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Enfermedades limitantes
de la producción de heliconias
en los departamentos de Caldas,
Risaralda y Quindío
Protección agropecuaria,
nuestro compromiso por la paz
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Quejas, reclamos y sugerencias: línea gratuita 018000914517
E-mail: [email protected]
Boletín de Sanidad Vegetal 37
Enfermedades limitantes de la producción
de heliconias en los departamentos de
Caldas, Risaralda y Quindío
Nelly Patricia Villegas Urbano 1
John Jairo Alarcón Restrepo 2
José Roberto Galindo 3
1 IA. Contratista ICA Seccional Caldas
2 IA. MSc. Coordinador Diagnóstico Vegetal. ICA. Manizales
3 IA. MSc Fitopatología y MA en Protección de cultivos, Coordinador de Grupo Control y Erradicación de
Riesgos Fitosanitarios
ISBN: 958-8214-45-9
© Publicación del Instituto Colombiano Agropecuario, ICA
Tipo de publicación:
Código:
Edición:
Tiraje:
Boletín Técnico
07.02.36.06
Grupo Transferencia de Tecnología
1.000 ejemplares
PRODUCCIÓN EDITORIAL
Diagramación, impresión y encuadernación
www.produmedios.com
Tel.: 288 5338 - Bogotá, DC
El contenido de esta publicación es propiedad intelectual del Instituto Colombiano Agropecuario,
ICA. Prohibida su reproducción con fines comerciales.
Impreso en Colombia
Printed in Colombia
DEPARTAMENTOS DE CALDAS, RISARALDA Y QUINDÍO
Contenido
Pág.
Introducción ...................................................................5
Materiales y métodos ....................................................6
Resultados y discusión...................................................8
Identificación de Nematodos ................................... 17
Virus .................................................................... 18
Conclusiones .................................................................21
Referencias ...................................................................22
3
Introducción
E
n el orden Zingiberales existen aproximadamente 90 géneros y 2000
especies agrupadas en ocho familias, la mayoría de las cuales se
cultivan como plantas ornamentales; dentro de ellas las de mayor
importancia en este orden están: la familia Zingiberaceae, que cuenta con
más de 45 géneros y cerca de 1000 especies, cultivadas en especial en el
viejo mundo; y la familia Heliconiaceae, con unas 200 a 225 especies que se
distribuyen en forma natural en las regiones tropicales del mundo, en especial
Colombia, siendo el país con más especies, aproximadamente un centenar,
que se distribuyen por toda la geografía nacional, con notable preferencia por
la región Andina, en donde están presentes cerca del 75%.
La mayoría de las especies de Heliconias se encuentran en ambientes
húmedos y lluviosos, pero algunas pocas se pueden hallar en zonas secas.
Muchas de ellas habitan sitios abiertos, o con crecimiento secundario a lo
largo de carreteras, o influenciados por la dinámica de ríos o aberturas dentro
de los bosques. Se ha estimado que las Heliconias son más abundantes en
elevaciones inferiores a los 500 m, pero hay una mayor diversidad de especies
entre 500 y 1.400 m, son muy pocas las especies que crecen por encima de los
2.000 m de altitud (15).
A medida que aumentan las superficies sembradas de heliconias con fines
comerciales, se ha incrementado la presencia de enfermedades producidas
por diversos microorganismos, con pérdidas hasta de un 30% en el material
cultivado (10). Las investigaciones se han enfocado en temas diversos como
inventarios, taxonomía, ecología, distribución y clasificación de heliconias
que habitan en el país; careciendo de información e investigación precisa
sobre los microorganismos patogénicos que afectan las especies de este
género, estas limitaciones ocasionan pérdidas económicas, incremento en los
costos de producción y cierre de mercados internacionales.
5
ENFERMEDADES LIMITANTES DE LA PRODUCCIÓN DE Heliconias
Materiales y métodos
E
l trabajo de reconocimiento de enfermedades en el orden Zingiberales
en algunas especies de las familias Musáceae, Strelitziaceae,
Zingiberaceae y Heliconiaceae, se realizó en los departamentos
de Caldas, Risaralda y Quindío, en explotaciones comerciales de la zona.
Se analizó un total de 350 muestras en el laboratorio de fitopatología del
Instituto Colombiano Agropecuario ICA, en Manizales. La toma de muestras
se llevó a cabo mediante la recolección de material vegetal de hojas, raíces,
inflorescencias, seudotallos, rizomas y muestras de raíz y suelo; para la
evaluación de nematodos y las pruebas de virus se realizó un muestreo basado
en síntomas externos, con comprobación a través de la técnica de Elisa.
El reconocimiento de enfermedades se realizó en las siguientes especies
del orden Zingiberales: H. wagneriana cv Cream, H. wagneriana cv Red, H.
wagneriana cv Peterson, H. rostrata, H. bihai cv Red, H. bihai cv Lobster Claw,
H. orthotricha cv Red, H. orthotricha cv She, H. orthotricha cv Colombia, H.
stricta cv Lone lover, H. caribaea cv Jacquinni, H. stricta cv Las Cruces, H.
stricta cv Dwart Jamaican, H. stricta cv Fire Bird, H. caribaea cv Purpúrea, H.
caribaea cv Vulcano, H. caribaea cv Barbados, H. griggsiana, H. chartacaea
cv Sexy Pink, H. chartacaea cv Sexy Scarlet, Calathea crotalifera, Musa
coccinea, Alpinia purpurata, Strelitzia reginae y Alpinia pink.
Para la identificación de hongos se utilizó la metodología de Castaño- Zapata
y Del Río, (7); una vez observado el crecimiento de estructuras y micelio se
procedió a realizar la identificación de los hongos comparando las características
de las estructuras observadas con las descritas por Barnett y Hunter (3).
Para el diagnóstico de bacterias, se tomó material vegetal enfermo, se montó
en un portaobjetos y se observó el flujo bacterial en el microscopio, luego se
procedió a la tinción de Gram y el material restante se sometió a cámara
húmeda. Las bacterias obtenidas de los medios de cultivo se sometieron a
diferentes pruebas bioquímicas utilizando la metodología de Shaad (23),
además para ratificar la presencia de Moko (Ralstonia solanacearum) se
utilizó el kit de Agdia y pruebas de patogenicidad en diferentes variedades.
6
Para la evaluación de nematodos se utilizó la metodología de Araya y
Chávez (2), tomando muestras de suelo y raíces a una profundidad de 20
cm y a una distancia entre 20 cm del seudotallo; la extracción de nematodos
se realizó mediante la metodología de Castaño – Zapata y Del Río (7). Para
la cuantificación poblacional de nematodos se utilizó la metodología de
Figueroa (13).
Para el diagnóstico de virus en la familia Heliconiaceae y algunas especies
de las familias Musaceas, Strelitzias y Zingiberáceas, se empleó la prueba
serológica (DAS-ELISA) “Ezyme linked inmunoasorbent”, adaptada de
banano y plátano (Musa AAA y Musa AAB) con los kit de Elisa, realizando
el análisis por medio de espectrofotometría a 405 nm, en la cual se toman
como positivas aquellas muestras que registran el doble de la media de
A 405 de los controles negativos. Teniendo como referencia tres controles
negativos por placa, se evaluó la presencia de tres virus así: virus del rayado
del banano (BSV), virus del mosaico del pepino (CMV) y virus de las brácteas
del banano (BBrMV).
7
Resultados y discusión
L
os microorganismos identificados en las muestras analizadas se
encuentran en el Tabla 1. Los hongos con mayor incidencia en el
muestreo fueron: Fusarium sp., Pestalotia sp., Helminthosporium sp.
y Colletotrichum sp., mientras que Hendersonia sp. sólo se identificó en una
inflorescencia de H. wagneriana cv Red.
Tabla 1. Microorganismos patógenos encontrados en material
vegetal de especies de Heliconias, Musáceas, Zingiberáceas y
Strelitzias.
Especie
Rizoma
H. bihai cv Red
Fusarium sp.
Pseudotallo
Inflorescencia
Curvularia sp.
Virus BSV
H. bihai Aurea
H. bihai cv Lobster
Claw
Erwinia sp.
Fusarium sp.
Pestalotia sp.
Colletotrichum sp.
Rhizoctonia sp.
Botrytis sp.
Cordana sp.
Rhizoctonia sp.
Curvularia sp.
Colletotrichum sp.
Helminthosporium sp.
Fusarium sp.
Pseudomona sp.
Fusarium sp.
Rhizoctonia sp.
Hendersonia sp.
Colletotrichum sp.
Rhizoctonia sp.
Phomosis sp.
Diplodia sp.
Drechslera sp.
Curvularia sp.
Fusarium sp.
Rhizoctonia sp.
Fusarium sp.
Dreslera sp.
Nigrospora sp.
Pestalotia sp.
Diplodia sp.
Erwinia sp.
H. caribaea cv
Jacquinni
H. wagneriana cv
Red
H. wagneriana cv
Peterson
Hojas
Fusarium sp.
Pseudomona
sp.
continúa...
8
...sigue
Especie
Rizoma
Pseudotallo
Inflorescencia
Hojas
Fusarium sp.
Pestalotia sp.
Drechslera sp.
Nigrospora sp.
Colletotrichum sp.
Alternaria sp.
Curvularia sp.
Bipolaris sp.
Septoria sp.
Rhizoctonia sp.
H. stricta cv Lone
Lover
Colletotrichum sp.
Nigrospora sp.
Rhizoctonia sp.
Colletotrichum sp.
Giberella sp.
Glomerella sp.
Fusarium sp.
H. stricta cv Las
Cruces
Rhizoctonia sp.
Nigrospora sp.
Pestalotia sp.
H. stricta cv Dwart
Jamaican
Fusarium sp.
Nigrospora sp.
Aspergillus sp.
Diplodia sp.
Pestalotia sp.
H. wagneriana cv
Cream
Ralstonia
solanacearum
Fusarium sp.
Erwinia sp.
Xanthomona sp.
Virus BSV
H. stricta cv Tagami
H. orthotricha cv
She
Pseudomona
sp.
Erwinia sp.
Nigrospora sp.
Rhizoctonia sp.
Chaetomium sp.
Fusarium sp.
H. orthotricha cv
Red
Ralstonia
solanacearum
Pseudomona sp.
Colletotrichum sp.
Nigrospora sp.
Fusicladium sp.
H. orthotricha cv
Colombia
Cordana sp.
Giberella sp.
Fusarium sp.
Fusicladium sp.
Fusarium sp.
Rhizoctonia sp.
Colletotrichum sp.
Glomerella sp.
Cladosporium sp.
Fusarium sp.
Diplodia sp.
Rhizoctonia sp.
Glomerella sp.
Chaetomium sp.
Bipolaris sp.
Colletotrichum sp.
Cercospora sp.
Virus BSV
Ralstonia
solanacearum
Erwinia sp.
Rhizopus sp.
Fusarium sp.
Mycosphaerella
musicola
Virus CMV
Ralstonia
solanacearum
Erwinia sp.
Fusarium sp.
H. rostrata
Rhizoctonia sp
Ralstonia
solanacearum
H. caribaea cv
Purpurea
H. caribaea cv
Vulcano
continúa...
9
...sigue
Especie
Rizoma
Pseudotallo
Inflorescencia
Hojas
Pestalotia sp.
Colletotrichum sp.
Coniotyrium sp.
H. chartaceae
H. burleana
Colletotrichum sp.
Pestalotia sp.
H. psittacorum cv
Golden Torch
Virus BSV
H. griggsiana
Colletotrichum sp.
Pestalotia sp.
Rhizoctonia sp.
Mycosphaerella
musicola
BSV
Ralstonia
solanacearum
Fusarium sp.
Alternaria sp.
Curvularia sp.
Cercospora sp.
Alpinia purpurata
Alpinia pink
Strelitzia reginae
Fusarium sp.
Calathea crotalifera
Fusarium sp.
Etlinger elatior
Fusarium sp.
Musa coccinea
Ralstonia
solanacearum
Erwinia sp.
Colletotrichum sp.
Cordana sp.
Botrytis sp.
Pestalotia sp.
Capnodium sp.
Alternaria sp.
Fusarium sp.
Alternaria alternata
Colletotrichum sp.
Fusarium sp y CMV
Teniendo en cuenta los resultados obtenidos se puede considerar a Heliconia
wagneriana cv Cream, H. wagneriana cv Red y Heliconia rostrata las más
susceptibles al ataque de hongos, tanto en follaje como en inflorescencias.
El hongo Helminthosporium sp. según Maza, (19) causa la mancha de ojo
(Eyespot), se encontró afectando principalmente a H. wagneriana cv Peterson,
H. rostrata y H. orthotricha cv Red, destruye la superficie de la hoja y parte del
pseudotallo, lo que produce pérdidas considerables en la producción. La sintomatología producida por el patógeno consistió en manchas irregulares de color
café oscuro y con un halo clorótico de aproximadamente un milímetro de diámetro, que se amplían al coalescer, observándose lesiones con centro necrótico
con un borde grueso café oscuro y con halo clorótico (Figura 1) Stover (26).
Hongos como Pestalotia sp. y Colletotrichum sp., se encontraron asociados
ocasionando daños en el follaje y en las inflorescencias de Heliconia burleana
10
Figura 1. Lesiones en hojas de Heliconia wagneriana cv
Peterson causadas por el hongo Helminthosporium sp.
y Heliconia griggsiana. Los mayores daños en inflorescencias en Heliconia
stricta cv Lone Lover y Heliconia orthotricha cv Red fueron asociados con el
hongo Colletotrichum sp., produciendo manchas irregulares y deprimidas de
color negro, con halo de apariencia húmeda y con distribución en las brácteas
de la inflorescencia (Figura 2), igualmente el hongo afecta a las hojas produciendo manchas de color marrón, primordialmente en la nervadura principal
de la hoja. Colletotrichum sp. ha sido reportado afectando en mayor proporción a Heliconia wagneriana y H. orthotricha cv Fucsias, sobre todo cuando
están a libre exposición solar y con deficiente nutrición.
El Mal de Panamá causado por el hongo Fusarium oxysporum f. sp cubense
Smith, se encontró afectando rizomas de Alpinia purpurata y Etlinger elatior
Figura 2. Daño en inflorescencias de Heliconia latispata y H.
wagneriana cv Cream, afectadas por el hongo Colletotrichum sp.
11
(bastón del emperador). Se reconocen cuatro razas de este hongo, siendo la
raza 3, la que afecta especies del género Heliconia (21). Este hongo penetra a
través de las raicillas y rizomas dañados, propagándose de los haces vasculares
a otros sitios del rizoma y luego traslocándose a partes aéreas de la planta
(6). La diseminación del patógeno ocurre a través de la siembra de rizomas
infectados, movimiento de suelo, hojas contaminadas, raíces que crecen
alrededor de plantas enfermas, siendo el agua de escorrentía y riego el principal
diseminador entre áreas cercanas. El hongo sobrevive en su fase saprofítica en
el suelo, siendo favorecidos por alta humedad y lluvias frecuentes, situación que
permite al hongo sobrevivir indefinidamente en el suelo. Los órganos internos
presentan coloraciones amarillas, rojizas o púrpuras en los haces vasculares,
apareciendo los primeros síntomas en la vaina más externa del pseudotallo,
la cual se extiende hacia la vaina más interna (Figura 3). Los daños se van
acentuando progresivamente, siendo las hojas internas o nuevas, las últimas
que lo manifiestan (20). Es muy común observar el daño en inflorescencias por
Fusarium luego de presentarse un daño mecánico o una herida en brácteas,
siendo un factor predisponente para la colonización del hongo (Figura 4).
Figura 3. A. Rizoma de Heliconia bihai cv Lobster. B. y C.
Rizomas de Etlinger elatior afectados por Fusarium sp.
Alternaria sp. se encontró afectando a Heliconia wagneriana, presentándose
numerosas manchas de color blanco en los bordes de las hojas, que a medida
que avanzó la enfermedad se tornaron redondas o concéntricas, con márgenes
irregulares de color café oscuro de diferentes tamaños, rodeadas de un halo clorótico, las cuales al final coalescen, tomando un aspecto de quemazón (Figura
5A). Este hongo se observó solo en hojas con deficiencias de magnesio.
Botrytis sp. es un hongo parásito facultativo, con numerosos hospedantes
incluyendo malezas, es quizás uno de los hongos que causa más dificultades
en ornamentales, especialmente en poscosecha y está ampliamente distribuido
en diversos cultivos. El ataque del hongo es favorecido por temperaturas
12
Figura 4. Inflorescencia de Heliconia wagneriana cv Cream,
con manchas ocasionadas por Fusarium sp.
bajas, humedad relativa alta y duración del agua sobre la superficie de los
tejidos. Las conidias se desarrollan en la noche y se diseminan por el viento
y el agua en la mañana, cuando las temperaturas suben y la humedad baja.
Las esporas que han germinado rara vez penetran directamente los tejidos,
pero lo hacen a través de heridas (Elad, 1996).
Las inflorescencias de las heliconias afectadas por este hongo, presentan
manchas de diferentes tamaños, con bordes indefinidos y de color café oscuro
a negro, con necrosis en el centro de la lesión, distribuidos por toda el área de
la inflorescencia (Figura 5B).
Figura 5. A. Manchas producidas por Alternaria sp. en hojas de
Heliconia wagneriana cv Cream. B. Botrytis sp. en H. bihai cv
Lobster Claw
13
Mycosphaerella musicola o sigatoka amarilla se presentó en hojas de Heliconia
caribaea y H. platystachys, resultado que coincide con los de Madriz y colaboradores (17). El hongo produce manchas en forma oval con borde definido, centro de color marrón a negro, con un halo amarillo. Los síntomas varían según el
hospedante, edad de la planta y estadio de desarrollo de la enfermedad (Figura
6). La duración del ciclo de vida del agente causal de la Sigatoka amarilla varía
en función del hospedante y de las condiciones climáticas. Los factores climáticos que más inciden en la germinación de los conidios son: la presencia de
películas de agua, mientras que las ascosporas lo pueden hacer en humedades
relativas superiores al 95%. La germinación ocurre en 1-6 horas, dependiendo
de la temperatura, siendo la óptima 28 ºC, y a medida que aumenta la precipitación, aumenta el grado de infección en las hojas (4).
Figura 6. Hojas de H. platystachys y H. caribaea cv Purpurea,
afectadas por Mycosphaerella musicola
Cordana sp., se encontró afectando los follajes de Heliconia bihai Lobster,
H. orthotricha She y Alpinia pink. La presencia del patógeno es favorecida
por la alta humedad relativa, deficiente nutrición y altas temperaturas,
siendo el viento y el agua los principales diseminadores de las conidias. La
sintomatología observada en el follaje consistió en manchas de forma oval, las
cuales inicialmente tienen una coloración castaño claro con zonas concéntricas
y borde marrón, que con el tiempo aumentan de tamaño hasta unirse unas con
otras y ocasionar el secamiento parcial o total del limbo (Figura 7).
La bacteriosis producida por Erwinia paradisiaca (11), se encontró afectando
pseudotallos y rizomas de Heliconia caribaea. En daños iniciales se observa
14
Figura 7. Hojas de H. bihai con lesiones por el hongo
Cordana sp.
una quemazón en el borde de las hojas más viejas, similar a la ocasionada
por deficiencia de potasio o fósforo que avanza a toda la lámina foliar y
produce un amarillamiento general de la hoja (Figura 8A). La sintomatología
inicial en los pseudotallos consistió en manchas acuosas, translúcidas, de
color amarillo y finalmente rojizo a castaño oscuro, que afectan la parte
basal de la planta y producen volcamiento de algunas partes del sitio o todas
según la diseminación de la enfermedad (Figura 8B), con el tiempo la lesión
produce un olor fétido característico que atrae insectos, en especial picudos
que distribuyen la enfermedad en el cultivo (Figura 8C). Según Salazar (22),
Aranzazu y colaboradores (1), la principal causa de la enfermedad en plátano
y banano es un desequilibrio nutricional, especialmente la carencia de potasio
y boro, y entre los factores que aumentan la severidad de la enfermedad están
los largos períodos de sequía alternados con fuertes lluvias (11).
Figura 8. Síntomas típicos de Erwinia en Heliconia caribaea
cv Vulcano: A. Clorosis de hojas. B. Volcamiento de seudotallo.
C. Pudrición basal
15
La bacteria Ralstonia solanacearum E. F. Smith raza 2 se presentó en
seudotallos y rizomas de H. caribaea Vulcano, H. caribaea Purpurea, H.
griggsiana, H. orthotricha, H. rostrata, H. wagneriana Cream y Musa
coccinea, observándose en las variedades a lo largo del seudotallo líneas de
color marrón producto del taponamiento de los haces vasculares, síntomas
similares a los producidos en plátano y banano (Figura 9A); que en la medida
que avanza pudre o seca la hoja bandera (Figura 9B); en cuanto al daño en el
rizoma se produce un necrosamiento interno, algunas veces con producción
de exudado espeso y sin olor (Figura 9C).
Figura 9. Síntomas de moko Ralstonia solanacearum E. F.
Smith. en H. caribaea: A. Líneas de color marrón a lo largo del
seudotallo. B. Pudrición interna de la hoja bandera. C. Daño
interno en rizoma con necrosamiento
La bacteria puede permanecer viable en el suelo hasta 18 meses, de
acuerdo con las condiciones ecológicas y flora prevalente en cada área.
Su diseminación puede ocurrir por nematodos, insectos como picudos,
Apis, Trigona y Polystes, de igual manera, por el uso de herramienta sin
desinfestar provenientes de lotes afectados a plantas sanas, sin embargo,
los principales medios de transmisión de la enfermedad han sido las
semillas provenientes de plantas afectadas y las corrientes de agua. Entre
los hospedantes asintomáticos se tiene a Emilia sonchifolia (Diente león
rojo), Solanum nigrum (Hierba mora), Bidens pilosa (Amor seco), Browalia
americana (Teresita azul), Commelina sp. (Siempre viva) y Phyllantus
corcovadensis (Viernes santo) (20).
16
Identificación de Nematodos
En Colombia hay pocos estudios de reconocimiento y poblaciones que
realizan daño económico en Heliconias, sin embargo, se toman de referencia
las especies y poblaciones identificados en plátano y banano por pertenecer
al orden zingiberales.
Los nemátodos que se identificaron en las muestras de suelo y raíces
fueron: Meloidogyne sp., Helicotylenchus sp., Rotylenchus sp. y Tylenchus
sp., presentándose las mayores poblaciones de Meloidogyne sp. en Heliconia
bihai con 6000 nem/100 g de raíz y Helicotylenchus sp. en H. psittacorum
Golden torch con 4000 nem/100 g de raíz reportados por Speijer y De. Waele,
(25), como nematodos dañinos en cultivos de Musaceas (Tabla 2). En ninguno
de los muestreos se encontró Radopholus sp., considerado el nematodo que
ocasiona los daños más severos en cultivos de plátano y banano. Es de resaltar
que se presentaron poblaciones muy altas de nematodos saprofitos debido a
las altas aplicaciones de materia orgánica en las explotaciones evaluadas.
SUELO
ESPECIE
20 cm
RAÍZ
40 cm
20 cm
40 cm
H. wagneriana
8000 saprofitos
Negativo
2000 saprofitos
*
H. bihai
6000 saprofitos
Negativo
Negativo
*
H. bihai
6000 Meloidogyne
Negativo
Negativo
*
H. wagneriana
Negativo
Negativo
Negativo
*
H. stricta
6000 Rotylenchus
2000 saprofitos
Negativo
Negativo
*
H. wagneriana Cream
8000 saprofitos
Negativo
8000 saprofitos
*
H. psittacorum Golden torch
4000 Helicotylenchus
2000 saprofitos
-
*
H. caribaea Amarilla
2000 Tylenchus
2000 saprofitos
2000 Tylenchus
Negativo
*
H. orthotricha
*
2000 saprofitos
*
Alpinia purpurata (Ginger)
6000 saprofitos
*
*
*
Etlinger elatior (Bastón del
emperador)
2000 Rotylenchus sp.
*
H. caribaea Gold
*
H. chartacea Sexy pink
6000 Tylenchus
*
*
H. caribaea Llimon
*
*
* ausencia
17
*
6000 saprofitos
*
Según Davide (9), los parámetros de umbral económico para Meloidogyne
sp., están en 5000 nematodos en 100 g de raíz, y las poblaciones de la zona
fueron de 4400 a 7400 nemátodos en 100 g de raíz. Es necesario implementar
estrategias de manejo al cultivo, ya que el ataque de este nematodo puede
ocasionar deformaciones y pérdida en producción, una de las medidas de
control es el arreglo que se realiza en las raíces de los cormos antes de la
siembra (12).
Sikora y Schlosser (24) reportan en plátano para el género Helicotylenchus
daño con poblaciones superiores a 50.000. En el muestreo evaluado las
poblaciones fueron de 4.000 nematodos/100 g de raíz. El riesgo es que
adicionalmente al daño directo causado por el nematodo y el debilitamiento
del sistema radicular, crea un ambiente propicio para que ocurra el ataque de
hongos como Fusarium sp., y bacterias como Erwinia sp., Ralstonia sp., las
cuales tienen la capacidad de afectar la región vascular de la raíz y ocasionar
la muerte de las plantas (25) (19).
Virus
Los resultados fueron los siguientes: se encontraron ocho muestras positivas
de 50 analizadas para BSV en Heliconia shumaniana, H. griggsiana, H.
rostrata, H. stricta Tagami, H. bihai cv Aurea, H. psittacorum cv Golden Torch
y H. stricta Quito Gold. Los rangos de diferencia respecto a la lectura de los
controles negativos se presentan en la siguiente tabla:
Lectura de absorbancia a
405 nm
Diferencia respecto a los
controles negativos 0.461–X
H. shumaniana
0.748
0.287
H. griggsiana
0.665
0.204
H. stricta cv Tagami
0.579
0.118
H. stricta Quito Gold
0.663
0.202
H. rostrata
1.893
0.914
H. latispatha
1.728
0.773
H. psittacorum cv Golden Torch
1.309
0.222
H. bihai cv Aurea
1.809
0.857
Muestra
La diferencia más alta se encontró en Heliconia rostrata, quien superó a los
controles negativos en 0.914 nm.
18
Dos virus son actualmente reconocidos como problemas significativos en
plátano y banano en la región: virus del rayado del banano (Banana streak
virus, BSV y el virus del mosaico del pepino (Cucumber mosaic virus, CMV).
Existen reportes de otros virus, pero estos aún no han sido caracterizados (14).
De los virus encontrados en el orden de las zingiberales están: el BSV (Banan
Streak Virus) que es transmitido entre plantas por el insecto Planococcus
citri, conocido como “cochinilla” o “chinche harinosa” de los cítricos. En las
plantas infectadas se observó un rayado clorótico, el cual inicialmente forma
rayas pequeñas y aisladas que adquieren distintas tonalidades desde amarillo
pálido hasta anaranjado y luego produce necrosis en las hojas; los síntomas
varían fuertemente durante el transcurso del año. Una o dos hojas pueden
emerger con síntomas pronunciados, seguido por una sucesión de hojas con
síntomas inconspicuos o sin ellos, las cuales contienen niveles detectables
de partículas virales. Esta periodicidad en la expresión de síntomas está
relacionada con las fluctuaciones de la temperatura y los síntomas son
más fáciles de observar en plantaciones localizadas en áreas con marcados
periodos de variación de temperatura, que en áreas donde este factor climático
permanece constante a través de todo el periodo de desarrollo del cultivo (18)
(Figura, 10). Este virus solo se transmite a través de la semilla y mediante
propagación vegetativa (5). La presencia del virus BSV en Heliconias es el
primer reporte a nivel regional.
Para el análisis de CMV resultó positiva la muestra de Musa coccinea, la
cual presentó una diferencia promedio de 0.404, muy alta con respecto a los
otros valores, lo que indica elevada concentración de partículas virales. La
infección ocasionada por este virus produce la pérdida de color de la hoja por
parches, mosaico foliar, amarillamiento, pudrición del seudotallo y necrosis
de la última hoja. A medida que la enfermedad progresa, las hojas emergen
deformadas, tanto que las márgenes foliares en lugar de ser curvadas,
Figura 10. A. Heliconia shumaniana. B. H. caribaea. C. Heliconia
caribaea chartreuse afectadas por el virus BSV
19
presentan una ondulación irregular a menudo con parches de tejido necrótico,
son de carácter sistémico y originan clorosis intervenal más visible a trasluz
(Figura 11). Para BBrMV y BBTV no se encontró ninguna muestra positiva en
muestras visuales ni en laboratorio.
Figura 11. Mosaico característico de CMV que se presenta en
Musa coccinea
El problema de plantas infectadas con virus radica en que algunos de los
materiales producidos son utilizados como semilla en otras regiones, lo que
incrementa la dispersión del patógeno en el campo; la semilla usada por el
agricultor no es seleccionada y puede transmitir el BSV a través del cormo,
como lo indican Danniels y colaboradores (8) y Belalcázar y colaboradores (5).
20
Conclusiones
• Falta incentivar a los agricultores de la zona para que usen material certificado y establecer medidas legislativas para distribuir el material de siembra.
• Las pruebas serológicas DAS ELISA y visuales confirmaron la presencia de
CMV, BSV.
• Los fitonematodos son una amenaza y representan un potencial
destructivo considerable para los cultivares comerciales, su efecto debe ser
observado, evaluado y analizado con detalle en los sistemas productivos;
se debe desplegar mayor uso de análisis nematológico para el manejo de
poblaciones de campo.
• Las altas poblaciones de nematodos saprofitos encontrados se deben a la
materia orgánica aplicada en los cultivos.
• H. wagneriana y H. caribaea son las más susceptibles al ataque de
nematodos, H. wagneriana Amarilla y H. orthotricha cv Fucsias son más
susceptibles al ataque de Collettrichum sp. Alpinia purpurata (Ginger) y
Etlinger elatior (bastón del emperador) son propensas al mal de Panamá.
Para la zona se encontró ataque de Moko en especies de la familia
Zingiberaceae como Musa coccinea, H. caribaea, H. orthotricha y H.
griggsiana. Cercospora sp. se encontró afectando a H. rostrata y Alpinia
purpurata. La Heliconia caribaea Vulcano es la más susceptible al ataque
de bacteriosis producida por Erwinia sp. Botrytis sp. afecta especialmente
en poscosecha.
• De acuerdo con las incidencias y las poblaciones de nematodos encontrados
en la zona, se estima la importancia relativa de los géneros Helicotylenchus,
Meloidogyne sp. y Pratylenchus sp.
• Se deben seguir realizando estudios regionales en nematodos para poder
conocer las poblaciones que causan nivel de daño económico y así aplicar
medidas de manejo integrado en el cultivo.
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