fotoprotectores+y+antioxidantes - Fyboa

fotoprotectores+y+antioxidantes - Fyboa

!
VALORIZACIÓN+DE+LA+BIOMASA+EN
IMTA:APLICACIONES+EN+COSMÉTICA
(FOTOPROTECTORES+Y+ANTIOXIDANTES)
!!!!!!!!!!!Félix!López!Figueroa
!!!!!!!!!!!Departamento!de!Ecología
!!!!!!!!!!!Facultad!de!Ciencias
!!!!!!!!!!!Universidad!de!Málaga
!
!
[email protected]
www.fyboa.uma.es
!
!
!
Fotobiología!y!Biotecnología
de!Organismos!acuáticos
FYBOA!(RNMM295)
USO!DE!ALGAS!COMO!FILTRADORAS!DE!EFLUENTES!DE!PISCIFACTORÍAS!Y
!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!
FUENTE!DE!RECURSOS!DE!SUSTANCIAS!DE!INTERÉS!!AGRONÓMICO,!PISCÍCOLA
Y!BIOMÉDICO8FARMACOLÓGICO
PISCIFACTORÍ
A
Efluentes)ricos)en
nutrientes
Efluente
depurad
o
MACRO/MICROALGAS
BIOFILTRADORAS
UMA!(MICROBIOLOGÍA)
BIOMASA)DE
ALGAS
USO$PISCÍCOLA
Inmunoestimuladores
Alimento))))))
ULPGC
USO
AGRONÓMICO
Bioestimuladores
Compost
USO
ENERGÉTICO
Bioetanol
Biodiesel
Proyecto(DEPUSIAL(AGL2001418884C03
Proyecto(SEAPURA((QLRT41999431334
Proyecto(BIGARO(AGL42005402655/ACU
USO$BIOMÉDICO/
FARMACOLÓGICO
Fotoprotectores
Antioxidantes
Inmunoestimuladores
UMA!(ECOLOGÍA)
INCREMENTO DE LA EXPOSICIÓN A LA RADIACIÓN SOLAR UV
1. Destrucción de la capa de ozono (incremento de UV-B)
2. Mayor exposición solar por cambio de hábitos, ocio,
causas laborales etc.
3. Bronceado artificial mediante lámparas UV (26% de las mujeres
y 20% de hombres españoles usaron rayos UV artificiales en
el año 2002 )
EFECTOS NEGATIVOS DE LA
RUV
Fotoenvejecimiento de la piel
Cáncer cutáneo
Inmunosupresión
Lesiones oculares
FOTOPROTECCIÓ
N
Fotoprotectores
Antioxidantes
Inmunoestimuladores
INVESTIGACIÓN Y DESARROLLO (I+D)
Algas marinas como fuente de sustancias fotoprotectoras y antioxidantes
AMINOÁCIDOS TIPO MICOSPORINA (MAAs)
1.
2.
3.
4.
5.
6.
Extracción purificación de 3 MAAs de algas rojas
Ensayos de toxicidad: negativos
Ensayos de fotoprotección: positivos
Ensayos antioxidantes: positivos
Fotoestimulación por UV-A y amonio
Extracción de MAAs de biomasa de algas crecidas en efluentes
de piscifactorías
Micosporina-Gly
Asterina-330
Porphyra-334
Propiedades de los MAAs
• Bajos pesos moleculares (aprox. 300 Da)
• Máximo de absorción alrededor de 310-334 nm
• Altos coeficientes de extinción molar (28000-45000 M-1·cm-1)
• Termo y fotoestables
RADIACIÓN UV
Disipación térmica de
la energía de excitación
MAAs
NITRÓGENO
Baja emisión de fluorescencia
No produce radicales libres
BUENA MOLÉCULA FOTOPROTECTORA
2.1. FOTOPROTECTORES: AMINOÁCIDOS TIPO MICOSPORINA (MAAs)
Shinorina
Micosporina-gly
Porphyra-334
Asterina-330
3
Palythine
Palythinol
Palythene
Nombre
Micosporina-gly
Shinorina
Porphyra-334
Palythine
Asterina-330
Palythinol
Palythene
l
máxima (nm)
310
332
334
320
330
332
360
e (M -1*cm -1) EN (1%)Lg -1cm -1
28100
1145.9
44668
1344.1
43300
1250.2
36200
1482.1
43500
1508.8
43500
1438.8
50000
1760.6
Peso molecular
245.231
332.329
346.336
244.247
288.300
302.327
284.000
La asimilación de amonio se refleja en un mayor contenido de
proteínas, pigmentos y también de MAAs.
El incremento del contenido de MAAs es superior en presencia
de RUV. Concretamente la radiación UVA es la más efectiva
en P. columbina.
1.
EXPERIMENTOS EN LABORATORIO: ALGAS CRECIDAS A
DISTINTAS CONCENTRACIONES DE AMONIO
Filtros de UV
PAB
1
Ultraphan-295
0.8
0.6
Folex-320
0.4
PA
Transmittance (RU)
0.2
0
300
Cámara de Incubación
P
P PA PAB
Ultraphan-395
350
400
Wavelength (nm)
450
500
P=PAR (400-700 nm)
PA= PAR+UV-A (315-400 nm)
PAB= PAR+UV-A+UV-B (280-315 nm)
Lámparas
1
0.8
0.6
0.4
Identificación y
cuantificación de
MAAs por HPLC
Sun
UV lamp (QP-340)
0.2
0
300
400
500
600
Wavelength (nm)
700
800
INCREMENTO DE MAAs Y BILIPROTEÍNAS (FICOERITRINA) EN ALGAS
CULTIVADAS EN AMONIO EN DISTINTAS ESPECIES DE PORPHYRA
D
M
A
AS
(
mg
g-1
PS
)
6
5
4
3
2
1
0
5
D
F
E
(
m
g
g
1
P
S
)
+ 7 días
PAB
4
3
100
300
■ En todas las especies de Porphyra tanto los
MAAs como Ficoreritrina incrementan con el
aumento de la disponibilidad de amonio.
+ 7 días
PAB
El incremento de MAAs en
P. columbina and P.leucosticta
fue de 5 mg DW-1 tras 7 días de incubación
en 300 mM NH4+
2
1
0
100
Ammoniun
P. columbina
P. leucosticta
P. umbilicalis
300
■
#
LA#ACUMULACIÓN#DE#MAAs#ESTÁ#RELACIONADA#CON#LA
CONCETRACION#DE#NITRATO#EN#EL#MEDIO
Gracilaria'tenuistipitata
VARIACIÓN EN LA CONCENTRACIÓN DE MAAs EN FALKENBERGIA
RUFOLANOSA) CULTIVADA EN EFLUENTES DE PISCIFACTORÍAS (DORADA)
RICOS EN AMONIO
Radiación
solar
Agua
residual
Alimento
Agua de mar
Recirculación del
efluente depurado
O2
O
2
MAAs
Tanques con
algas
NH4+
PO4
CO2
NH4
PO4
Filtro
Mecánico
Desechos sólidos
CO2
Residuos
sólidos
Tanques
de peces
FLUJO DE NITRÓGENO (16-395 mM/h)
2,8
2,6
2,4
2,2
2
1,8
1,6
1,4
1,2
1
0,8
0,6
0,4
0,2
0
MAA
s
Rendimiento
800
750
700
650
600
550
500
450
400
350
300
250
200
150
100
50
0
R
E
N
D
I
M
I
E
N
T
O
D
E
L
A
L
G
A
M
(
g
A
P
A
S
S
m
(
2
m
s
e
g
m
g
a
n
a
1
1
P
16,5 36,6 45,3 49,5 102,6 110,7 160,9 217,6 253 271,6 313,9 395,3
)
S
FLUJO DE AMONIO (mM h)
1)
■ La concentración de MAAs incrementa hasta un flujo de amonio de 50 mM h-1
. A mayores flujos , la concentración de MAAs decrece.
■ Los MAAs incrementan en la primera fase de crecimiento del alga (100-250 g
PS m-2 semana-1). En la segunda fase, sin embargo, con crecimientos de 250750 g PS m-2 semana-1), los MAAs decrecen.
MAA Y BIOFILTRACIÓN : EFICIENCIA EN LA INCORPORACIÓN DE AMONIO (NUE)
Y TASA DE ABSORCIÓN DE AMONIO
■ La concentración de MAAs está
Total
Shinorine
directamente relacionada con la
eficiencia de incorporación de
amonio (NUE), la cual está
inversamente relacionada con el
crecimiento del alga.
Palythine
M
A
As
(m
g
g1
PS
)
2,
Asterina
8
2,
6
2,
4
2,
22
1,
8
1,
6
1,
4
1,
21
0,
8
0,
6
0,
4
0,
20
20,0 25,0 30,0 35,0 40,0 45,0
0
0
0
0
0
0
50,0 55,0 60,0 65,0 70,0 75,0
0
0
0
0
0
0
NUE
(%)
80,0 85,0 90,0
0
0
0
95,0
0
■
Total
2,
8
2,
6
2,
4
2,
2
1,
8
1,
6
1,
4
1,
2
0,
8
0,
6
0,
4
0,
2
Shinorine
Palythine
Asterina
2
1
0
0
1
0
2
0
3
0
4
0
5
0
6
0
7
0
8
0
9
0
Tasa de absorción de amonio (mM h-1)
10
0
11
0
La concentración de MAAs
varía en relación con la tasa de
absorción de amonio
siguiendo una función
hiperbólica . Los MAAs
incrementan hasta flujos de 50
mM h-1 . A flujos mayores
decrecen por competencia con
el crecimiento por el uso del
amonio.
MAAs+IN+TANK+CULTIVATED+HYDROPUNTIA,-JANIA,-HYPNEA-AND-HALOPITHYS+IN+AMMONIUM
ENRICHED+FISHPOND+EFFLUENTS
PAB (Outdoor)
P (Indoor)
Hydropuntia cornea
1.4
M
AA
s
(m
g/
g
D
W)
1.2
1
PAR+UV (Solar radiation)
PAR (Indoor)
0.8
0.6
0.4
0.2
0
Hydropuntia
cornea
Jania
adhaerens
Hypnea
spinella
Halopithys
incurva
PRODUCTION*OF*MAAS*AND*BPs*IN#HYDROPUNTIA#CORNEA#IN*FISHPOND
EFFLUENTS*VERSUS*SEAWATER
FISHPOND
EFFLUENT
SEAWATE
R
FISHPOND)EFFLUENT
SEAWATER
SEAWATER
SEAWATE
R
Table!.!Mycosporine<like!amino!acid!yield!expressed!as!mg!MAAs!m<2!d<1and!polysaccharide
yield!as!g!APs!m<2!d<1in!Hydropuntia,cornea!grown!in!fishpond!effluents!outdoor!(OFE)!!or!indoor
(IFE)!and!in!seawater!outdoor!(OSW)!or!indoor!(ISW)!for!28!days.!After!this!period,!indoor!and
outdoor!fishpond!effluents!grown!algae!were!culture!for!other!two!weeks!(day!42)!under
seawater!and!the!same!light!treatments.!The!seawater!grown!algae!was!maintained!also!until
day!42!in!the!same!conditions.
!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!Days%%%%%%%%%%%%%%%%%%%%OFE%%%%%%%%%%%%%%%%%%%%%%%%%%IFE%%%%%%%%%%%%%%%%%%%%OSW%%%%%%%%%%%%%%%%%%
!ISW
7
mg%MAAs%m12%d1
1
28
42
7
g%APs%m12%d11
28
42
10.21!±!0.25
12.88!±!0.09
12.98!±!0.00
3.13!±!0.00
8.63!±!0.03
5.61!±!0.11
1.24!±!0.00
0.76!±!0.00
6.00!±!0.08
3.02!±!0.03
0.89!±!0.00
0.55!±!0.00
219.04!±!0.70 193.78!±!0.53 279.89!±!0.02 205.86!±!0.01
147.10!±!0.79
99.13!±!0.38
91.75!±!0.02
79.42!±!0.01
51.19!±!0.18 161.15!±!0.17
19.05!±!0.02
58.38!0.01
Fishpond!effluents=!Increase!of!MAAs
Seawater=Increase!Polysaccharides
EFECTO DEL ENRIQUECIMIENTO CON AMONIO SOBRE LA
ACUMULACIÓN DE MAAs EN ALGAS ROJAS
Tratamiento de nutrientes
Condiciones de cultivo
Agua de mar no enriquecida
(control)
Agua de mar enriquecida
Gracilaria cornea
Solar en invernadero (28d)
Solar en exterior(28 days)
0.4 0.05
0.8 0.09
0.6 0.01
1.8 0.18
Falkenbergia rufolanosa
Solar (22 days)
1,4 0.10
2,6 0.20
Grateloupia lanceola
Radiación artificial
PAR+UV (14 days)
1.9 0.12
3.4 0.25
Porphyra leucosticta
Radiación artificial
PAR+UV (6 days)
4.3 0.63
9.7 0.45
Porphyra columbina
Radiación artificial
PAR+UV (6 days)
3.7 0.76
8.9 0.90
ACTIVIDAD ANTIOXIDANTE DE LOS MAAS
LAGOS, MÁLAGA
Porphyra(leucosticta
(Porphyra—334+Shinorine)
Lichina(pygmaea
(Mycosporine;Glycine)
TARIFA, CÁDIZ
Gymnogongrus(devoniensis
(Shinorine)
Gelidium(sesquipedale
(Asterina;330+Palythine)
1
Identificación y caracterización de MAAs
1
U.A
0.05
1 shinorine
2-3-4 desconocido
SH: 98%
0.10
U.A
.
0.00
2.0
4.0
6.0
2
3 4
8.0
10.0
12.0
14.0
Tiempo de retención (min)
16.0
18.0
20.0
18.0
20.0
A. devoniensis
3
0.15 1 shinorine
2 palithyne
U.A 0.10 3 asterina 330
AS: 68%
2
1
0.05
0.00
2.0
G. corneum
4.0
1-2
0.10
6.0
8.0
10.0
12.0
14.0
Tiempo de retención (min)
3
1,2,3 M-Glycine
4
U.A0.05
.
16.0
M-Gly: 73% 4-5-6 desconocido
5
6
0.00
L. pygmaea
2.0
4.0
6.0
8.0
10.0
12.0
14.0
Tiempo de retención (min)
16.0
18.0
20.0
CONCLUSIONES: MAAs son filtros
contra la radiación UV y tienen
actividad antioxidantes
Mycosporine-gly
Mycosporine -gly presenta alta actividad (reacción ABTS) . Su actividad antioxidante es
dependiente del pH (incrementa con el aumento del pH hasta 8.5)
Porphyra-334 and shinorina presentan moderada actividad antoxidante (peroxidación
lipídica)
Asterina 330+palythine
presenta alta actividad antioxidante(peroxidación lipídica)
Porphyra-334
Shinorine
Asterina-330
Palythine
PATENTS ON THE USE OF MAAs AS ANTIOXIDANTS
De#la#Coba#Luque,#Francisca;#Aguilera#Arjona,#José;#López#Figueroa,#Félix.
#
1.#Shinorine)#como#antioxidant##P200502157#(*)
2.#Asterina#330#+#palythine)#as#antioxidant#P200502158
#
3.#Porphyra#334#as#antioxidant##P200502161.####
#
4.#MycosporineSglycine#(MSgly)#as#antioxidant##P200502162.####
#
PCT:##30#August#de#2006
#
(*)#I#Inventum#Price#of##Málaga#University
#
#
#
ACTIVIDAD'ANTIOXIDANTE'DE'MACROALGAS'RECOLECTADAS'EN'EL'MEDIO
NATURAL'VERSUS'IMTA
SUPRALITORAL
Nivel máximo pleamar
Eulitoral superior
Fs
Fucus'spiralis
EULITORAL
Hs
Ci
Gd
Eulitoral inferior
Ca
Cr
Codium'intertextum'(Ci)
Ulva%rigida
Eulitoral medio
Nivel máximo bajamar
Pc
Ur
Hypnea'spinella'(Hs)
Nivel&mínimo&pleamar
Lm
Hi
Nivel máximo bajamar
SUBLITORAL
Pterocladeilla
capillacea
Cystoserira%abies>marina
(Ca)
Grateloupia%dichotomoa%(Gd)
Caulerpa%racemosa
Laurencia%majuscula
(Lm)
Halophytis%incurva%(Hi)
TANQUE DE
PECES
VIRTUAL
NH4+
TANQUE DE
DECANTACIÓN
AGUA DE MAR
CULTIVO DE
MACROALGAS
División Chlorophyta
Especies cultivadas
DivisiónRhodophyta
DivisiónPhaeophyta
Sistema (V): FBR ( 30 L)
Nutrientes: Efluente de piscifactoria
Irradiación máx: 60 W m-2 PAR
Densidad de cultivo: 18 gl-1
TR: 8.5 vold-1
Tiempo: 4 semanas
Codiumintertextum
Caulerparacemosa
Ulva rígida
Pterocladiellacapillaceae
Hypneaspinella
Grateloupiadichotoma
Halopithys incurva
Laurencia majuscula
Fucusspiralis
Cystoseiraabies-marina
Tabla Resumen comparativo de lasespecies ensayadas en el sistema de cultivo, indicado de
mayor a menor adaptación (++++,+++,+ -).
SISTEMA+NATURAL
Especies
C. intertextum
C. racemosa
U. rigida
P. capillaceae
H. musciformis
G. dichotoma
H.incurva
L. majuscula
F. spiralis
C. abies-marina
SISTEMA
NATURAL
Adaptación a las
condiciones de cultivo
IMTA
+++
++++
++++
++
++++
+++
++
+++
+
IMT
A
Fucus(spiralis
Pterocladiella(capillacea
Caulerpa(racemosa
Medio Natural
IMT
EXTRACTOS)DE)ALGAS
Método de preparación de los extractos
Macroalgas recién recolectadas
o cosechada
Lavar con agua dulce
Escurrir y congelar a -20°C
Liofilización
Extracción
10 g de alga fresca+150mL
de solvente de extracción
Maceración
3 horas en oscuridad
38±2 °C en agitación
MÉTODO)ANTIOXIDANTE)DPPH
Filtración
Malla 100 micras
Concentración al vacío (1:10)
(Rotaevaporación
40°C 176 mbar)
Congelar -20°C
3 mL de solución
DPPH 0,36 mM +
300µL de extracto
Agitar
Incubar a Tº ambiente 1
hora
Lectura absorbancia a 517 nm
Control: 300µL de agua destilada
Estandares: BHT, vitamina E, vitamina C, propil galato,
floroglucinol
ENSAYO ANTIOXIDANTE : PODER REDUCTOR
2.5 mL de tampón
fosfato 0.2 M (pH 6.6)+
2.5 mLK3Fe(CN)61%
+1 mLextracto
Incubar
a 50ºC 30 min.
Atemperar+2.5 mL TCA
(10%) homogeneizar y
centrifugar 3000 rpm 10
min 10 º C
Homogeneizar
2.5 mL de sobrenadante +
2.5 mL de agua destilada
+ 0,5 mLFeCl3
Lectura absorbancia a 700 nm
El estandárdutilizadofueácidoascorbico(AA)
100 µl de extracto
+ 650µl de agua destilada
+ 50µl de reactivo FC+
+ Na2CO3 (4% )
La mezcla se mantuvo a 70ºC
con agitación 10 min
Tras refrigerar y homogeneizar
FICOERITRINA
0,1 g
de alga + 3 mL de tampón
fosfato (pH 6.0)
Centrifugación 10.000 rpm 5 min 5º C
Lectura del sobrenadante absorbancia a 455, 564,
592 nm
Lectura del sobrenadante
absorbancia 700 nm
Paralelamente se preparó la
curva patrón de floroglucinol (0 a 20 µl.ml-1 )
* Se repitió el protocoloañadiendo PVPP a los extractos
N2 líquido rotura del tejido
hasta la
extracción completa
POLIFENOLES
Actividad antioxidante (% barrido del radical libre)
Extracto(Metanólico
Extracto(Hidroalcohólico
SISTEMA NATURAL
Halopithis incurva
IMTA
Tabla%%Capacidad%antioxidante%expresados%como%EC50%(mg8ml%91)%de%los%extractos%de
especies%de%macroalgas%metanólicos%(METOH)%e%hidroalcohólicos%(ETOH%50%)(n=3%±%DE).
Especies
SI
S
T
E
M
A
N
A
T
U
R
A
L
IM
T
A
C. intertextum
C. racemosa
U. rígida
P. capillaceae
H. musciformis
G. dichotoma
H.incurva
L. majuscula
F. spiralis
C. abies-marina
C. intertextum
C. racemosa
U. rigida
P. capillaceae
H. musciformis
G. dichotoma
H.incurva
L. majuscula
F. spiralis
C. abies-marina
EC50 (mg·ml -1)
Extracto METOH
Extracto ETOH 50%
2.75 ± 0.46
3.00 ± 0.01
4.64 ± 0.91
1.88 ± 0.03
4.02 ± 0.02
19.27 ± 7.10
7.90 ± 0.04
11.68 ± 1.19
4.69 ± 0.01
2.47 ± 0.01
2.62 ± 0.02
2.48 ± 0.01
2.21 ± 0.02
2.22 ± 0.00
1.97 ± 0.03
2.03 ± 0.01
3.98 ± 0.19
1.87 ± 0.12
7.46 ± 1.26
15.40 ±1.89
15.24 ± 0.11
2.54 ± 0,01
1.56 ± 0.11
2.72 ± 0.11
2.52 ± 0.02
2.72 ± 0.04
1.45 ± 0.01
4.90 ± 0.06
9.71 ± 0.52
7.75 ± 0.17
6.54 ± 0.07
2.66 ± 0.04
3.52 ± 0.23
2.35 ± 0,01
2.11 ± 0,01
Tabla%.%Actividad%antioxidante%mediante%el%método%poder%reductor%en%los%%extractos%(metanólicos%e
hidroalcohólicos)%%correspondientes%a%las%especies%estudiadas(n=3%±%DE).
%
SI
ST
E
M
A
N
A
T
U
R
A
L
IM
T
A
Especies
C. intertextum
C. racemosa
U. rigida
P. capillaceae
H. musciformis
G. dichotoma
H.incurva
L. majuscula
F. spiralis
C. abies-marina
C. intertextum
C. racemosa
U. rigida
P. capillaceae
H. musciformis
G. dichotoma
H.incurva
L. majuscula
F. spiralis
C. abies-marina
Poder reductor
(equivalente de g acido ascórbico)
Metanólicos
Hidroalcoholicos
0.28 0.01
3.04 0.09
1.53 0.01
3.77 0.09
1.40 0.10
5.31 0.04
0.37 0.04
1.03 0.01
0.39 0.06
1.25 0.01
0.19 0.01
2.49 0.02
24.28 0.024
53.15 1.68
1.69 0.07
1.74 0.01
4.12 0.45
19.82 0.42
2.72 0.28
24.80 0.25
Metanólicos
0.18 0.02
3.30 0.01
1.60 0.20
0.83 0.01
0.32 0.02
0.37 0.01
2.30 0.04
1.16 0.10
5.00 0.04
3.40 0.02
Hidroalcohólicos
3.19 0.01
4.90 0.02
3.20 0.04
0.75 0.01
0.56 0.01
0.40 0.03
21.75 1.05
1.14 0.04
8.60 0.14
8.90 0.19
BIOACTIVE SUBSTANCES: 1. POLYSACCHARIDES
The$Polysacchahrides$of#Halopithys#incurva
have$inmmunostimulant$activity
BIOACTIVE SUBSTANCES: 2. POLYPHENOLS
Tabla Contenido de polifenoles totales valorado mediante el método FC y con el tratamiento PVPP ambos
valorados mediante el método FC en los extractos de las diez especies de macroalgas expresado como % de peso
seco y expresado(–) no detectado (n=3 ± DE)
SI
ST
E
M
A
N
A
T
U
R
A
L
IM
T
A
Especies
C.intertextum
C.racemosa
U.rigida
P.capillaceae
H.spinella
G.dichotoma
H.incurva
L.majuscula
F.spiralis
C.abies-marina
C.intertextum
C.racemosa
U.rigida
P.capillaceae
H.spinella
G.dichotoma
H.incurva
L.majuscula
F.spiralis
C.abies-marina
Compuestos fenólicos totales
(% masa seca)
1.10 ±
2.26 ±
1.07 ±
0.84 ±
0.75 ±
0.73 ±
4.86 ±
1.52 ±
3.07 ±
3.90 ±
0.01
0.04
0.00
0.00
0.00
0.02
0.00
0.01
0.00
0.00
0.96 ±
1.46 ±
0.54 ±
0.80 ±
0.65 ±
0.50 ±
3.54 ±
1.41 ±
1.11 ±
2.80 ±
0.00
0.01
0.00
0.01
0.00
0.00
0.02
0.00
0.00
0.02
Compuestos fenólicos totales
(% masa seca)PVPP
1.46 ± 0.00
2.19 ± 0.00
3.15 ± 0.00
0.91± 0.02
0.25± 0.01
2.04± 0.00
BIOACTIVE SUBSTANCES: 3. R-PHYCOERYTHRIN
Tabla Contenido de ficoeritrina(n=3 ± DE) en las especies de macroalgas rojas
expresado como mg·g PS-1.
SI
ST
E
M
A
N
A
T
U
R
A
L
IM
T
A
Especies
FE ( mg · g PS-1)
Halopithys incurva
0.03 ± 0.00
Pterecladiella capillaceae
0.13 ± 0.00
Grateloupia dichotoma
0.04 ± 0.00
Laurencia majuscula
0.08 ± 0.00
Hypnea spinella
0.02 ± 0.00
Especies
PE ( mg · g PS-1)
Pterocladiellacapillaceae
0.88 ± 0.01
Hypneaspinella
0.28 ± 0.01
Grateloupiadichotoma
0.19 ± 0.00
Halopithys incurva
0.42 ± 0.01
Laurencia majuscula
0.24 ± 0.02
Tabla.&Índices&de&correlación&&entre&la&actividad&antioxidante&detectada&mediante&el&ensayo&DPPH
en&(%)y&el&método&del&poder&reductor(equiv&mg&Vit&C)&y&los&polifenoles&valorados&mediante&dos
métodos&y&pigmentos&liposolubles&(clorofila&a&y&carotenoides&totales)&e&hidrosolubles&(ficoeritrina).
&
REGRESION LINEAL (R2)
SI
ST
E
M
A
N
A
T
U
R
A
L
Biomoléculas
Clorofilas (mg · g PS-1)
Carotenoides (mg · g PS-1)
Ficoeritrina (mg · g PS-1)
Polifenoles (%)
Polifenoles PVPP (%)
Biomoléculas
IM
T
A
Clorofilas (mg · g PS-1)
Carotenoides (mg · g PS-1)
Ficoeritrina (mg · g PS-1)
Polifenoles (%)
Polifenoles PVPP (%)
Ensayo DPPH
(% Barrido radicales libres)
Extracto
METOH Extracto ETOH50
Poder reductor
(equiv mg Vit C)
Extracto
Extracto
METOH
ETOH50
0.347
0.443
0.032
0.173
0.696
0.157
0.085
0.327
0.041
0.010
0.129
0.145
0.771
0.718
0.606
0.857
0.796
0.785
0.131
0.462
Extracto
METOH
0.1000
0.0701
0.8155
0.6415
0.1381
Extracto
ETOH50
6.2266e-5
0.0394
0.8327
0.5193
0.3585
Extracto
METOH
1.6247e-3
2.6724e-3
0.9237
0.6528
4.1188e-4
Extracto
ETOH50
9.9740e-5
0.0149
0.9232
0.7692
0.0476
[email protected]
s
THANK YOU FOR YOUR
ATTENTION