El CO2 generado (maceración) deberá ser atrapado impidiendo eliminarlo hacia la atmósfera, con la finalidad de impedir el incremento del calentamiento global. El antecedente anteriormente descrito aportó a la presente investigación el método empleado para realización de la hidrólisis ácida, al mismo tiempo se tomó como punto de referencias las pruebas empleadas para la identificación del compuesto. Delgado y Guerra, (2009). Realizaron un trabajo de grado titulado “Evaluación de Metales Pesados (Ni, Co y Cd) en el Camarón Blanco (litopenaus smithtti) en las Principales Zonas Pesqueras de la Comunidad de Tacuato, municipio Carirubana del estado Falcón”. La presente investigación tiene como objetivo evaluar métales pesados (Ni, Co y Cd) en el camarón blanco (litopenaus smithtti) en las principales zonas pesqueras de la comunidad de Tacuato, municipio Carirubana del estado Falcón”. El tipo de investigación que se desarrolló fue de campo, ya que las muestras de camarón blanco se tomaron directamente de la realidad sin manipular ni modificar el ambiente en el cual se encuentra, el diseño que se ajustó para la investigación es no experimental del tipo transaccional ya que el estudio se realiza sin manipulación deliberada de las variables y en los que solo se observan los fenómenos en su ambiente natural con un muestreo aleatorio simple. Para la determinación de los metales se empleó la técnica de espectrometría de absorción atómica dando como resultado los valores promedios Ni 0.219 a 0.438 mg/l; Co 0.033 a 0.267 mg/l; Cd 0.00 a 0.447 mg/l. Los resultados se consideran por debajo del máximo de contenido de metales pesados por ello se concluye que los camarones blancos (Litopenaus Smithtti) son aptos para consumo humano. El trabajo anterior aporto á esta investigación el tipo de muestreo realizado, consistió en un muestreo aleatorio simple el cual se basó en que todos los individuos de una población tenían la misma posibilidad de ser elegidos. También se relaciona con el diseño que se utilizó. Alvarado, Almeida y Arancibia, (2005). Realizaron una investigación titulada “Obtención de Quitina, Transformación a Quitosanos y Elaboración de una Película Biodegradable a partir de los Desperdicios de los Crustáceos”. El objetivo fundamental de esta investigación fue obtener y caracterizar una película biodegradable obtenida a partir del caparazón del camaron (penaeus vannamei) mediante la transformación de su quitina a quitosanos. El tipo de investigación fue de tipo experimental aplicada, debido a que se trabajo con caparazones frescos de camaron cultivados. Entre las películas basadas en polisacáridos están las elaboradas con quitosanos. El quitosano (β- 1,4 –D- glucosamina) es un polisacárido lineal abundante obtenido en la desacetilacion de quitina β- (1,4) –(N-acetilglucosamina) principal constituyentes de los crustáceos. Este polímero abundante con capacidad de formación de films y otras muchas aplicaciones a nivel industrial, se utiliza en textiles, cosméticos, productos químicos y medicina así como también en el tratamiento de las aguas. Es un material que posee grandes aplicaciones por su carácter cationico, no biodegradable, no toxicidad, y actividad biocida con promisorias aplicaciones en empaques y cobertores de alimentos como una barrera contra los agentes contaminantes, microorganismo y el intercambio de agua y gases del exterior. El proyecto realizado favoreció a la presente investigación como soporte y aplicación, porque establece los procedimientos y técnicas que se realizaron en la obtención de la quitina por el método de desproteinización, blanqueo y desmineralización. Bases Teóricas En el desarrollo de este proyecto fue necesario, tener presente el significado de muchos fundamentos teóricos que ayudaron a los investigadores en la realización del mismo, algunos de estos son Los Crustáceos (Crustáceo, del latín crusta, "costra" y aceum, "relación o la naturaleza de algo") son un extenso subfilo de artrópodos, con más de 67.000 especies y sin duda faltan por descubrir hasta cinco o diez veces este número. Incluyen varios grupos de animales como las langostas, los camarones, los cangrejos, los langostinos y los percebes. Los crustáceos son fundamentalmente acuáticos y habitan en todas las profundidades, tanto en el medio marino, salobre y de agua dulce; unos pocos han colonizado el medio terrestre, como la cochinilla de la humedad (isópodos). Los crustáceos son uno de los grupos zoológicos con mayor éxito biológico, tanto por el número de especies vivientes como por la diversidad de hábitats que colonizan; dominan los mares, como los insectos dominan la tierra. Como característica propia y definitoria del grupo se puede citar la presencia de larva nauplio provista de un ojo naupliano en alguna etapa de su vida, que puede ser sustituido más tarde por dos ojos compuestos. Son los únicos artrópodos con dos pares de antenas, tienen al menos un par de maxilas y pasan por períodos de muda e intermuda para poder crecer. Todos excepto Cirripedia son de sexos separados. A la ciencia que estudia a los crustáceos se la conoce como carcinología (Brusca, 1990). El Camarón o Quisquilla Es un crustáceo del orden de los decápodos. Viven tanto en aguas dulces como saladas, así como en regiones templadas y tropicales o frías y gélidas. Habita en aguas poco profundas, cerca del fondo, donde se alimenta de plantas y pequeños animales. Ciertas especies son pelágicas y viven en aguas abiertas, a veces a profundidades de hasta 5 kilómetros. Suelen ser transparentes, de color verde o castaño. Tienen el abdomen grueso y musculoso, el cual contraen de forma brusca cuando realizan sus rápidos desplazamientos de huida hacia atrás. El camarón común europeo se encuentra en abundancia en las playas de arena. Tiene un tamaño promedio de 10 cm. de largo y es muy valorado por su exquisitez (Ver figura 1) Figura 1 El Camarón Lipotenaus Smithtti Fuente: Pedronal, (2009) Exoesqueleto Es el esqueleto externo continuo que recubre toda la superficie de los animales del filo artrópodos (arácnidos, insectos, crustáceos, miriápodos y otros grupos relacionados), donde cumple una función protectora, de respiración y otra mecánica, proporcionando el sostén necesario para la eficacia del aparato muscular. También se llama exoesqueleto a la base, frecuentemente mineralizada, que secretan los corales clase Anthozoa del filo Cnidaria (Chapman, 2009). Producción de Camarón en Venezuela En el occidente de Venezuela se cultivan anualmente 40.000 toneladas de camarón al año. El producto es colocado en su totalidad en el medio internacional, específicamente en los Estados Unidos y la unión Europea. Este sector hace que la nación ocupe el lugar número 15 entre los principales productores de camarones en el mundo, con un porcentaje de 0,58% (10.512 Kg), para el 2001, sin embargo, el aporte ha crecido en los últimos tres años y hoy se habla de una producción de 40 mil toneladas anuales (Panodi, 2008) La Asociación de Productores de Camarones del Occidente, la cual arropa a los estados Falcón, Táchira, Mérida, Trujillo y Zulia, cuenta con 24 fincas registradas y un total de 30 proyecto, lo cual hace un total de 7.500 hectáreas cultivadas en piscinas o espejo de agua, algunos proyectos están en proceso y otros terminados, así que se estima que para final del 2005 se llegará a cultivar 2.500 hectáreas más (Panodi, 2008) El cultivo de camarón se inició en la República Bolivariana de Venezuela en el año 1984, sobre todo en el occidente del país, sin embargo, años después se iniciaron las primeras experiencias en el Sur del Lago, demostrándose el gran potencial de nutrientes que se tiene para alimentar a este tipo de mariscos. Entre las ventajas que tiene Venezuela para la producción de camarones, es que se debe obtener dos cosechas por año con mayor calidad y competitividad en el extranjero (Panodi, 2008). Usos de Desechos del camarón Los desechos que se generan en las producciones de camarón se utilizan como materia prima en la obtención de los polisacáridos naturales como lo son: la Glucosamina, la quitina, el quitosano entre otros. Estos polisacáridos tienen aplicaciones en la industria cosmética, alimentos, farmacéutica, textil, agrícola, papel y biotecnología. Aplicaciones en la Industria cosmética, para la elaboración de champú y jabones medicados como bactericidas, elaboración de talcos para el tratamiento de hongos. En la Industria textil en la elaboración de fibras y tejidos que evitan el paso de los rayos X. En la Agroindustria, como materia prima para la elaboración de productos emulsionados utilizados en las plantas para el control de plagas. También como nematicida en tratamientos radiculares en terrenos húmedos. En la Industria Farmacéutica se utiliza como principio activo en el tratamiento de diferentes enfermedades. Además, el valor agregado en formulaciones propias probadas en las diferentes industrias, ejemplo: la Industria del azúcar, como floculante (polímero natural de alto peso molecular), que reemplazaría los químicos o productos sintéticos utilizados en dicho proceso, los cuales están siendo restringidos por los controles establecidos en la Industria Alimenticia (Bid Network, 2008). La Glucosamina (C6H13NO5) El amino azúcar Glucosamina 2-amino-2-desoxi-D-glucosa se encuentra en la mucina una glucoproteina constituyente de la saliva. La forma polimérica de la Glucosamina es conocida como quitina es un componente importante del exoesqueleto (caparazón) de los crustáceos y otros artrópodos, en los hongos y en otros muchos organismos, siendo los monosacáridos más abundantes en la figura dos se muestra la formula estructural de este compuesto. La Glucosamina se sintetiza comercialmente mediante la hidrólisis de exoesqueletos de crustáceos. La Glucosamina también es utilizada de forma bastante común en el tratamiento de la artritis, a pesar de que su aceptación como medicamento terapéutico sea variable. Aparece en la literatura también como quitosamina y sus estructuras moleculares y estructuras ramificadas (Stanley, 1988). (Ver figura 2). Figura 2 Estructura de la α-D-Glucosamina y Estructura de la β-D-Glucosamina Fuente: Stanley, (1988) Usos de la Glucosamina Este aminoácido en suplemento dietético sirve para que los músculos ejercitados no bajen de volumen, esto significa que si el músculo crece un cm no disminuye de ahí. En ciertas ocasiones, como el estrés, traumas o infecciones, puede ser considerado como "semiesencial". Se emplea en casos en los que algunas dolencias han postrado a un paciente en cama durante un periodo largo de tiempo, los atletas de musculación lo emplean debido a sus efectos "constructores" de músculo, así como en los pacientes de cáncer y SIDA. Esto es debido a que las situaciones de trauma, cirugía y demás situaciones de stress hacen que los músculos liberen glutamina al torrente sanguíneo con la consiguiente pérdida de masa muscular, (Linoflax, 2009). La suplementación de L-glutamina puede ser beneficiosa en casos de artritis, enfermedades inmunodeficientes, fibrosis, desordenes intestinales, úlceras pépticas, daños en los tejidos debido a radiación, cáncer (en algunos casos se detectan niveles anormales submínimos de glutamina) , etc. La glutamina se comercializa en polvo y en capsulas. Los suplementos deben guardarse en un ambiente seco ya que la humedad los "degrada" y convierte en amoníaco y en ácido piroglutámico. La glutamina no debería ser administrada a personas con cirrosis, problemas renales, síndrome de Reye, o cualquier otro problema de salud resultante de un exceso de amoniaco en sangre, (Linoflax, 2009). Investigaciones realizadas en animales han mostrado que la administración de glutamina tenía efectos de reducción del apetito, sin embargo este efecto no se ha estudiado en humanos. Se ha administrado con éxito en la nutrición parenteral de los pacientes hospitalarios (en dosis estándares, que van desde los 2.8 hasta los 7.3 gramos/1000 calorías) (Linoflax, 2009). Proceso de Obtención de Glucosamina La Hidrólisis Es una reacción química entre agua y otra sustancia, como sales. Al ser disueltas en aguas, sus iones constituyentes se combinan con los iones hidronio u oxidrilos, H3O+ o bien con los iones hidroxilos, OH- , o ambos. Dichos iones proceden de la disociación o autoprotolisis del agua. Esto produce un desplazamiento del equilibrio de disociación del agua y como consecuencia se modifica el valor del pH. (Skoog, 2001). Hidrólisis Ácida Las moléculas de celulosa se hidrolizan en condiciones ácidas, con despolimerización rápida en ácidos minerales fuertes. La hidrólisis ácida heterogénea da lugar a una reducción rápida en la fuerza de tensión y en la viscosidad, ya que hay tanques preferenciales en las cadenas de celulosa de las regiones amorfas más accesibles. Después de esta rápida reacción inicial, la longitud de la cadena se aproxima a un valor de nivelación o limitante. En esta etapa, las partículas microcristalinas que se producen pueden aislarse y venderse como aditivos alimentarios que no se pueden metabolizar. En los últimos años se han hecho esfuerzos para hidrolizar la célula vía enzimática con celulosas microbianas. De ser factible económicamente esta hidrólisis para obtener D – glucosa podría presentar un nuevo método en gran escala para procesar la celulosa (Donald, 2008). Hidrólisis Acida de la Quitina La hidrólisis ácida de la quitina produce cantidades equimolares de glucosamina y ácido acético, una ruptura más cuidadosa del polisacárido proporciono la unidad monómera real 2 – acetamido- 2 – desoxi – D – glucosa, la quitina es un poli – ß – glicosido que posee enlaces 1,4 glicosidicos, (Stanley, 1988). En la figura siguiente se muestra la hidrólisis que da en la quitina. Figura 3 Hidrólisis Ácida de la Quitina CH2OH H O H OH CH2OH OH O HCL H + H2O H H H OH OH NHCOCH3 Quitina Fuente: Solomons, (1986). OH OH + CH3COOH H H H H NH2 Glucosamina Pruebas de Identificación de Compuestos Orgánicos Se identificara la Glucosamina en el producto obtenido mediante las siguientes pruebas químicas y físicas Pruebas Químicas: Fehling: El reactivo de Fehling, también conocido como Licor de Fehling, es una disolución descubierta por el químico alemán Hermann von Fehling y que se utiliza como reactivo para la determinación de azúcares reductores. Sirve para demostrar la presencia de glucosa, así como para detectar derivados de esta tales como la sacarosa o la fructosa (Gessner, 1975). El licor de Fehling consiste en dos soluciones acuosas: • Sulfato de cobre cristalizado, 35 g; agua destilada, hasta 1.000 mL. • Sal de Seignette(Tartrato mixto de Potasio y Sodio), 150 g; solución de hidróxido de sodio al 40%, 3; agua, hasta 1.000 mL. Ambas se guardan separadas hasta el momento de su uso para evitar la precipitación del hidróxido de cobre (II) El ensayo con el licor de Fehling se fundamenta en el poder reductor del grupo carbonilo de un aldehído. Éste se oxida a ácido y reduce la sal de cobre (II) en medio alcalino a óxido de cobre (I), que forma un precipitado de color rojo. Un aspecto importante de esta reacción es que la forma aldehído puede detectarse fácilmente aunque exista en muy pequeña cantidad. Si un azúcar reduce el licor de Fehling a óxido de cobre (I) rojo, se dice que es un azúcar reductor. Esta reacción se produce en medio alcalino fuerte, por lo que algunos compuestos no reductores con la fructosa que contiene un grupo cetona puede enolizarse a la forma aldehido dando lugar a un falso positivo. Al reaccionar con monosacáridos, se torna verdoso; si lo hace con disacáridos, toma el color del ladrillo (Gabb, 1967). Tollens: El reactivo de Tollens es un complejo acuoso de diamina-plata, presentado usualmente bajo la forma de nitrato.Recibe ese nombre en reconocimiento al químico alemán Bernhard Tollens. Usos El complejo diamina-plata(I) es un agente oxidante, reduciéndose a plata metálico, que en un vaso de reacción limpio, forma un "espejo de plata". Éste es usado para verificar la presencia de aldehídos, que son oxidados con ácidos carboxílicos (Uca, 2010) Una vez que ha sido identificado un grupo carbonilo en la molécula orgánica usando 2,4-dinitrofenilhidrazina (también conocido como el reactivo de Brady o 2,4- DNPH), el reactivo de Tollens puede ser usado para discernir si el compuesto es una cetona o un aldehído. Al agregar el aldehído o la cetona al reactivo de Tollens, ponga el tubo de ensayo en un baño maría tibio (Uca, 2010) Si el reactivo es un aldehído, el test de Tollens resulta en un espejo de plata. En otro caso, puede formarse o no un espejo amarillento. El reactivo de Tollens es también un test para alquinos con el enlace triple en la posición 1. En este caso se forma un precipitado amarillo de carburo de plata Preparación en el laboratorio • A nitrato de plata acuoso, agregar una gota de hidróxido de sodio diluido. Se formará un precipitado marrón de óxido de plata. • Agregar amoníaco hasta que el precipitado se disuelva totalmente. Esto es nitrato de plata amoniacal [Ag(NH3)2]NO3 (ac), la forma más común del reactivo de Tollens (Uca, 2010). Benedict: solución acuosa de carbonato sódico, sulfato de cobre y citrato sódico. El color azul se convierte en un precipitado o suspensión roja, naranja o amarilla en presencia de un azúcar reductor como glucosa y por ello se emplea para el ensayo de dichas materias, especialmente de los análisis de orina en el tratamiento de la diabetes (Gesser, 1975) Barfoed: Es una reacción para identificar monosacáridos, aunque algunos disacáridos (reductores), dan positiva la reacción, pero con más tiempo de calentamiento, ya que así se hidroliza el disacárido. El fundamento radica en la reducción del acetato cúprico a oxido cuproso. (Métodos de identificación de carbohidratos (Gabb, 1967). Pruebas Físicas: Punto de Fusión: El punto de fusión o punto de congelación de una sustancia pura es la temperatura en que sus cristales están en equilibrio con la fase liquida a presión atmosférica. Se llama generalmente punto de fusión cuando la temperatura de equilibrio es conseguida por el calentamiento del sólido. Ordinariamente el punto de fusión se refiere a la temperatura por encima de 0 °C el punto de fusión del hielo. (Gessner, 1975). Definición de Términos Básicos. Artrópodos. Constituyen el filo más numeroso y diverso del reino animal (Animalia). Incluye, entre otros, insectos, arácnidos, crustáceos y miriópodos (Cisne, 1974). Absorción. Proceso en que la energía electromagnética se transmite a los átomos, iones o moléculas que componen la muestra. La absorción provoca que estas partículas pasen de su estado normal a la temperatura ambiente o estado fundamental a uno o más estados de energía superior (Skoog, 2001). Blanqueo. Es un proceso de decoloración. Los agentes que producen color en las fibras son con frecuencia compuestos orgánicos que contienen cadenas conjugadas, es decir, enlaces de doble y sencillos alternados estos grupos se llaman cromoformos (Othmer, 1998). Biocidas. Pueden ser sustancias químicas sintéticas, naturales o de origen biológico o físico y están destinados a destruir, contrarrestar, neutralizar, impedir la acción o ejercer un control de otro tipo sobre cualquier microorganismo considerado nocivo para el hombre (Alberts, 1987). Camarón. Es un crustáceo decápodo marino de 3 a 4 cm de longitud con un cuerpo estrecho y algo encorvado y antenas muy largas, su carne es muy apreciada (Pedronal, 2006). Carbohidratos. Es una clase de compuestos que aparecen ampliamente en la naturaleza y tienen la formula general. Cx(H2O)y (Carey, 1999). Celulosa. Es el principal componente estructural de la materia vegetal. La madera es de un 30 a 40 % celulosa, y el algodón en más de 90 %, es un material abundante (Carey, 1999). Emisión. Señales de ondas transmitidas (Skoog, 2001). Monosacáridos. Azúcar que no se puede hidrolizar a carbohidratos más simples de menor contenido de carbono (Carey, 1999). Polisacáridos. Este compuesto está constituido por unidades de monosacáridos: moléculas e incluso miles de ellas. Estas unidades se mantienen unidas por enlaces glucodicos que pueden romperse por hidrólisis (Othmer, 1998). Proteoglicanos. Representan una clase especial de glicoproteínas que son altamente glicosiladas. Consisten en un centro proteico con una o más cadenas de glicosaminoglicanos (GAG)s unidas covalentemente. Estas cadenas de glicosaminoglicanos (GAG) son largos polímeros de carbohidratos lineares que están cargados negativamente bajo condiciones fisiológicas, debido a la presencia de grupos sulfato y de grupos de ácido urónico (Alberts B, 1987). Quitina. Es un polímero de N-acetilglucosamina y residuos de glucosamina que se encuentra ampliamente distribuido en la naturaleza, tal es así que constituye el segundo polímero más abundante después de la celulosa (Wander, 1980). Quitosano. Es la forma N-desacetilada de la quitina de la que se obtiene tras sustituir los grupos acetamido por grupos amino. Forma parte de la pared corporal de la mayoría de hongos, levaduras y mohos. Asimismo, se biodegrada en el hombre por la acción de la lisozima (Wander, 1980). Reflexión. Varios rayos de un haz de luz incidente sobre una superficie reflectora lisa (Skoog, 2001). UDP-N-acetilglucosamina. Es un compuesto molecular, formado por un nucleótido (Uridina difosfato) y una acetilglucosamina, derivado de la Glucosamina, que a la misma vez es un derivado del monosacárido glucosa (Wander, 1980). Operacionalización de variables OBTENCIÓN DE GLUCOSAMINA A PARTIR DE LOS DESECHOS DEL CAMARÓN. CASO: CAMARONERA GOLFOMAR EXPORT MUNICIPIO CARIRUBANA DEL ESTADO FALCÓN UNIDAD DE OBSERVACIÓN TIPO DE INVESTIGACIÓN DISEÑO DE INVESTIGACIÓN Conchas de camarón De campo No experimental del tipo transaccional Objetivo General: Obtener Glucosamina a partir de los desechos del camarón generados por la camaronera Golfomar export municipio Carirubana estado Falcón. Objetivos específicos Variables Definición conceptual Dimensiones Indicadores Identificar la Glucosamina obtenida por medio de pruebas físicas y químicas de reconocimiento como: Felhing, Tollens, Benedict, Barfoed. Propiedades físicas Pruebas de reconocimiento químicos Determinar el rendimiento de Rendimiento la Glucosamina a partir de los residuos del camarón. Fuente: Elaboración Propia. Propiedades Físicas: Propiedad de un compuesto que Punto de fusión puede cambiar sin que implique composición química, ejemplo; punto de fusión y punto de ebullición, (Sybel. P, 1991). °C; °F Pruebas de Reconocimiento Químico: Es la Propiedades identificación cualitativa de un elemento o compuesto organolépticas en una mezcla la cual puede ser gaseosa, liquida o solida. (George, 1961). Color Rendimiento: Es la cantidad de producto obtenido en Porcentaje de una reacción química el cual el rendimiento absoluto rendimiento debe ser dado en gramos o en moles, (Smith vogel´s, 1996). %R CAPÍTULO III MARCO METODOLÓGICO La revisión de fuentes bibliográficas permitió ubicar algunos conceptos requeridos para el tipo, diseño, población y muestra de la investigación realizada los cuales sirvieron de apoyo y enriquecimiento a la investigación. Tipo de Investigación Según Tamayo (2001); Una investigación de campo “consiste en la recolección de datos directamente de la realidad, por lo cual es denominado primario, su valor radica en que permite cerciorarse de las verdaderas condiciones en que se han obtenido los datos” (p. 54). Debido a la manera como se llevó a cabo esta investigación y por las vías como se efectuó dicho estudio se considera de campo; ya que los datos fueron obtenidos directamente en el sitio donde se tomó la muestra; es decir en la camaronera Golfomar Export municipio Carirubana del estado Falcón. A partir de esta muestra se obtuvo la Glucosamina y se determinó el porcentaje de rendimiento. Tamayo (1987). La investigación descriptiva, trabaja sobre realidades de hecho y su característica fundamental es la de presentarnos una interpretación correcta. La investigación se considera descriptiva debido a que se muestran de manera directa los métodos, técnicas y procedimientos para la obtención de la Glucosamina a partir de los desechos del camarón en la camaronera Golfomar Export municipio Carirubana del estado Falcón. Diseño de la Investigación Según Hernández Fernández y Lucio, (2003), El diseño que se ajustó para esta investigación es no experimental del tipo transaccional, “se encarga del estudio que se realiza sin manipular deliberada las variables y en los que solo se observan los fenómenos en su ambiente natural para después analizarlo, en un momento especifico. El diseño de la investigación fue tomado de esta forma puesto que la muestra fue recolectada en un tiempo único, donde se realizó el ensayo sin manipular variables para la obtención de Glucosamina a partir de los desechos del Camarón de la camaronera Golfomar Export municipio Carirubana, estado Falcón. Población y Muestra de la Investigación Población Levin y Rubín, (1996). La población puede ser infinita. Cuando el número de elementos que integra la población es muy grande, se puede considerar a esta población como una población infinita En esta investigación se tomó como población todos los desechos de camarones de la Camaronera Golfomar Export, municipio Carirubana estado Falcón donde la totalidad del fenómeno a estudiar es infinita, ya que la cantidad semanal de desechos generados es de 500 a 700 kilogramos y de 2000 a 2800 kilogramos mensuales aproximadamente. Muestra Levin y Rubín, (1996). “la muestra infinita se define como un subconjunto representativo de un universo o población”. La muestra se tomó de los desechos del camarón de la camaronera Golfomar Export municipio Carirubana estado Falcón, donde se ejecutó el muestreo aleatorio simple. Considerando que la obtención de Glucosamina se realizó a escala de laboratorio y existieron limitantes en relación a las cantidades de reactivos y la capacidad de los materiales utilizados, se recolectó 4 kilogramos de muestra con el fin de garantizar la obtención de la Glucosamina puesto que la sustancia investigada tendía a descomponerse. Para la recolección de la muestra se tomaron los siguientes criterios: color, tiempo de recolección y la constitución de la concha, así como también el traslado que se realizó en una cava con hielo para evitar su descomposición antes del pre tratamiento de la misma, esta se mantuvo a 4°C para su conservación y posterior ensayo. Etapas de la Investigación Esta investigación se llevó a cabo en varias etapas, las cuales permitieron aplicar específicamente cada procedimiento a desarrollar; donde se presentará desde la toma De la muestra hasta análisis y resultados obtenidos. Entre estas etapas se encuentran: Etapa I: Revisión Bibliográfica Esta etapa comprende el estudio de los diferentes textos; guías y métodos estandarizados tales como: trabajos de grado, trabajos de investigación, guías y consulta a través de internet para adquirir conocimientos de los procedimientos analíticos en la obtención de la Glucosamina a partir de los desechos del camarón. Etapa II: Selección de la Muestra Luego de obtener la orientación bibliográfica se procedió a la toma de la muestra, donde se realizó un muestreo aleatorio simple, en la camaronera Golfomar Export municipio Carirubana estado Falcón. Para dicha selección se tomaron únicamente las conchas que cumplían con los criterios establecidos, color, olor a pescado fresco, y constitución de la concha de textura firme. Etapa III: Pre tratamiento y ensayo de la Muestra El tratamiento de la muestra consistió en los siguientes pasos: eliminación de restos del camarón (carne y patas), seguidamente lavado con agua destilada para la eliminación de impurezas, posteriormente el secado en una estufa a 90°C por 5 horas, luego tamizado y por ultimo molienda de la muestra para reducir tamaño, como se muestra en la figura 4 Figura 4 Pre tratamiento de la Muestra Fuente: Propia. Etapa IV: Montaje del Ensayo para la Obtención de la Glucosamina. Los métodos utilizados para la obtención de la quitina fueron basados en la investigación realizada por Alvarado y colaboradores, (2005). Estas técnicas empleadas fueron mejoras con la realización de pruebas preliminares para la obtención de mejores resultados. Estas mejoras se describen a continuación. Ensayo 1 El primer ensayo se realizó con los métodos y técnicas utilizadas por Alvarado y colaboradores. En vista de que los resultados obtenidos anteriormente no cumplían con todos los criterios establecidos se procedió a realizar un ensayo 2 para mejorar la desproteinización y el blanqueo de la muestra. Ensayo 2 En este ensayo se procedió a aumentar el tiempo de la desproteinización en 2 horas constante sin variar su temperatura para obtener una mayor desproteinización y se repitió el blanqueo dos veces por un tiempo de 15 minutos con el fin de llegar a un mayor eliminación de pigmentos. Seguidamente de los ensayos para la obtención de la quitina se realizaron los ensayos para la obtención de la Glucosamina. La obtención de la Glucosamina se realizó mediante la hidrólisis ácida de la quitina, el cual consistió en romper un enlace de N- acetil β- Glucosamina, para lo cual se realizó el ensayo 3. Ensayo 3 Para la realización de la hidrólisis ácida de la quitina se empleó los mismos métodos y técnicas utilizadas para una hidrólisis ácida general consistiendo en las variaciones de tiempo de 2, 4 y por último 6 horas, siendo este el intervalo donde se logró romper el enlace (N- acetil β- Glucosamina). Una vez realizadas las mejoras en las técnicas, métodos y procedimientos para la obtención de la Glucosamina se procedió a realizar los ensayos establecidos. Obtención de la quitina. Desproteinización Se pesaron 250g de las conchas ya previamente tratadas, se sometieron a una desproteinización con 900 mL de hidróxido de sodio al 3% durante 2 horas a temperatura de 80°C con agitación constante, como se puede apreciar en la (figura 5) luego se procedió a decantar y descartar el líquido, para la obtención de una masa desproteinizada (ver figura 5). Figura 5 Desproteinizacion de la Muestra Fuente: Propia. Figura 6 Decantación de la Muestra Fuente: Propia. Blanqueo o Despigmentación El producto obtenido anteriormente se trató con una cantidad de 300 mL solución de hipoclorito de sodio al 5% durante 15 minutos a temperatura ambiente con el fin de decolorar la muestra cuyo color es marrón o ladrillo (ver figura 7), se decanta y se descarta el líquido. Este procedimiento se realizó 2 veces. Figura 7 Blanqueo o Despigmentación. Fuente: Propia. Desmineralización El sólido remanente obtenido, se desmineralizó con una cantidad de 500mL de ácido clorhídrico 1M a temperatura ambiente por 60 minutos con agitación constante como se muestra (ver figura 8). Figura 8 Desmineralización. Fuente: Propia. Purificado y Filtrado El producto obtenido (quitina) se somete a lavados con agua destilada caliente para eliminar el exceso de reactivos (ver figura 9) y de manera simultánea se filtra con un papel filtro número 42. Figura 9 Purificado y Filtrado. Fuente: Propia. Secado de la Quitina La quitina ya obtenida se seca en una estufa a temperatura de 40°C por 30 minutos (ver figura 10 y 11). Figura 10 Secado de la Quitina. Fuente: Propia. Figura 11 Quitina obtenida Fuente: Propia. Obtención de la Glucosamina Hidrólisis Ácida de la Quitina En un matraz enlermeyer de boca esmerilada de 1000mL, se agregaron 243 gramos de quitina con una cantidad de 730 mL de ácido clorhídrico 1M en relación 1:3 previamente homogeneizado, luego conectó a un tubo refrigerante y se calentó a una temperatura constante de 100°C, manteniendo una agitación constante durante 6 horas (ver figura 12). Una vez terminado el calentamiento, se procedió a eliminar impurezas con agua destilada caliente y proceder a filtrar al vacío por medio de un embudo Buhner con papel filtro (ver figura 13) luego se colocó en el desecador por 12 horas (ver figura 14) y por último los 73,18 g de la Glucosamina ya obtenida (ver figura 15). Figura 12 Hidrólisis Ácida de la Quitina. Fuente: Propia. Figura 13 Filtración al vacío de la Glucosamina. Fuente: Propia. Figura 14 La Glucosamina en el Desecador. Fuente: Propia. Figura 15 Glucosamina obtenida Fuente: Propia. Etapa V: Identificación del Compuesto Se basó en identificar el compuesto, el cual consistió, en comparar los resultados de la Glucosamina comercial vartolon simple de marca Nolver con los de la Glucosamina obtenida en los parámetros físicos y químicos establecidos (ver figura 16). Figura 16 Glucosamina Comercial y Glucosamina Obtenida. Glucosamina Glucosamina Comercial Obtenida Fuente: Propia. Pruebas de Reconocimiento Físico Determinación del Punto de Fusión El procedimiento experimental empleado para la determinación de este parámetro es el siguiente: Se procedió a armar el equipo para la determinación del punto de fusión, tomando un capilar y adicionando una cantidad de muestra representativa, este a su vez fue sujeto a un termómetro con ayuda de una liga sumergiéndolo en un tubo thielen que contenía una cantidad de aceite comestible, este se encontraba sujeto con una pinza en un soporte universal. Luego se procedió a encender el mechero cuidando que la llama fuese de color azul como se muestra en la figura 17 y se calentó hasta que la muestra comenzó a fundirse. Pto de Fusión: Ec. 1 Dónde: TA: Temperatura en que se observa que da comienzo la fusión. TB: Temperatura el cual el sólido se fundió totalmente. Chang, Raymond,(1992) Figura 17 Determinación del Punto de Fusión en la Glucosamina Obtenida y la Comercial Fuente: Propia. Pruebas de Reconocimiento Químico Reactivo de Fehling Se agregaron en un tubo de ensayo 5 mL de la solución A y 5 mL de la solución B del reactivo de Felhing, luego la cantidad de 0.50 gramos de la Glucosamina comercial y se introdujo en el baño de maría para dar comienzo a la reacción. Al reaccionar con monosacáridos, se torna verdoso. Reactivo de Barfoed Se adicionó en un tubo de ensayo 5 mL de la solución del reactivo de Barfoed luego la cantidad de 0.50 gramos de la Glucosamina comercial e inmediatamente se introdujo en el baño de maría para iniciar la reacción. Para detectar monosacáridos. Se basa en la reducción de cobre (II) (En forma de acetato) a cobre (I) (En forma de óxido), el cual forma un precipitado color rojo ladrillo. Reactivo de Benedict Se agregó en un tubo de ensayo 5 mL de la solución del reactivo de Benedict luego la cantidad 0.50 gramos de la Glucosamina comercial seguidamente se introdujo al baño de maría para iniciar la reacción. Benedict identifica azúcares reductores (aquellos que tienen su OH anomérico libre), como la lactosa, la glucosa, la maltosa, y celobiosa. En soluciones alcalinas, pueden reducir el Cu2+ que tiene color azul a Cu+, que precipita de la solución alcalina como Cu2O de color rojonaranja. Reactivo de Tollens Se agregó en un tubo de ensayo 5 mL de la solución del reactivo de tollens luego la cantidad 0.50 gramos de la Glucosamina comercial e inmediatamente se introdujo al baño de maría para iniciar la reacción. Si el reactivo es un aldehído, el test de Tollens resulta en un espejo de plata. En otro caso, puede formarse o no un espejo amarillento. Nota: Para las pruebas de reconocimiento de la Glucosamina obtenida se manipularon las mismas cantidades de reactivos y muestra utilizadas para el reconocimiento de la Glucosamina comercial. Etapa VI: Cálculo de Porcentaje de Rendimiento Este cálculo se realizó para determinación del rendimiento de la Glucosamina a partir de los residuos el camarón empleados como materia prima, mediante la fórmula general de rendimiento: %R = CantidaddeGlucosaminaObtenida x100Ec. 2 CantidaddeMateriaPrimaEmpleada Etapa VII: Comparación de Barridos de la Glucosamina Comercial y Obtenida Para la comparación de barridos de la Glucosamina comercial y obtenida fue necesario realizar una digestión de la muestra ya que esta se encontraba en estado sólido y era necesario llevarla a estado acuoso. Digestión. Se pesaron en un beacker de 500 mL 1,32 gramos de muestra de Glucosamina comercial, seguidamente se agregaron 50 mL de agua destilada y 15 mL de ácido nítrico bajo campana, finalmente se colocó en la plancha de calentamiento para dar inicio a la digestión. Nota: Se utilizaron las mismas cantidades de reactivos y muestras para la digestión de la Glucosamina obtenida. Se procedió a encender el espectrofotómetro ultravioleta-visible seguidamente se ajustó la longitud de onda teórica de la Glucosamina para realizar el blanco y luego hacer el barrido de la muestra de Glucosamina comercial y obtenida de esta manera verificar el máximo de absorvancia así como también su comportamiento de las muestras. CAPÍTULO IV ANÁLISIS Y PRESENTACIÓN DE RESULTADOS A continuación se presentan los resultados obtenidos en la identificación, concentración y porcentaje de rendimiento de la Glucosamina a partir de los desechos del camarón utilizando como estándar vartolon simple de marca Nolver, cuyo enfoque principal fue la identificación mediante pruebas de reconocimiento físicos: punto de fusión y pruebas de reconocimientos químicas: reactivos ( Fehling, Barfoed, Benedict y Tollens), así como también determinación de porcentaje de rendimiento de la Glucosamina y comparación de barridos de la Glucosamina comercial y obtenida. Prueba de Reconocimiento Físico Punto de fusión En la siguiente tabla se puede mostrar la variabilidad del punto de fusión con respecto a cada compuesto de Glucosamina. Tabla 1 Puntos de Fusión de la Glucosamina. Glucosamina Punto de Fusión °C Teórica 150 Comercial 149 Obtenida 141 Fuente: Elaboración Propia. En la figura 18 se muestran los valores de punto de fusión de la Glucosamina obtenida y comercial con respecto a la teórica resultando el valor de la Glucosamina Comercial de 149°C ± 1 y la obtenid obtenidaa de 141°C ± 2,82 dando como resultado que por medio de la prueba de punto de fusión no se identifica que el compuesto obtenido sea Glucosamina. Figura18 Punto de Fusión vs Glucosamina. °C| 150°C 150 149°C 148 146 144 142 Punto de Fusión °C 141°C 140 138 136 Fuente: Elaboración Propia. Se pueden observar el comportamiento del punto de fusión de la Glucosamina comercial y la obtenida en relación con el punto de fusión teórico de la Glucosamina, la diferencia que se observa entre los valores pudiera deberse a los siguientes factores: en la Glucosamina obtenida (141°C) infirió la presencia de partículas ocluidas durante el proceso de purificación, otro factor que pudo afectar en la evaluación de este parámetro fue al momento de colocarla en el desecador para mantener la muestra a temper temperatura atura ambiente este pudo encontrarse contaminado por otros compuestos y de esta manera obtener un resultado negativo de la prueba realizada. Sin embargo, en la Glucosamina comercial se observa una disminución en el punto de fusión (149°C) se dedujo por lla presencia de sulfato. Pruebas de Reconocimiento Químicas Las pruebas de reconocimiento químicas se llevan a cabo mediante reacciones, algunas rápidas y otras lentas de acuerdo a su concentración de Glucosa, a continuación se muestras las figuras especificando cada cambio ocurrido con los diferentes tipos de reactivos en este particular Benedict, Barfoed, Fehling y Tollens el cual nos indica la presencia de glucosa, monosacáridos y aldehídos. Reactivo de Benedict Este se basa en la capacidad del carbohidrato de reducir el Cu2+ en un medio alcalino. Este Cu1+ se oxida y precipita en forma de Cu2O, lo que proporciona la coloración positiva de la reacción. La coloración dependerá de la concentración de óxido de cobre y ésta a su vez de la reducción del cobre; va desde verde, amarillo, anaranjado o rojizo, dependiendo del carbohidrato en este caso es para un monosacárido el cual debe ser de color rojo o naranja. En la figura 19 se publican los diferentes cambios de colores presentes en la reacción para la determinación de glucosa en la Glucosamina comercial con el reactivo de Benedict. Figura 19 Identificación de Glucosa en la Glucosamina Comercial con el Reactivo de Benedict. A B C D Fuente: Propia. En la identificación de la glucosa con el reactivo de Benedict se comprobó la presencia de glucosa mediante una reacción rápida, esto se observó por los cambios de colores presentados en la figura 19 con secuencia A, B, C y D dando así que la solución inicialmente fue de color azul y al agregarle la muestra de Glucosamina se formó un precipitado de color blanco (A), el cual indicaba que iba a dar inicio la reacción con una ebullición (B), seguidamente de la formación de un precipitado de color naranja (C), finalmente se mostraba que existía la presencia de glucosa por el cambio de color (D). A continuación se ilustran los cambios presentes en la reacción para la determinación de glucosa en la Glucosamina obtenida con el reactivo de Benedict en la figura 20 Figura 20 Identificación de Glucosa en la Glucosamina Obtenida con el Reactivo de Benedict. A B C D Fuente: Propia. En la identificación de la glucosa con el reactivo de Benedict dio positiva la reacción, es decir, el cambio de color se presentó de igual forma que en la Glucosamina comercial, pero de manera más lenta, se puede observar en la figura 20 de la secuencia A, B, C y D, esto ocurre porque los niveles de concentración no son los mismos. La solución inicial fue de color azul, al adicionar la muestra se pudo notar el precipitado de forma dispersa (A), la reacción se tardó para dar inicio a la ebullición (B), comenzando las partículas en suspensión a ascender hasta que fue apareciendo el color naranja (C), finalmente se terminó la reacción el cual indicó la presencia de glucosa por el cambio de color (D). Reactivo de Barfoed Utilizado para detectar monosacáridos. Se basa en la reducción de cobre (II) (En forma de acetato) a cobre (I) (En forma de óxido), el cual forma un precipitado color rojo ladrillo. Como se puede observar en la figura 21 la aplicación de la prueba Barfoed los diferentes cambios de colores presentes en la reacción para la determinación de monosacáridos en la Glucosamina comercial. Figura 21 Identificación de monosacáridos en la Glucosamina Comercial con Reactivo de Barfoed. A B C D Fuente: Propia. En la reacción para la determinación de monosacáridos mediante el reactivo de Barfoed se comprobó la presencia con la oxidación de acetato cúprico a oxido cuproso, en la figura 21 con encadenamiento A, B, C y D se revelan los cambios de colores presentes en la reacción para que esto ocurriese, comenzando con una solución de color azul con presencia de acetato cúprico (A), al agregarle la muestra se formó un precipitado cristalino (B), luego se fue oxidando a oxido cuproso dando un precipitado de color rojizo (C), finalmente se completó la oxidación el cual indicaba la presencia de monosacáridos (D). En la figura 22 se muestran los diferentes cambios de colores presentes en la reacción para la determinación de monosacáridos en la Glucosamina obtenida con el reactivo de Barfoed. Figura 22 Identificación de monosacáridos en la Glucosamina Obtenida con el reactivo de Barfoed. A B C D Fuente: Propia. En la reacción para la determinación de monosacáridos con reactivo de Barfoed dio positiva la presencia de monosacáridos de forma detallada debido a los bajos niveles de concentración en el compuesto, en la figura 22 de orden A, B, C y D se publican los diferentes tipos de colores presentes en la reacción de acetato cúprico a oxido cuproso, originalmente fue de color azul y al adicionar la muestra formó un precipitado amarillento de forma dispersa (A), seguidamente se pudo notar el precipitado cristalino (B), luego fue cambiando a color rojizo lentamente el cual cumplía con la oxidación de acetato cúprico a oxido cuproso quedando las partículas separadas (C), pero aun así finalmente se completó la reacción dando como resultado la presencia de monosacáridos por el cambio de color (D). Reactivo de Fehling Esta reacción se produce en medio alcalino fuerte, por lo que algunos compuestos no reductores como la fructosa (que contiene un grupo cetona) puede enlizarse a la forma aldehído dando lugar a un falso positivo. Al reaccionar con monosacáridos, se torna verdoso. En la figura 23 se muestran los diferentes cambios de colores presentes en la reacción para la determinación de monosacáridos en la Glucosamina comercial con el reactivo de Fehling. Figura 23 Identificación de Monosacáridos en la Glucosamina Comercial con el reactivo de Fehling A B C Fuente: Propia . En la identificación de monosacáridos mediante el reactivo de Fehling se comprobó la presencia de monosacáridos esto se puedo observar en la corta diferencia de la reacción, en la figura 23 siguiendo A, B, y C el cual no permitió los cambio de colores detenidamente porque existían los colores entrelazados verde, azul, amarillo hasta que se pudo notar el color verdoso definido así como resultado la presencia de monosacáridos con el color esperado. En la figura 24 se muestran los diferentes cambios de colores presentes en la reacción para la determinación de monosacáridos en la Glucosamina obtenida con el reactivo de Fehling. Figura 24 Identificación de Monosacáridos en la Glucosamina Obtenida con la Prueba de Fehling. A Fuente: Propia. B C En la identificación de monosacáridos mediante el reactivo de Fehling dio positiva la presencia de monosacáridos de forma lenta de acuerdo a la diferencias de concentraciones del compuesto Glucosamina, en la reacción se pudo notar la diferencia de colores, como se observa en la figura 24 de orden A, B, y C iniciando así con el color azul (A), luego la presencia de color verdoso amarillento (B), para dar lugar a un color verdoso proporcionando como resultado la presencia del monosacárido por el cambio de color (C). Reactivo de Tollens Al agregar la muestra al reactivo de Tollens, ponga el tubo de ensayo en un baño María tibio. Si el reactivo es un aldehído, el test de Tollens resulta en un espejo de plata. En otro caso, puede formarse o no un espejo amarillento. En la figura 25 se ilustra la reacción para la determinación de aldehídos en la Glucosamina comercial con el reactivo de Tollens. Figura 25 Identificación de Aldehídos en la Glucosamina Comercial con Reactivo de Tollens. A B Fuente: Propia. En la identificación de los aldehídos con el reactivo de Tollens no se notó el complejo diamina-plata (I) ya que este es usado para verificar la presencia de aldehídos con ácidos carboxílicos y en la Glucosamina no hay presencia del mismo en la figura 25 de secuencia A y B se verifican. En la figura 26 se muestra la reacción para la determinación de aldehídos en la Glucosamina obtenida con el reactivo de Tollens. Figura 26 Identificación de Aldehídos en la Glucosamina Obtenida con el Reactivo de Tollens. A B Fuente: Propia. En la identificación de aldehídos con reactivo de Tollens dio negativa la presencia del aldehído en la Glucosamina ya que no se pudo observar el espejo de plata, esto se debe en que la Glucosamina no presenta grupo funcional aldehído. Determinación del porcentaje de rendimiento con respecto a las conchas de camarón empleadas como materia prima En la obtención de la Glucosamina se emplearon 250 gramos de desechos y se obtuvo un porcentaje de rendimiento de 29,27% ver anexos, tomando en cuenta que este porcentaje se obtuvo de la obtención de la quitina y en la purificación no se garantizó que este compuesto se encontrara totalmente exento de otros componentes como ácido clorhídrico y hipoclorito de sodio, dado que no se pudo verificar la pureza de la misma. Del mismo modo si se realizará una obtención a nivel de planta piloto tomando mayor cantidad de materia prima se mejoraría el porcentaje de rendimiento. Por ende esta investigación se considera factible ya que se está partiendo de un desecho y se está contribuyendo a reducir y darle un valor agregado a los desechos generados. Comparación de barridos de la Glucosamina Comercial y Obtenida. La comparación de barridos de la Glucosamina se hizo mediante un espectrofotómetro de ultravioleta visible ajustando una longitud de onda 330 nm, ya que esta es la longitud donde se da la máxima absorvancia del compuesto (ver figura 27), para ello primero se realizaron los barridos y luego se verifico el comportamiento del compuesto encontrando los picos en el rango de 320 a 340 nm. Figura 27 Barrido de la Glucosamina Obtenida y Comercial. Glucosamina comercial Glucosamina obtenida 300 Fuente: Elaboración Propia. 700 La Glucosamina obtenida se comportó de la misma forma que la Glucosamina comercial, ya que este se encontraba en la misma longitud de onda lo que quiere decir que el compuesto obtenido es Glucosamina. CONCLUSIONES La realización de esta investigación permitió establecer las siguientes conclusiones: El plan de muestreo establecido permitió obtener información acerca de los desechos generados mensualmente. El método empleado para la realización de la hidrólisis ácida de la quitina fue el adecuado debido a que este garantizó la obtención de la Glucosamina. En esta investigación se comprobó la existencia del amino azúcar Glucosamina en las conchas del camarón, mediante pruebas químicas: con los reactivos (Benedict, Barfoed, Fehling y Tollens), todas ellas por cambios de colores dando positivas con la presencia de glucosa, monosacáridos y no aldehídos. Tomando como referencia una muestra de Glucosamina comercial (Vartolon simple) marca Nolver. El resultado de porcentaje de rendimiento de la Glucosamina fue de 29,27%, considerándose un proyecto de investigación factible si se aplica a gran escala para las industrias camaroneras debido a que este compuesto se obtuvo a partir de un desecho. RECOMENDACIONES A continuación se muestra una lista de recomendaciones Obtención de la Glucosamina utilizando solo la concha del camarón empleando un secado directo (secador solar). Evaluar a que concentración de hidróxido de sodio se obtiene mayor concentración de Glucosamina. Aplicar otros solventes para un mejor blanqueo. Realizar pruebas físicas y químicas de reconocimiento de la quitina. Determinar la concentración de la quitina obtenida de las conchas del camarón. Realizar el espectro de infrarrojo de la Quitina y Glucosamina obtenida de los desechos del camarón. Diseñar una planta piloto para la obtención de Glucosamina a partir de los desechos del camarón. Obtener colorante a partir de los pigmentos generados en la obtención de la quitina Evaluar las patas y colas del camarón para la elaboración de alimentos para animales específicamente el ganado bobino. Realizar campañas para dar a conocer a las industrias camaroneras la utilización de los desechos como materia prima. REFERENCIAS Alvarado Almeida y Arancibia, (2005). Obtención de quitina, transformación quitosanos y elaboración de películas biodegradables a partir de desperdicios de crustáceos. 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Tabla 4 Temperaturas para la determinación del punto de fusión en la Glucosamina obtenida. Números de muestra TA (°C) TB (°C) Muestra 1 132 150 Muestra 2 139 147 Muestra 3 132 146 Fuente: Elaboración Propia. Dónde: TA: Temperatura en que se observa que da comienzo la fusión TB: Temperatura el cual el sólido se fundió totalmente Cálculo para la determinación del punto de fusión. Ptodefusión = TA + TB 2 Donde: TA: Temperatura en que se observa que da comienzo la fusión. TB: Temperatura el cual el sólido se fundió totalmente. Chang, Raymond,(1992). Punto de fusión en la muestra 1 de la Glucosamina comercial. Ptodefusión = 147 + 151°C = 149°C 2 Cálculo para el promedio del punto de fusión. Promedio = ∑ xdemuestra N Donde: ∑x: sumatoria de la muestra. N: numero de muestras. Trujillo (1990). Promedio = ∑(149 + 150 + 148)°4 = 149°4 3 En la tabla 5 se observan los resultados de la determinación del punto de fusión en la Glucosamina comercial y el promedio obtenido. Tabla 5 Resultados de punto de fusión y promedio en la Glucosamina comercial. Números de muestra Punto de fusión (°C) Muestra 1 149 Muestra 2 150 Muestra 3 148 Promedio 149 Fuente: Elaboración Propia. En la siguiente tabla se muestran los resultados obtenidos en la determinación del punto de fusión así como también el promedio del mismo para la Glucosamina obtenida. Tabla 6 Resultados de punto de fusión y promedio en la Glucosamina obtenida. Números de muestra Punto de fusión (°C) Muestra 1 141 Muestra 2 143 Muestra 3 139 Promedio 141 Fuente: Elaboración Propia. Tabla 7 Datos para los cálculo de la varianza y desviación estándar de la Glucosamina comercial en el Punto de Fusión. N de datos Xi (Xi – X) (Xi – X)2 1 148 (148 – 149) 1 2 149 (149 – 149) 0 3 150 (150 – 149) 1 Total 149 Fuente: Elaboración Propia. 2 Calculo de la varianza y la desviación estándar de la muestra S2 = (6786) 98: Donde: Xi: representa cada uno de los datos X: es la media aritmética de los datos. N: es el número de datos Trujillo (1990). S2= ;8: =1 S = √s S=√1=1 Tabla 8 Datos para los cálculo de la varianza y desviación estándar de la Glucosamina obtenida en el Punto de Fusión. N de datos Xi (Xi – X) (Xi – X)2 1 141 (141 – 141) 0 2 143 (143 – 141) 4 3 139 (139 – 141) 4 Total 141 Fuente: Elaboración Propia. 8 Los cálculos para la varianza y desviación estándar en la Glucosamina obtenida se realizaron de la misma forma que para la comercial y se obtiene como resultado el siguiente: S=2 Cálculo para el Porcentaje de Rendimiento en la Glucosamina. Gramos de conchas de camarón empleadas: 250 g Gramos de Glucosamina obtenida: 73,18 g. %R = CantidaddeGlucosaminaObtenida x100 CantidaddeMateriaPrimaEmpleada %< = 73,18> ?100 = 29,272% 250> Encuesta no estructurada 1. ¿Cuáles especies de camarón son utilizados para la comercialización? 2. ¿Dónde son cultivados los camarones? 3. ¿Cuál es el porcentaje de desecho que presenta cada camarón? 4. ¿Cuántos kilogramos de conchas se generan semanal? 5. ¿Estos desechos presentan pérdidas para la empresa? 6. ¿Qué hace la empresa con estos desechos? 7. ¿A dónde van a parar estos desechos? 8. ¿Cada cuánto tiempo botan estos desechos? 9. ¿Qué tipos de contaminaciones pueden generar estos desechos? 10. ¿Actualmente han elaborado propuestas para la utilización de estos desechos con otro fin?