RISTOtest
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RISTOtest
ms_06675867190V4.0 RISTOtest RISTOtest 06675859 190 1 x 1.0 mL 06675867 190 3 x 1.0 mL Multiplate Español Estabilidad del reactivo reconstituido: Uso previsto Prueba in vitro para la determinación cuantitativa del factor de von Willebrand (FvW) y de la agregación plaquetaria dependiente de la glicoproteína Ib (GpIb) con muestras de sangre total en el analizador Multiplate. a (-15)‑(-25) °C 4 semanas una vez descongelado a 18‑25 °C 24 horas Características La ristocetina es un antibiótico que induce la trombocitopenia y la aglutinación plaquetaria. En su presencia, las plaquetas se fijan al FvW a través de receptores de la glicoproteína Ib (GPIb). La ristocetina in vitro forma complejos con el FvW que se fijan a la GpIb estimulando la activación plaquetaria y su posterior agregación. Una aglutinación reducida o ausente en presencia de ristocetina puede atribuirse a la ausencia o disminución del FvW o del número de receptores plaquetarios de GPIb tal como sucede en el síndrome de Bernard-Soulier.1,2 Principio del test El reactivo del test RISTOtest contiene ristocetina. Empleando el procedimiento de pipeteo para RISTOhigh se aplica una alta concentración de ristocetina (0.77 mg/mL) que suele inducir una fuerte agregación plaquetaria. Las plaquetas activadas en las celdas de medición Test Cells de Multiplate se fijan a los filamentos del sensor donde forman agregados. Con ello aumenta la resistencia entre los filamentos del sensor que se registra continuamente en forma de área bajo la curva (ABC) en unidades arbitrarias (UA*min o U, conversión: 1 U = 10 UA*min).3 Reactivos - Soluciones de trabajo ▪ 06675859190 R1: 1 frasco para 1.0 mL Reactivo liofilizado con ristocetina: 10 mg/mL. 5 microtubos para alícuotas ▪ 06675867190 R1: 3 frascos para 1.0 mL Reactivo liofilizado con ristocetina: 10 mg/mL. Medidas de precaución y advertencias Producto sanitario para diagnóstico in vitro. Observe las medidas de precaución habituales para la manipulación de reactivos. Elimine los residuos según las normas locales vigentes. Ficha de datos de seguridad a la disposición del usuario profesional que la solicite. Evite la formación de espuma en reactivos y muestras de todo tipo (especímenes, calibradores y controles). Preparación de los reactivos Reconstituir cuidadosamente el contenido de un frasco R1 añadiendo 1.0 mL de agua destilada o desionizada. Mezclar suavemente el frasco R1, taparlo y dejar reposar 10 minutos a 18‑25 °C. Antes del uso, mezclar el frasco otra vez hasta obtener una solución homogénea. Evite la formación de espuma. Para conseguir la máxima estabilidad después de la reconstitución, pipetee para el uso diario alícuotas de como mínimo 100 µL de reactivo en microtubos. Conservación y estabilidad Conservar a 2‑8 °C. Los reactivos liofilizados son estables hasta la fecha de caducidad indicada. Si el reactivo reconstituido no se alicuota en microtubos, el frasco original debe conservarse en posición vertical. Proteger el reactivo de la luz, del aire y de temperaturas elevadas. Obtención y preparación de las muestras Sólo se ha analizado y hallado apto el tipo de muestras aquí mencionado: sangre total. Use tubos de muestra estándar para recoger la muestra y siga las instrucciones de uso del fabricante correspondiente. La extracción de sangre deber efectuarse con cuidado para evitar una estasis venosa prolongada empleando una aguja de grueso calibre. Evite la formación de espuma en el tubo de recogida de sangre. Invierta suavemente el tubo de recogida para garantizar la completa homogeneización del contenido.4 No congele ni refrigere las muestras. No caliente la sangre antes de efectuar el análisis.5 El anticoagulante empleado para la recogida de la muestra de sangre influye significativamente en los resultados de la prueba.5 Se recomienda el uso de tubos comerciales de recogida de sangre con hirudina.4,6 Alternativamente pueden usarse tubos estándares con litio y heparina o tubos citratados (3.2 % de citrato).7,8 Asegúrese que los tubos de recolección de sangre citratados se llenen hasta el nivel indicado para evitar concentraciones excesivas de citrato en la muestra. Cada centro debe estandarizar el sistema de recolección de sangre empleado. Sólo pueden compararse los resultados de una muestra individual con los intervalos de referencia si se emplea el mismo anticoagulante (p. ej. heparina de litio, citrato o hirudina). Las muestras deben analizarse en el período comprendido entre 0.5 y 3 horas después de su obtención.5 Material suministrado ▪ Consultar la sección "Reactivos - Soluciones de trabajo" en cuanto a los reactivos suministrados. Material requerido adicionalmente (no suministrado) ▪ 06675719190, Aliquot Vials para RISTOtest ▪ 06675751001, Hirudin Blood Tubes, 50 tubos ▪ 06675760001, Hirudin Blood Tubes, 10 tubos ▪ 06675590001, Test Cells, 6 x 10 unidades ▪ Solución salina (0.9 %) ▪ Analizador Multiplate. Para materiales requeridos adicionalmente consultar el manual del operador o la guía rápida del analizador. ▪ Agua destilada o desionizada ▪ Equipo usual de laboratorio Realización del test Para garantizar el funcionamiento óptimo del test, observe las instrucciones de la presente metódica referentes al analizador empleado. Consulte el manual del operador apropiado para obtener las instrucciones de ensayo específicas del analizador. Roche no se responsabiliza del funcionamiento de las aplicaciones no validadas por la empresa. En su caso, el usuario se hace cargo de su definición. Coloque R1 y las celdas de medición en las posiciones previstas. RISTOhigh Procedimiento de test para sangre tratada con hirudina, heparina de litio o citrato: Estabilidad del reactivo reconstituido: a 18‑25 °C 24 horas a 2‑8 °C 7 días 2016-05, V 4.0 Español Solución salina al 0.9 % (precalentada a 37 °C) 1/3 300 μL ms_06675867190V4.0 RISTOtest RISTOtest RISTOhigh RISTOhigh Procedimiento de test para sangre tratada con hirudina, heparina de litio o citrato: Muestra (18‑25 °C) 300 μL Incubación 180 segundos R1 50 μL Tiempo de medición 6 minutos Concentración final: 0.77 mg/mL de ristocetina. Deben observarse estrictamente las condiciones de temperatura y los tiempos de incubación. Al emplear una pipeta electrónica, seguir las instrucciones del software indicados por el analizador Multiplate. Control de calidad Para el control de la actividad y estabilidad del reactivo puede emplearse una muestra de sangre normal. Deben cumplirse las regulaciones gubernamentales y las normas locales de control de calidad vigentes. Limitaciones del análisis - interferencias El diagnóstico de los defectos de la función plaquetaria puede requerir posteriores evaluaciones clínicas. La agregación puede ser anormal en pacientes con trombocitopenia.9 La prueba RISTOtest puede dar resultados patológicos en pacientes que reciben tratamientos adicionales10 o que tienen otras enfermedades11 o en caso de presencia de inhibidores plaquetarios.12 Determinando el antígeno de FvW o la actividad del cofactor de la ristocetina, el FvW puede evaluarse más específicamente que con la prueba RISTOtest debido a que estas pruebas no analizan la agregación plaquetaria de las muestras de pacientes. Pueden obtenerse falsos resultados cuando no se calienta la solución salina o si se reducen los tiempos de incubación. La solución salina no debe contener ningún aditivo como p. ej. el éster metílico para evitar resultados falsos positivos. Para el diagnóstico, los resultados del test siempre deben interpretarse teniendo en cuenta la anamnesis del paciente, el análisis clínico así como los resultados de otros exámenes. Valores teóricos Los valores teóricos se han establecidos en un estudio efectuado con 53 donantes sanos empleando Hirudin Blood Tubes de Roche. Resultado (percentiles 5-95): RISTOhigh ABC [U] 98-180 Nota: Para establecer los valores de referencia, el donante normal no debería haber ingerido ácido acetilsalicílico, drogas anti‑inflamatorias no esteroideas (NSAID), o antagonistas del receptor ADP en los 10 días previos a la obtención de la muestra.13 Cada laboratorio debería comprobar si los intervalos de referencia pueden aplicarse a su grupo de pacientes y, en caso necesario, establecer sus propios valores. Datos específicos de funcionamiento del test A continuación, se indican los datos obtenidos con el analizador Multiplate. Los resultados de cada laboratorio en particular pueden diferir de estos valores. Precisión La precisión se determinó midiendo una muestra de sangre total tratada con hirudina en dos analizadores en todos los canales (o sea 10 mediciones en total). Se calcularon tanto la media como la desviación estándar. Se analizaron en total 3 muestras empleando para cada muestra los mismos analizadores y frascos de reactivo. Se obtuvieron los siguientes resultados: Muestra Media ABC [U] DE ABC [U] Muestra 1 134 18 Muestra 2 108 8 Muestra 3 155 16 Referencias bibliográficas 1 Valarche V, Desconclois C, Boutekedjiret T, et al. Multiplate whole blood impedance aggregometry: a new tool for von Willebrand disease. J Thromb Haemost 2011; 9: 1645-7. 2 Jenkins CSP, Phillips DR, Clemetson KJ, et al. Platelet Membrane Glycoproteins Implicated in Ristocetin-Induced Aggregation. JCI. 1976; 57: 112-124. 3 CLSI. Platelet Function Testing by Aggregometry; Approved Guideline. 3 Sibbing D, Braun S, Jawansky S, et al. Assessment of ADP-induced platelet aggregation with light transmission aggregometry and multiple electrode platelet aggregometry before and after clopidogrel treatment. Thromb Haemost 2008; 99: 121-126. 4 CLSI. Platelet Function Testing by Aggregometry; Approved Guideline. CLSI document H58-A. Clinical and Laboratory Standards Institute; 2008. 5 Kaiser AF, Neubauer H, Franken CC, et al. Which is the best anticoagulant for whole blood aggregometry platelet function testing? Comparison of six anticoagulants and diverse storage conditions. Platelets. 2011 Oct 14. 6 Jambor C, Weber CF, Gerhardt K, et al. Whole Blood Multiple Electrode Aggregometry Is a Reliable Point-of-Care Test of acetylsalicylic acid-Induced Platelet Dysfunction. Anesth Analg 2009;109:25-31. 7 Rahe-Meyer N, Winterhalter M, Boden A, et al. Platelet concentrates transfusion in cardiac surgery and platelet function assessment by multiple electrode aggregometry. Acta Anaesthesiol Scand 2009 Feb;53(2):168-75. 8 Pedersen SB, Grove EL, Nielsen HL, et al. Evaluation of acetylsalicylic acid response by Multiplate whole blood aggregometry and light transmission aggregometry. Platelets 2009 Sep;20(6):415-20. 9 Hanke AA, Roberg K, Monaca E, et al. Impact of platelet count on results obtained from multiple electrode platelet aggregometry (Multiplate). Eur J Med Res 2010 May 18;15(5):214-9. 10 Lison S, Weiss G, Spannagl M, et al. Postoperative changes in procoagulant factors after major surgery. Blood Coagul Fibrinolysis 2011 Apr;22(3):190-6. 11 Halimeh S, Angelis G, Sander A, et al. Multiplate Whole Blood Impedance Point of Care Aggregometry: Preliminary Reference Values in Healthy Infants, Children, and Adolescents. Klin Padiatr 2010; 222: 158-163. 12 Penz S, Perchuc A, Calatzis A, et al. Effects of GpIIbIIIa and GpIb blockade on multiple electrode aggregometry (MEA). GTH 2010; Abstract P10-13. 13 CLSI. Defining, Establishing, and Verifying Reference Intervals in the Clinical Laboratory; Approved Guideline-Third Edition. CLSI document C28-A3. Clinical and Labatory Standards Institute; 2008. Para más información acerca de los componentes necesarios, consultar el manual del operador y la guía rápida del analizador Multiplate, las respectivas hojas de aplicación, la información de producto y las metódicas. En la presente metódica se emplea como separador decimal un punto para distinguir la parte entera de la parte fraccionaria de un número decimal. No se utilizan separadores de millares. Símbolos Roche Diagnostics emplea los siguientes símbolos y signos adicionalmente a los indicados en la norma ISO 15223‑1. Contenido del estuche 2/3 2016-05, V 4.0 Español ms_06675867190V4.0 RISTOtest RISTOtest Analizadores/instrumentos adecuados para los reactivos Reactivo Volumen tras reconstitución y mezcla Número Global de Artículo Comercial GTIN La barra del margen indica suplementos, eliminaciones o cambios. © 2016, Roche Diagnostics Roche Diagnostics GmbH, Sandhofer Strasse 116, D-68305 Mannheim www.roche.com 2016-05, V 4.0 Español 3/3
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