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AVANCES EN CIENCIAS E INGENIERÍAS COMUNICACIÓN/COMMUNICATION SECCIÓN/SECTION B Presencia de Brucella sp. en cabras de la ciudad de Quito, provincia de Pichincha, Ecuador Carmen Zabala1 , Verónica Barragán1 , Gabriel Trueba1∗ 1 Universidad San Francisco de Quito, Colegio de Ciencias Biológicas y Ambientales. COCIBA, Instituto de Microbiologia Calle Diego de Robles y Via Interoceánica, Campus Cumbayá Casilla Postal 17-1200-841, Quito, Ecuador ∗ Autor principal/Corresponding author, e-mail: [email protected] Editado por/Edited by: D. F. Cisneros-Heredia, Ph.D.(c) Recibido/Received: 09/28/2012. Aceptado/Accepted: 10/24/2012. Publicado en línea/Published on Web: 12/28/2012. Impreso/Printed: 12/28/2012. Abstract The objective of this research was to investigate the presence of Brucella sp. in goats from Quito. Lymph nodes and blood were collected from goats slaughtered at the local abattoir and in raw goat milk sold in the streets of Quito. Samples were collected from a total of 300 goats which were analyzed by PCR (lymph nodes and milk) and agglutination test (sera). Our results confirmed the presence of Brucella sp. in the goats sampled during this research: 9,0 % in milk (PCR), 8,0 % in lymph nodes (PCR) and 17,8 % in serum samples (agglutination test). Keywords. Brucella sp Resumen El objetivo de esta investigación fue establecer la presencia de Brucella sp. en cabras de la ciudad de Quito. Se realizó análisis de nódulos linfáticos y suero de animales sacrificados en el Camal Metropolitano de Quito y de leche cruda expedida en las calles de la ciudad. Se colectó muestras de 300 animales que fueron analizadas mediante aglutinación en suero y reacción en cadena de la polimerasa (PCR). Se obtuvo un 9,0 % de positividad en leche (PCR), 8,0 % en ganglios (PCR) y 17,8 % en suero (prueba de aglutinación). Estos resultados confirman la presencia de Brucella sp. en las cabras analizadas. Palabras Clave. Brucella sp Brucella es un cocobacilo Gram negativo intracelular facultativo [1, 2, 3] y es el agente etiológico de la fiebre ondulante, una enfermedad zoonótica grave de distribución mundial y de reporte obligatorio [4]. Se ha identificado siete especies de Brucella [5] que se encuentran asociadas generalmente a hospederos específicos: Brucella suis es patógena en suinos; B. canis tiene afinidad por caninos; B. ovis afecta a ovinos; B. melitensis a ovinos y caprinos; B. cetaceae afecta principalmente a los cetáceos; B. abortus a bovinos; y B. neotomae a las ratas [1, 4]. Sin embargo las diferentes especies de Brucella pueden infectar distintos animales; por ejemplo, B. abortus puede infectar también a ovejas y cabras. La infección se manifiesta en los animales con aborto[6], retención placentaria, parición de crías débiles, mastitis, epididimitis, orquitis y artritis[5, 7]. La brucelosis humana es causada por varias especies de Brucella, B. meltitensis es la especie predominante de estas infecciones [7]. La transmisión de Brucella sp. a humanos ha sido atri- buida a varias formas de exposición al patógeno: 1) consumo de productos lácteos no pasteurizados, 2) consumo de carne cruda, 3) contacto directo con secreciones de animales infectados (veterinarios y granjeros), 4) contacto directo con cultivos bacterianos en laboratorios de investigación [4, 8, 9, 10, 11, 12]. La enfermedad se caracteriza por una sintomatología no específica tal como cefalea, pirexia, anorexia, lumbalgia, mialgia, adenopatía, esplenomegalia, entre otras [7]. Algunos pacientes pueden desarrollar osteomielitis, artritis, abscesos esplénicos, orquitis y endocarditis [4]. El control de la transmisión al humano depende únicamente de la prevención en animales mediante la aplicación de la vacuna y la eliminación de animales infectados [13]. En el Ecuador se ha reportado la presencia de Brucella en bovinos [14, 15], y un estudio realizado en los años 2009-2010 en cabras del sector periurbano de Quito registró una seropositividad a brucelosis del 0.05 % [16]. Sin embargo Ecuador no ha reportado oficialmente la presencia de B. melitensis a pesar de que la enfermedad Avances, 2012, Vol. 4, No. 2, Pags. B9-B11 http://www.usfq.edu.ec/Publicaciones/Avances/B9-4-2-2012 Avances, 2012, Vol. 4, No. 2, Pags. B9-B11 Tipo de muestraón Ganglio Leche cruda Suero Zabala et al. Método de detección PCR PCR Rosa de bengala Muestras analizadas 100 100 101 Muestras positivas 8 9 18 PROMEDIO Positividad 8,0 % 9,0 % 17,8 % 1,6 % Table 1: Muestras de ganglios, leche cruda y suero de cabras colectadas en la ciudad de Quito, Ecuador, analizadas para la presencia de Brucella sp. utilizando PCR y Rosa de Bengala. está presente en Perú y Colombia [17, 18]. El objetivo de este estudio fue establecer la presencia de Brucella sp. en cabras a partir de muestras obtenidas de diferentes fuentes de origen y por medio de varios métodos complementarios. de sangre fueron positivas en un 17,8 %. Las 100 muestras de leche cruda comercializada en las calles de la ciudad de Quito evidenciaron un 9,0 % de positividad (Tabla 2). En este estudio se colectó un total de 300 muestras de caprinos. Cien muestras de suero y 100 de ganglios linfáticos (retrofaríngeo e inguinal) provinieron del Camal Metropolitano de Quito (ubicado en la calle Camilo Orejuela y General Angel Issac Chiriboga, Quito, Ecuador); mientras que 100 muestras de leche fueron tomadas en las calles de 4 zonas de la ciudad de Quito (Zona Sur de Quito: Calle Quitumbe, Av. Moran Valverde, Barrio el Pintado Calle Atahualpa y Mariscal Sucre, Mariscal Sucre y Guaynafalcon, Mariscal Sucre y Alonso De Angulo, Barrio Ferroviaria, Moraspungo, Panamericana Sur, Calle Maldonado. Zona Pomasqui: Autopista Manuel Córdova Galarza, Barrio San Mateo, Oyacoto, Calderón: Mercado de Calderón. Zona Norte: Av. Eloy Alfaro (fren- te a la embajada Americana, Av. Amazonas y Calle Iña- quito, Barrio Comité del Pueblo Av. Francisco De la Torre, Mercado Central de Cotocollao. Zona Sangolqui: Mercado Central Sangolqui, Conocoto: Plaza Central de Conocoto, Amaguaña: Mercado Central de Amaguaña). Las muestras de suero fueron analizadas utilizando la prueba de Rosa de Bengala [19]. Se utilizó 25µl del reactivo Rosa de Bengala (Acros Organics, New Jersey, EE.UU) con 75µl de suero; a los 4 minutos se determinó la reacción de aglutinación. La extracción de ADN a partir de los tejidos y de las muestras de leche fue realizada utilizando CTAB (Merck, Darmstadt, Germany) con el procedimiento previamente utilizado por Baquero et al. [20]. Para descartar la presencia de compuestos inhibitorios y como control de la PCR (reacción en cadena de la polimerasa) se amplificó el gen de betaactina [21]. Para la detección de Brucella sp. se utilizó cebadores del gen bcsp31 [22, 15]. Los productos de PCR fueron visualizados mediante electroforesis en gel de agarosa al 1,5 %. Para confirmar resultados, se realizó el secuenciamiento de 4 productos de PCR en los laboratorios FUNCTIONAL BIOSCIENCES (Madison, Wisconsin EEUU), las secuencias obtenidas se alinearon con el programa MEGA 5.1 para luego ser comparadas con secuencias del GenBank utilizando BLAST (blast.nc- bi.nlm.nih.gov). El porcentaje de positividad encontrado en las cabras analizadas en este estudio es superior al reportado previamente [16] en cabras de granjas del sector periurbano de Quito. Sin embargo se ha encontrado que la prevalencia de brucelosis en cabras es diversa. En Argentina una prevalencia varía del 6,5 % al 80,0 % dependiendo de la zona y el predio analizado [23]. Los resultados obtenidos en este estudio son coherentes con las prevalencias de brucrelosis en cabras detectadas en Sudamerica: Perú 5,7 % [17], Colombia 1,2 % [18], Argentina 12,5 % [23]. Este estudio encontró evidencia de infección por Brucella sp. en un 11,6 % de los animales muestreados. Los resultados de la PCR de ganglios linfáticos obtenidos de cabras faenadas del Camal Metropolitano de Quito mostraron un 8,0 % de positividad mientras que las muestras La secuencia de ADN obtenida a partir de los productos de PCR confirmaron que el ADN detectado proviene de bacterias del género Brucella. Al momento se desconoce la especie de Brucella detectada (las cabras pueden infectarse de B. ovis, B. melitensis y B. abortus). El próximo paso dentro de este proyecto es la determinación de la especie de Brucella detectada en cabras ecuatorianas. La producción caprina y el consumo de productos de este origen ha crecido en el Ecuador durante los últimos años. Así mismo, se ha popularizado el hábito de tomar leche cruda de cabra ya que se le atribuye propiedades medicinales. Pensamos que es importante que las autoridades de sanidad animal ecuatoriana inicien un programa de detección y control de esta enfermedad. Es importante educar a los pequeños ganaderos vendedores de leche de cabra en las calles de Quito para que emprendan un programa de eliminación de la enfermedad en los animales y la promoción del consumo de leche hervida. Agracedimientos Al Instituto de Microbiología de la Universidad San Francisco de Quito por el financiamiento de este proyecto. Al Doctor Ramiro Gonzalez por su apertura para la colecta de muestras en el Camal Metropolitano de Quito. Al Doctor Keith Poulsen de la Universidad de Wisconsin por el reactivo para Rosa de Bengala. A María Inés Baquero y Estefanía Bermeo por sus consejos técnicos. A Daysi Parrales por toda su ayuda. Zabala et al. Avances, 2012, Vol. 4, No. 2, Pags. B9-B11 Referencias [1] Nicoletti, P. 2010. “Brucellosis: Past, Present and Future.” Biol. Med. Sci. 31: 21-32. [2] Freer, E. y. Castro-Arce, R. 2002. “Brucella: Una bacteria virulenta carente de los factores de virulencia clásicos.” Rev. Costarric. Cienc. Méd. 22: 73-82. [3] Romero, R. 2007. “Microbiología y parasitología humana.” Editorial Panamericana: México. [4] OIE 2011. “General Disease Information Sheets: Brucellosis.” Enlace: http : //www.oie.int/f ileadmin/Home/eng/M edia _Center/docs/pdf /Diseasec ards/BCLS-EN.pdf, Organización Mundial de Sanidad Animal OIE: París, Francia. Consulta: Agosto 2012. [5] Coetzer, J. y Tustin, R. 2004. “Infectious Diseases of Livestock.” Oxford University Press: South Africa. [6] Ficht, T. 2010. “Brucella Taxonomy and Evolution.” Future Microbiol. 5:859-866. 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