GUIA II DE

1
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA
UNAD
ESCUELA DE CIENCIAS BASICAS, TECNOLOGIA E INGENIERIA
CURSO DE BIOLOGIA
TUTORA: YAMILE
CORTES
[email protected]
labbiologiayamilecortesunad.wordpress.com
GUIA
I.
II DE LABORATORIO
REINOS DE LA NATURALEZA
OBSERVACION DE LA CELULA.
OBJETIVOS




Describir las diferentes formas y tamaños de las células.
Comprender que las formas celulares se asocian a su función.
Señalar las diferencias fundamentales entre una célula animal y una célula vegetal.
Reconocer a la célula como unidad básica de los seres vivos.
MATERIALES












Microscopio
Agua de florero
Cebolla cabezona
Hojas de elodea o espinaca
Sangre de pollo (5 mL aprox.)
Agua
Agua estancada
Muestra de semen
Lugol
Palillo plano
Portaobjetos o láminas
Cubreobjetos o laminillas
PROCEDIMIENTO
A. UNICELULARES PROTISTAS
1.
2.
3.
4.
Tome una gota de yogurt
Póngala en la lamina portaobjetos
Agréguele una gota de lugol
Coloque la lamina cubreobjetos











Bisturí
Alfileres
Copitos
Colorante Wright
Objetos de aseo personal
Bata de laboratorio
Azul de metileno
Yogurt
Papa
Guantes
Carne
2
B. UNICELULARES ACUATICOS
1. De la muestra de agua estancada, tome una gota y colóquela en una lámina
portaobjetos, cubra con una laminilla.
2. Retire el exceso de agua por los bordes utilizando papel absorbente.
3. Observe el montaje realizado al microscopio en 4X, 10X y 40X.
4. Dibuje sus observaciones anotando el aumento utilizado.
C. CELULA VEGETAL – CEBOLLA
1. Retire cuidadosamente la capa más delgada y transparente de la cebolla
cabezona (epidermis).
2. Con el bisturí corte una pequeña parte de esta capa y colóquela extendida sobre
el portaobjetos.
3. Repita la operación y obtenga entonces dos extendidos.
4. Agregue una gota de agua y cúbrala con el cubreobjetos o laminilla de tal
manera que no queden burbujas de aire o dobleces en la capa de cebolla.
5. A la otra muestra, colóquele una gota de lugol. Deje actuar el Lugol durante 5
minutos.
6. Acerque una laminilla, en posición oblicua, y apoyando una arista sobre la lámina
al lado de la gota, déjela caer suavemente sobre la gota.
7. Observe al microscopio la muestra, inicialmente con el objetivo de menor
aumento y luego con el objetivo de mayor aumento.
8. Registre sus observaciones.
D. CELULA VEGETAL - ELODEA
1. Coloque una hoja de elodea con el envés hacia arriba o una capa delgada de la
hoja de espinaca en el portaobjetos.
2. Agréguele una gota de agua, cuidando que no queden burbujas de aire.
3. Observe al microscopio esta muestra
E. TEJIDO PARENQUIMATOSO DE UN CORTE TRANSVERSAL DE PAPA
1. Tome el bisturí y haga un corte transversal muy fino (casi transparente) de la papa.
2. Enjuague el corte con suficiente agua para retirar el exceso de almidón, contenido
en las células de los tejidos de la papa.
3. Extienda dos muestras del tejido de la papa sobre una lámina portaobjetos, en una
de las muestras adicione Lugol y en la otra agua. Deje actuar el Lugol durante 5
minutos
4. Observe con el objetivo de 10 X y luego con el objetivo de 40 X.
5. Registre sus observaciones
F.
CELULA ANIMAL - CELULA EPITELIAL
1. Limpie suavemente la mejilla interna con el palillo plano, deseche esta muestra y
vuelva a raspar la mejilla interna con otro palillo o copito.
2. Extienda esta muestra sobre el portaobjetos y agréguele una gota de solución
salina y una gota de azul de metileno o safranina.
3. Espere 5 (cinco) minutos a que el colorante tiña las células.
3
4. Coloque el cubreobjetos sobre la preparación y retire con un papel secante el
exceso de agua y colorante.
5. Observe esta muestra en el microscopio como se ha indicado con anticipación.
6. Identifique las células de forma irregular.
G. CÉLULA ANIMAL – TEJIDO MUSCULAR
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
Tome un pequeño trozo de carne – tejido muscular -.
Extiéndalo suavemente sobre la lámina portaobjetos.
Agregue una gota de azul de metileno y una de agua.
Coloque el cubreobjetos.
Lleve al microscopio
Observe las fibras musculares.
Identifique las estrías
Dibuje.
H. CELULA ANIMAL – TEJIDO SANGUINEO
1. Desinfecte con un algodón humedecido en alcohol, la punta del dedo anular o
índice, deje secar el alcohol y con una aguja estéril, realice una punción en la
yema del dedo.
2. Sobre un portaobjetos limpio y seco coloque una gota de sangre.
3. Utilice un cubreobjetos para extender sobre la placa la gota de sangre.
Colóquelo en ángulo agudo sobre la gota, deslice suavemente y en forma
continua la gota de sangre hasta formar una capa delgada.
4. Deje secar la muestra.
5. Una vez seca la muestra aplique sobre ella una gota de colorante Wrigh y déjelo
actuar durante cuatro minutos. Con este procedimiento el colorante fijará la
preparación.
6. Lave el exceso de colorante con agua de la llave y deje secar la lámina
verticalmente.
7. Observe al microscopio como se le ha indicado, primero con el objetivo de menor
aumento y luego va cambiando al de mayor aumento.
8. Identifique los glóbulos rojos, leucocitos y plaquetas.
I. CÉLULA ANIMAL – ESPERMATOZOIDES
1.
2.
3.
4.
5.
6.
Tome la muestra de semen.
Extraiga una gota y colóquela en una placa portaobjetos
Coloque la lámina cubreobjetos
Observe al microscopio
Fíjese en el movimiento
Dibuje e identifique la mayor cantidad de estructuras.
ILUSTRE Y REGISTRE CADA UNA DE LAS OBSERVACIONES REALIZADAS AL MICROSCOPIO,
INDICANDO EL OBJETIVO UTILIZADO (por ejemplo 10X, 40X). INDIQUE LAS PARTES DE CADA
ORGANISMO OBSERVADO.
4
Al finalizar el trabajo, deje el microscopio en su correcta posición, limpie los objetivos,
colóquele la funda y guárdelo en su respectivo puesto.
INFORME DE LABORATORIO
El informe de laboratorio debe incluir:
1.
2.
3.
4.
5.
Encabezado (Universidad, Escuela, Programa, Integrantes, Código)
Objetivos de cada práctica.
Introducción
Materiales y métodos (los realmente empleados en la práctica)
Resultados y análisis:
Presentar de forma ordenada los resultados obtenidos por cada práctica y realizar
una discusión sobre los resultados obtenidos.
Se deben realizar los dibujos de todas y cada una de las observaciones realizadas.
6. Conclusiones
7. Bibliografía
BIBLIOGRAFIA
Audersirk, T. y Audersirk, G. 1997. Biología: La vida en la tierra. Cuarta Edición.
Prentice – Hall Hispanoamericana, S. A. México. 945 p.
Barrera, N.; Ortiz, A.; Manzano, M.; Velázquez, E. y Ramírez, H. 2010. Biología
General. Guías de Laboratorio y de Campo. Universidad Nacional de Colombia.
Sede Palmira. 45 p.
Biggs A., Kapicka C., Lundgren L., Biología “La dinámica de la vida” 2000. Editorial
McGraw Hill. Pág. 192 – 195.
Castro, F.; Vélez, M.C.; González, I.A. y Rondón, F.2002. Manual de prácticas y
talleres en Biología General. Universidad del Valle. Facultad de Ciencias.
Departamento de Biología. 65 pp.
Cooper, G.M. 2004. La Célula. Editorial Marban.
Curtis H., Barnes S. Biología. 2000. Editorial Médica Panamericana. 1491 p.
5
Gray, P. 1973. The enciclopedia of microscopy and microtechnique.
Nostrand. Reinhold Co. N.Y. Toronto.
Salazar, Y. 2009. Guías para prácticas de Biología General. UNAD. 41 p.
Roberts, M.B.V. 1986. Biology for life. Segunda edición. España. 403 p.
Van