Microgen STREP-ID - Medica-Tec

Microgen® STREP-ID
Sistema de identificación para estreptococos y enterococos provenientes de fuentes
clínicas, veterinarias, alimenticias y del medio ambiente
Instrucciones de uso
REF
MID-62
20
IVD
Microgen Bioproducts Ltd
1 Admiralty Way
Camberley
Surrey
GU15 3DT
Reino Unido
WF6724/2007/05
MICROGEN STREP-ID
Guía de referencia rápida
CONFIRMACIÓN
INÓCULO
INOCULACIÓN
Realizar: Tinción de Gram (cocos grampositivos en pares
o cadenas), catalasa (catalasa negativos) y notar la
presencia de hemólisis en una placa con sangre para
hemólisis α o β.
Registrar las reacciones hemolíticas en el formulario de
informe suministrado.
Preparar una suspensión 2.0 MacFarland en un medio de
suspensión
Añadir 3 o 4 gotas (100 µl) del inóculo preparado en el
medio de suspensión por pocillo de una tira de prueba de
micropocillos MID 62. Añadir 3 gotas de solución de
hipurato al tubo suministrado e inocular la cantidad que
entre en un asa del germen en cultivo. Cerrar
herméticamente el tubo con el tapón suministrado e
incubar.
CUBRIR CON ACEITE
Pocillo 12 – Arginina
TIEMPO DE
INCUBACIÓN
18 - 24 horas
TEMPERATURA
35 – 37°C
LECTURAS INICIALES
Lea todas las pruebas y registre los cambios de color
Pocillo 8: VP – Añadir 1 gota de reactivo VPI seguido de
1 gota de reactivo VPII y leer después de 15 a 30
minutos.
ADICIÓN DE
REACTIVOS
Pocillo 11: PYR – Añadir 1 gota de reactivo PYR y leer
después de 5 a 10 minutos
Prueba de hipurato – Añadir cuidadosamente 3 gotas de
reactivo ninhidrina, no mezclar. Incubar a temperatura
ambiente durante 10 a 15 minutos y leer.
LECTURA FINAL
Registrar los resultados en el formulario de informe
suministrado, calcular el código Octal e interpretar
utilizando el software MID
Nota: Un círculo negro alrededor de la parte superior de un pocillo
indica que el pocillo requiere que se añada un aceite mineral antes de
la incubación.
Un círculo verde alrededor de la parte superior de un pocillo indica
que el pocillo requiere que se añadan reactivos después de la
incubación.
INDICACIONES DE USO
El sistema Microgen Strep-ID utiliza 12 sustratos bioquímicos estandarizados en una tira de prueba
con micropocillos y tres pruebas adicionales para identificar miembros del género Streptococcus,
Enterococcus y especies relacionadas de importancia para los laboratorios médicos, veterinarios,
alimenticios y ambientales. El kit está indicado para utilizar en el diagnóstico in vitro solamente.
PRINCIPIO DE LA PRUEBA
El sistema Microgen Strep-ID comprende 15 pruebas bioquímicas de las cuales 12 se realizan en
una tira de prueba estandarizada con 12 micropocillos, una prueba de hipurato (suministrada), y dos
pruebas basadas en observaciones en medio de ágar sangre de la morfología de las colonias de
aislados microbianos. Todas estas pruebas han sido seleccionadas en función de un detallado
análisis informático (1) de bases de datos publicadas, para la identificación del género
Streptococcus (2, 3, 4). Los sustratos deshidratados en cada pocillo se reconstituyen con una
suspensión del germen en el medio de suspensión suministrado. Si los sustratos individuales son
metabolizados por el germen, ocurre un cambio de coloración durante la incubación o después de
añadir los reactivos específicos (ver Tabla de referencia de sustratos). La permutación de los
sustratos metabolizados se puede interpretar utilizando el software del sistema de identificación de
Microgen (MID-60) para identificar el germen de prueba.
CONT
BROTH
PRESENTACIÓN DEL KIT
MID-62b
TEST STRIP
MID-62c
MID-62b
Caldo de suspensión STREP-ID
20 x 3 ml
MID-62c Tira de prueba con micropocillos STREP-ID 20 tiras de prueba
Las tiras de prueba con micropocillos contienen 12 sustratos bioquímicos para la identificación de
Streptococcus y Enterococcus – ver tablas de datos
HIPPURATE
MID-62d
Hipurato
2,8 ml
Soporte para las tiras de prueba con micropocillos
Tubos con tapones para la prueba de hipurato (24)
Formularios de resultados
Instrucciones de uso
Requisitos adicionales:
1)
Software del sistema de identificación Microgen (MID-60) – Brinda identificación basada en la
probabilidad, porcentaje de probabilidad y posibilidad con un análisis de la calidad de la
separación. La definición completa de estos términos se encuentra en el manual de ayuda del
software.
En el sitio web de Microgen Bioproducts (www.microgenbioproducts.com) se puede actualizar
el software MID-60 (a partir de la versión 1.1.16.19 en adelante) que no contenga la base de
datos de estreptococos, para incluir los datos del Strep-ID
2) Solución fisiológica estéril
3) Aceite mineral
4) Reactivos VP I + VP II
5) Reactivo PYR (5)
6) Reactivo ninhidrina (6)
7) Pipetas estériles, gasas y asas bacteriológicas
8) Reactivos para tinción de Gram
9) Peróxido de hidrógeno
10) Incubador, sin ventilador (35 – 37 °C)
11) Mechero Bunsen
Los ítems 3, 4, 5 y 6 se pueden comprar en Microgen Bioproducts Ltd.
ADVERTENCIAS Y PRECAUCIONES
Seguridad:
1.
2.
3.
Los reactivos suministrados en este kit son para uso diagnóstico in vitro solamente
Se deben tomar las precauciones adecuadas cuando se manipulan o se desechan patógenos
potenciales. Después de usar, deseche todos los materiales contaminados mediante autoclave,
incineración o inmersión en un desinfectante apropiado, por ejemplo, hipoclorito de sodio a una
concentración final de 3% durante 30 minutos. Los desechos líquidos que contienen ácidos
deben ser neutralizados antes del tratamiento.
Se debe tener precaución cuando se manipulan reactivos adicionales, ya que pueden contener
materiales corrosivos o irritantes. Consulte los frascos individuales de reactivos para más
información.
Procedimiento:
1.
2.
3.
El sistema Microgen Strep-ID se debe utilizar según las instrucciones del kit.
Las tiras de prueba con micropocillos no se deben incubar en un incubador de CO2
La incubación incorrecta, el llenado inadecuado de los pocillos, o la densidad inadecuada del
inóculo puede dar resultados falsos.
ALMACENAMIENTO Y VIDA ÚTIL
Las tiras de prueba con micropocillos Microgen Strep-ID son estables en envases de papel de
aluminio sin abrir a una temperatura de 2 a 8 ºC hasta la fecha de caducidad que aparece en la
etiqueta. Los envases de tiras de prueba con micropocillos que están abiertos se pueden almacenar
durante un máximo de 14 días a una temperatura de 2 a 8 ºC, con la condición de que el envase
haya sido cerrado herméticamente nuevamente y que contenga desecante.
El hipurato es estable entre 2 y 8 ºC hasta la fecha de caducidad que aparece en la etiqueta.
ESPECÍMENES
Siempre se debe utilizar un cultivo puro de 18 a 24 horas del aislado bacteriano a identificar.
PROCEDIMIENTO – INOCULACIÓN E INCUBACIÓN
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
Realice una tinción de Gram (cocos grampositivos en pares o cadenas), prueba de catalasa
(catalasa negativos).
Observe si se produjo hemólisis en la placa con sangre (hemólisis α o β) y registre las
reacciones observadas en el formulario de informe que se suministra.
Si es posible, para preparar el inóculo para la(s) tira(s) de prueba con micropocillos, elimine
una cantidad suficiente de colonias aisladas idénticas del medio de aislamiento primario y haga
una emulsión en el medio de suspensión suministrado en el kit para producir una suspensión
equivalente a 2.0 MacFarland. Mezcle concienzudamente. Si se dispone de una cantidad
insuficiente de colonias, realice un subcultivo de una única colonia aislada en un medio
diferencial no selectivo adecuado (se recomienda el uso de ágar sangre). Incube la placa en
condiciones aeróbicas a 35 - 37 ºC durante 18 a 24 horas. Después de la incubación, deseche
una cantidad suficiente del material cultivado mediante un asa bacteriológica estéril o un
hisopo y realice una emulsión en el medio de suspensión suministrado, de manera que se
produzca una suspensión 2.0 MacFarland.
Añada tres gotas de solución de hipurato en un tubo vacío, después tome un pequeño barrido
de bacterias mediante un asa bacteriológica estéril y realice una emulsión en la solución de
hipurato en el tubo, cierre el tubo con un tapón e incube durante 18 a 24 horas a una
temperatura de 35 a 37 ºC.
Retire cuidadosamente y en forma parcial la(s) cinta(s) adhesiva(s) que sellan las tiras de
prueba con micropocillos. NO deseche la(s) cinta(s) adhesiva(s), ya que las precisará más
adelante.
Mediante el uso de una pipeta estéril de Pasteur, añada 3 o 4 gotas (aproximadamente 100 µL)
de la suspensión bacteriana a cada pocillo de la(s) tira(s) de prueba con micropocillos.
Como control de la pureza, transfiera una gota de la suspensión bacteriana a una placa de
8.
9.
pureza, para lo que debe utilizar un medio diferencial no selectivo (se recomienda ágar sangre).
Incube la placa en condiciones aeróbicas a 35 - 37 ºC durante 18 a 24 horas.
Después de la inoculación, recubra el pocillo 12 con 3 o 4 gotas de aceite mineral. Este pocillo
está marcado con un círculo negro alrededor para permitir la fácil identificación del pocillo
correcto.
Cierre herméticamente la parte superior de la(s) tira(s) de prueba con micropocillos con la(s)
cinta(s) adhesiva(s) retiradas previamente e incube en condiciones aeróbicas a 35 - 37 ºC. La
lectura de la(s) tira(s) de prueba con micropocillos se realiza después de 18 a 24 horas de
incubación.
PROCEDIMIENTO – LECTURA Y ADICIÓN DE REACTIVOS
1.
Retire la(s) cinta(s) adhesiva(s) y registre todas las reacciones positivas con la ayuda de la
tabla de colores (incluida en este folleto). Registre los resultados en los formularios
suministrados.
2.
Añada los reactivos apropiados a los siguientes micropocillos:
3.
a)
Realice la prueba VP en el pocillo 8, añadiendo una gota de VP I seguida de una gota de
VP II al pocillo y lea después de 15 a 30 minutos. La aparición de un color rosa claro a
rojo oscuro indica que la reacción de VP es positiva. Un fondo transparente indica una
reacción VP negativa.
b)
Añada una gota de reactivo PYR al pocillo 11 y lea después de 5 a 10 minutos. La
aparición de un color rosa pálido a rojo muy fuerte indica un resultado positivo.
c)
Añada cuidadosamente tres gotas de reactivo ninhidrina a la prueba de hipurato. No
mezcle el reactivo con la prueba, el reactivo debe cubrir el inóculo. Incubar a temperatura
ambiente durante 10 a 15 minutos y leer. La aparición de un color violeta en la capa
superior de reactivo indica una reacción de hipurato positiva. Un color claro en la capa
superior de reactivo indica una reacción negativa.
Registre estos resultados en los formularios suministrados.
IDENTIFICACIÓN
En el Formulario de informe de Microgen Strep-ID, los sustratos han sido organizados en tripletas
(grupos de 3 reacciones) donde a cada sustrato se le asignó un valor numérico (1, 2 o 4). La suma
de las reacciones positivas de cada tripleta forma un dígito único en el Código Octal que se utiliza
para determinar la identidad del germen aislado. Se ingresa el Código Octal en el software del
sistema de identificación Microgen (MID-60), lo que genera un informe de los cinco gérmenes más
probables en la base de datos seleccionada. El software brinda una identificación basada en la
probabilidad, porcentaje de probabilidad y posibilidad con un análisis de la calidad de la separación.
En el manual de ayuda encontrará la definición completa de estos términos y una explicación de su
utilidad en la interpretación.
Ejemplo de formulario de informe:
Importante:
Las tiras de prueba con micropocillos Microgen Strep-ID + las pruebas externas generarán un
Código Octal de 5 dígitos.
LIMITACIONES DEL USO
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
9.
Los resultados deben ser interpretados por el médico en el contexto de toda la
información clínica y de laboratorio disponible.
El sistema Microgen Strep-ID está indicado para la identificación de los gérmenes
incluidos en la base de datos. No se debe utilizar para identificar otro tipo de bacterias.
Analice sólo colonias puras y únicas, dado que la mezcla de colonias puede arrojar
resultados erróneos.
Las reacciones obtenidas con Microgen Strep-ID pueden diferir de los datos publicados
obtenidos mediante el uso de otras formulaciones de sustratos o reactivos.
Algunas cepas bacterianas pueden tener reacciones bioquímicas atípicas y pueden ser
difícil de identificar.
Los resultados de identificación generados por computadora deben ser interpretados por
personal adecuadamente entrenado.
Al determinar la identificación definitiva de un aislado bacteriano, se debe considerar el
origen del aislado bacteriano, la tinción de Gram, la morfología de la colonia, pruebas
adicionales y pruebas frente a la identificación sugerida.
El registro de hemólisis α o β se debe realizar en todos los aislados bacterianos antes de
la inoculación en la tira de prueba con micropocillos Microgen Strep-ID. Se necesita un
Código Octal de 5 dígitos para interpretar los resultados mediante el software del sistema
de identificación Microgen.
Es posible que S. pneumoniae y algunas otras especies α hemolíticas (S. mitis y S.
sanguinis) no siempre se diferencien claramente al utilizar los sustratos incluidos en
Microgen Strep-ID. Se recomienda realizar una prueba de sensibilidad en optoquina y/o
una prueba de solubilidad en bilis para aclarar la identificación de estas dos especies:
1.
Sensibilidad en optoquina
1. Subcultive una única colonia en una placa de ágar sangre al 5%.
2. Disperse el inóculo sobre la superficie de la placa.
3. Coloque un disco de optoquina de 5 µg en la superficie inoculada de la placa de
ágar.
4. Incube a 35 - 37 ºC en una atmósfera con CO2 al 5% durante 18 a 24 horas.
5. Sensible: Se inhibió el crecimiento alrededor del disco (14 mm o más con un
disco de 6 mm) - S. pneumoniae. Resistente: No se inhibió el crecimiento
alrededor del disco o el crecimiento hasta el disco y alrededor de éste – S. mitis
o S. sanguinis.
2.
Solubilidad en bilis
1.
2.
3.
4.
10.
Subcultive una colonia única en una placa de ágar sangre al 5%, de manera tal
que asegure que las colonias estén bien aisladas.
Coloque la cantidad que pueda tomar con un asa o una gota de desoxicolato al
2% (pH 7,0) directamente en una colonia única bien aislada.
Incube la placa a 35 - 37 ºC, en condiciones aeróbicas, durante 30 minutos. (No
invierta la placa).
Soluble en bilis: la colonia se desintegra (desaparece) bajo la gota, dejando un
área de hemólisis donde se encontraba la colonia – S. pneumoniae. Insoluble
en bilis: la colonia permanece sin cambios y visible – S. mitis o S. sanguinis.
Algunas especies que pertenecen al mismo grupo pueden ser escasamente
diferenciadas, por ejemplo, S. intermedius y S.anginosus que pertenecen al grupo
Anginosus. El software del sistema de identificación Microgen indica si las especies
pertenecen al mismo grupo.
CONTROL DE CALIDAD
Se debe monitorizar la eficacia del sistema Microgen Strep-ID mediante el uso de cepas de control
adecuadas. Se recomiendan los siguientes cultivos para la evaluación de laboratorios
independientes:
Streptococcus salivarius ATCC 13419
Streptococcus mutans NCTC 10449/ ATCC 25175
Streptococcus mitis biovar 1 ATCC 6249
Enterococcus gallinarum ATCC 49573
H
I
P
A
H
E
B
H
E
M
E
L
S
O
R
I
N
U
L
A
C
A
R
A
R
I
B
E
S
C
V
P
P
H
S
B
G
A
P
Y
R
A
R
G
S. salivarius ATCC 13419
-
+
-
-
-
+
+
-
-
+
+
-
-
-
-
S. mutans NCTC 10449 / ATCC 25175
-
+
-
+
+
+
+
-
-
+
+
-
+
-
-
S. mitis biovar 1 ATCC 6249
-
+
-
+
-
-
+
-
-
-
-
+
+
-
-
E. gallinarum ATCC 49573
+
-
-
+
-
+
+
+
+
+
+
-
+
+
+
BASE DE DATOS
Microgen Strep-ID está basado en métodos de pruebas bioquímicas estándar. Los datos provistos
para la interpretación de los perfiles de reacción se basan en fuentes establecidas de la bibliografía
(2, 3, 4, 5).
CARACTERÍSTICAS DE EJECUCIÓN
Microgen Strep-ID (MID-62) ha sido evaluado en comparación con un producto comercialmente
disponible establecido para la identificación de aislados bacterianos en cultivos.
Núm.
Evaluado
E. avium
1
2
E. durans
10
E. faecalis
E. faecium
5
E. gallinarum
1
1
E. hirae
1
G. haemolysans
S. acidominimus
1
S. agalactiae
5
3
S. anginosus
1
S. bovis
S. constellatus
3
1
S. dysgalactiae subespecie eq
2
S. equi subespecie equi
S. equi subespecie zooepidem
1
S. gordonii
1
1
S. intermedius
9
S. mitis
S. mutans
4
S. parasanguinis
1
5
S. pneumoniae
3
S. pyogenes
S. salivarius
4
S. sanguinis
2
1
S. uberis
S. vestibularis
1
70
TOTAL
MID-62
1
2
10
5
1
1
1
1
5
3
1
2
1
2
1
1
1
9
3
1
4
3
4
0
1
1
65
Competidor
1
1
10
5
0
0
1
0
5
2
1
3
1
2
1
0
0
5
4
0
2
3
3
2
1
0
53
92.9%
75.7%
Se examinó un total de 70 gérmenes,
que incluían cultivos de muestras
tomadas para cultivo reconocidas y
muestras clínicas. Microgen Strep-ID
identificó correctamente 65 (93%). El
producto de la competencia identificó
53 (76%) de los aislados bacterianos
evaluados.
REPRODUCIBILIDAD
En cada lote: Se evaluó un panel de cultivos bacterianos mediante el uso de un lote de Microgen
Strep-ID, en tres ocasiones, utilizando un operador diferente en cada ocasión. Los resultados de las
pruebas obtenidos por los tres operadores se correlacionaron muy estrechamente, lo que dio una
reproducibilidad general en el lote de 99%.
Entre lotes: Se evaluaron tres lotes de Microgen Strep-ID mediante el uso de un panel de cinco
cultivos bacterianos. Esto dio una reproducibilidad general entre lotes de >99%.
REFERENCIAS
1.
2.
3.
4.
5.
6.
Lapage S.P, Bascombe S, Willcox W.R and Curtis M.A. (1973) Identification of Bacteria by
Computer: General Aspects and Perspectives J.Gen. Microbiol. 77: 273 -290
Murray P.R. (Ed) (2007) Manual of Clinical Microbiology 9th Edition. American Society for
Microbiology, Washington, DC
Flackham R. (2002) What Happened to Streptococci: Overview of Taxonomic and
Nomenclature Changes. Clin. Microbiol. Reviews. 15: 613 – 630
Bascomb S. and M. Manafi (1998) Use of Enzyme Tests in Characterization and Identification
of Aerobic and Facultatively Anaerobic Gram – Positive Cocci. Clin. Microbiol. Reviews. 11: 318
– 340
Ellner P.D., Williams D.A., Hosmer M.E. and A. Cohenford. (1985) Preliminary evaluation of a
rapid colorimetric method for the presumptive identification of group A streptococci and
enterococci. J. Clin. Microbiol. 22: 880 – 881
Hwang M, and G.M. Ederer (1975) Rapid hippurate hydrolysis method for presumptive
identification group B streptococci. J. Clin.Microbiol 1: 114 - 115
TABLA DE REFERENCIA DE LOS SUSTRATOS
Pocillo
Reacción
1
2
3
4
5
6
Melibiosa
Sorbitol
Inulina
Lactosa
Arabitol
Ribosa
7
Esculina
8
Voges
Proskauer (VP)
9
Fosfatasa
alcalina
10
β-Galactosidasa
11
PYR
12
Arginina
13
Hipurato
14
15
α hemólisis
β hemólisis
Descripción
Fermentación en azúcar – El rojo fenol cambia
de rojo a amarillo como resultado del ácido
producido por la fermentación de los
carbohidratos.
Hidrólisis de la esculina a glucosa y esculetina,
que produce un compuesto negro en presencia
de iones férricos.
Se detecta la producción de acetoína a partir de
la glucosa por la formación de un complejo rosa
/ rojo después de añadir alfa naftol y creatina en
presencia de KOH.
La hidrólisis de p-nitrofenil fosfato por la
fosfatasa alcalina resulta en la producción de pnitrofenol amarillo.
La hidrólisis de p-nitrofenil-β-Dgalactopiranosida por la B-galactosidasa resulta
en la producción de orto-nitrofenol amarillo.
Hidrólisis de L-pirrolidonil-α-naftilamida por la
enzima pirrolidonil arilamidasa.
La arginina es convertida a omitina, amoníaco y
CO2 por la arginina dihidrolasa, lo que resulta en
un aumento del pH y un cambio en el color del
bromotimol azul de verde a azul. A las 48 horas
las reacciones verdes son negativas.
El hipurato es hidrolizado al aminoácido glicina,
que se detecta utilizando el reactivo ninhidrina.
Registro visual de la hemólisis en ágar sangre
Registro visual de la hemólisis en ágar sangre
Positivo
Negativo
Amarillo –
Amarillo/
anaranjado
Rojo/
Anaranjado
intenso
Negro
Marrón claro
Rosa
pálido/Rojo
Transparente
Amarillo
Incoloro
Amarillo
Incoloro
Rosa
pálido/Rojo
Incoloro
Verde/azul
Azul
Amarillo
Violeta
Transparente
(1)
(2)
(1).
α hemólisis - Se presenta como una zona de hemólisis parcial de glóbulos rojos en el
medio de ágar sangre. Esto se caracteriza por un cambio al color verde del medio que rodea
a las colonias.
(2).
β hemólisis - Se presenta como una zona de hemólisis completa de glóbulos rojos en el
medio de ágar sangre. Esto se caracteriza por un completo aclaramiento del medio que
rodea a las colonias.
Especies identificadas con Microgen Strep-ID
Especies de Enterococcus
E. avium
E. casseliflavis
E. cecorum
E. dispar
E. durans
E. faecalis
E. faecium
E. gallinarum
E. hirae
E. mundtii
E. raffinosus
Especies de Gemella
G. haemolysans
Especies de Streptococcus
S. acidominimus
S. agalactiae
S. anginosus
S. bovis
S. canis
S. constellatus
S. dysgalactiae subespecie dysgalactiae
S. dysgalactiae subespecie equisimilis
S. equi subespecie equi
S. equi subespecie zooepidemicus
S. equinus
S. gordonii biovar 1
S. gordonii biovar 2
S. gordonii biovar 3
S. intermedius
S. mitis biovar 1
S. mitis biovar 2
S. mutans
S. oralis
S. parasanguinis
S. pneumoniae
S. porcinus
S. pyogenes
S. salivarius
S. sanguinis biov 1
S. sanguinis biov 2
S. sanguinis biov 3
S. sanguinis biov 4
S. suis
S. uberis
S. vestibularis
Tabla de datos de Streptococcus
HIP
AHE
BHE
MEL
SOR
INU
LAC
ARA
RIB
ESC
VP
PHS
BGA
PYR
ARG
E. avium
45
90
1
30
99,9
0,1
99,9
85
99
99,9
60
0,1
85
92
0,1
E. casseliflavis
0,1
50
0,1
99,9
13
90
99,9
99
99
99
95
0,1
99
99
58
E. cecorum
0,1
90
5
99,9
0,1
99,9
99,9
0,1
99
99,9
99,9
99,9
75
24
0,1
22
0,1
0,1
99,9
99,9
0,1
0,1
99
99,9
99,9
0,1
99,9
99,9
99,9
E. durans
45
64
20
20
0,1
0,1
95
5
99
99,9
97
0,1
82
99,9
99,9
E. faecalis
E. dispar
90
60
12
24
0,1
95
0,1
95
0,1
99
99,9
99,9
5
24
99,9
99,9
E. faecium
80
60
0,1
95
8
2
98
95
99
99,9
92
0,1
50
99,9
90
E. gallinarum
91
50
0,1
99,9
20
82
99,9
99
99
99,9
96
0,1
55
96
70
99,9
E. hirae
70
0,1
0,1
98
0,1
99
99,9
90
0,1
80
99,9
E. mundtii
0,1
0,1
0,1
99,9
80
15
99,9
99
99
99,9
99,9
0,1
99,9
99,9
91
E. raffinosus
35
25
0,1
99,9
99,9
0,1
0,1
0,1
99,9
99
99
99,9
65
0,1
0,1
99
0,1
92
0,1
G. haemolysans
0,1
0,1
1
0,1
5
0,1
0,1
0,1
0,1
0,1
50
60
0,1
81
S. acidominimus
80
40
0,1
0,1
0,1
0,1
99,9
0,1
0,1
0,1
0,1
0,1
99,9
8
40
S. agalactiae
99
0,1
98
20
7
0,1
70
0,1
99
0,1
75
99,9
5
0,1
99,9
S. anginosus/ intermedius
0,1
0,1
0,1
12
0,1
85
0,1
0,1
99,9
80
90
30
0,1
99,9
S. bovis
0,1
32
0,1
99,9
10
50
99,9
30
99
90
85
0,1
16
0,1
0,1
S. canis
0,1
0,1
99,9
0,1
0,1
0,1
97
0,1
99
99
0,1
99
90
0,1
99
S. constellatus
0,1
0,1
80
18
0,1
0,1
52
0,1
0,1
99,9
99,9
99
70
0,1
99
0,1
70
0,1
80
0,1
99
0,1
0,1
0,1
99
S.dysgalactiae subespecie equisimilis
15
0,1
95
0,1
0,1
0,1
99,9
0,1
98
0,1
0,1
99
99
0,1
99
S. equi subespecie equi
0,1
0,1
99
0,1
0,1
0,1
0,1
0,1
0,1
88
0,1
99
0,1
0,1
99
S.dysgalactiae subespecie dysgalactia
0,1
40
60
2
99
0,1
S.equi subespecie zooepidemicus
0,1
0,1
97
0,1
99
0,1
99,9
0,1
99
80
0,1
99
20
0,1
99
S. equinus
0,1
58
0,1
10
0,1
15
5
0,1
50
99,9
28
0,1
0,1
0,1
0,1
S. gordonii biovar 1
0,1
99
0,1
99,9
0,1
99,9
99,9
0,1
99,9
S. gordonii biovar 2
0,1
99
0,1
0,1
0,1
75
99,9
0,1
0,1
99,9
0,1
99,9
65
0,1
S. gordonii biovar 3
0,1
99
0,1
0,1
0,1
99,9
99,9
0,1
0,1
99,9
0,1
99,9
45
0,1
99,9
S. intermedius/ anginosus
0,1
50
45
9
0,1
0,1
96
0,1
6
99,9
99,9
99,9
99,9
0,1
99,9
99,9
99,9
0,1
0,1
99,9
0,1
99,9
S. mitis biovar 1
0,1
89
0,1
42
0,1
0,1
99,9
0,1
5
0,1
0,1
35
60
0,1
2
S. mitis biovar 2
0,1
85
0,1
99,9
38
0,1
99,9
0,1
7
0,1
0,1
60
80
0,1
85
0,1
S. mutans
0,1
40
1
99,9
99,9
99,9
99,9
50
99,9
90
0,1
35
0,1
0,1
S. oralis
0,1
99
0,1
99,9
0,1
0,1
99,9
10
90
0,1
0,1
85
96
0,1
0,1
S. parasanguinis
0,1
99
0,1
45
0,1
0,1
99,9
0,1
0,1
42
0,1
65
45
0,1
85
S. pneumoniae
0,1
90
0,1
5
0,1
60
99,9
0,1
0,1
37
0,1
0,1
98
25
24
S. porcinus
27
0,1
95
0,1
90
0,1
10
0,1
99
99
95
98
1
5
90
S. pyogenes
0,1
0,1
99,9
0,1
0,1
0,1
99,9
0,1
0,1
20
0,1
99,9
0,1
99,9
99,9
S. salivarius
0,1
40
0,1
20
0,1
55
45
0,1
35
99,9
55
35
57
0,1
0,1
S. sanguinis biov 1
0,1
95
0,1
0,1
5
80
99,9
0,1
0,1
99
0,1
0,1
99,9
0,1
98
S. sanguinis biov 2
0,1
95
0,1
0,1
1
73
99,9
0,1
0,1
98
0,1
0,1
50
0,1
98
S. sanguinis biov 3
0,1
96
0,1
0,1
25
78
99,9
0,1
0,1
99
0,1
0,1
38
0,1
98
0,1
0,1
99,9
0,1
99,9
0,1
S. sanguinis biov 4
0,1
1
64
0,1
0,1
92
0,1
S. suis
0,1
99
1
50
0,1
99,9
99
0,1
0,1
99
0,1
5
50
40
99
S. uberis
99
50
0,1
46
99,9
75
50
0,1
98
99,9
95
40
40
40
50
0,1
95
0,1
0,1
0,1
0,1
99,9
0,1
0,1
80
80
0,1
99,9
0,1
82
S. vestibularis #
95
# S. vestibularis también es conocido como S. vestibularius
98