estudio de la variabilidad epigenética y de expresión transcripcional
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estudio de la variabilidad epigenética y de expresión transcripcional
Alumno Expositor: Vicente Paul Armenta Pérez Líder: Dra. en C. Clara Patricia Ríos Ibarra ESTUDIO DE LA VARIABILIDAD EPIGENÉTICA Y DE EXPRESIÓN TRANSCRIPCIONAL INDUCIDA POR CETUXIMAB EN CÁNCER DE COLON: EGFR Y SOCS-1 COMO BIOMARCADORES DIAGNÓSTICO Arvizu-Gutierrez LA1, Peña-Diaz JA1, Ortiz-Lopez R2, Salinas-Santander M3, Armenta-Perez VP1, Patiño-Valenzuela S1, Rios-Ibarra CP1. 1Departamento de Bioingenierías del Tecnológico de Monterrey, campus Guadalajara. 2Centro de Investigación y Desarrollo en Ciencias de la Salud de la Universidad Autónoma de Nuevo León. 3Facultad de Medicina de la Universidad Autónoma de Coahuila. RESUMEN ANTECEDENTES. El cetuximab es un anticuerpo IgG1 monoclonal quimérico cuyo blanco es el receptor del factor de crecimiento epidérmico (EGFR). La sobre-expresión del EGFR está relacionada con un pobre pronóstico para cáncer de colon, reduciéndose la supervivencia y aumentando el riesgo de metástasis. Aproximadamente el 65 % de los tumores colorrectales tienen un genotipo KRAS no mutado, pero desafortunadamente sólo el 60-70 % de ellos presentan una respuesta al tratamiento efectiva. Lo anterior, hace resaltar la importancia de analizar otros genes que pudiesen estar involucrados en la respuesta al tratamiento anti-EGFR, como las vías de señalización intracelular alternativas tales como PIK3 y JAK. Con lo anterior, se precisaría un conjunto de biomarcadores que permitieran seleccionar adecuadamente a los pacientes que son más sensibles a los tratamientos anti-EGFR. Lo anterior, se traduciría en una medicina personalizada de menor costo y mayor efectividad. OBJETIVOS. Analizar el efecto epigenético y transcripcional de cetuximab sobre EGFR y SOCS-1 en Cáncer de Colon (in vitro). MATERIAL Y MÉTODOS. Se cuantificaron los niveles de RNA de SOCS-1 (supresor de tumor) y EGFR (oncogen) en células CaCo-2 tratadas con Cetuximab, para determinar si existe un del tratamiento sobre la expresión de los blancos génicos seleccionados y el patrón de metilación a nivel de su promotor génico. RESULTADOS Y CONCLUSIONES. A las 72 horas post-tratamiento con cetuximab, el marcador positivo representado por EGFR disminuye su expresión a nivel de RNA (~99%, p<0.001) al igual que SOCS-1 (~76%, p=0.008); adicionalmente, hemos realizado el procesamiento de las muestras de DNA con bisulfito de sodio (control vs tratamiento), para evaluar si existe un cambio epigenético en presencia del cetuximab; a la fecha contamos con los resultados derivados de secuenciación correspondientes para EGFR (fragmento de la región promotor), cuyo resultado presenta la metilación en un único nucleótido a las 72 hr post-tratamiento. INTRODUCCIÓN El cáncer colorrectal es la tercera malignidad más común en hombres y la segunda más común en mujeres. Es el tercer tipo de cáncer con mayor número de fallecimientos, con un 8% del total (Wu, 2010). Actualmente, se han desarrollado terapias dirigidas molecularmente a los receptores que promueven el desarrollo de este padecimiento, tal es el caso del Cetuximab. El Cetuximab es un anticuerpo monoclonal IgG1 químerico que se une al dominio extracelular de EGFR (Epidermal Growth Factor Receptor)(Garrett & Eng, 2011) (Figura 1). Cetuximab tiene mayor afinidad que los ligandos naturales (EGF, TGF-α, anfirregulina y epirregulina) del EGFR, por lo que inhibe de forma competitiva los efectos de activación y mecanismos de señalización Gomez et al., 2013). Alumno Expositor: Vicente Paul Armenta Pérez Líder: Dra. en C. Clara Patricia Ríos Ibarra Figura 1. Estructura de Cetuximab. Está compuesto por las cadenas pesadas y ligeras IgG1 humanas (barras rojas) y las regiones Fv antiEGFR murino (barras azules). Se ha demostrado que un 60-80% de los pacientes con CCR tienen mayor expresión del receptor EGFR, también conocido como HER-1 o ErbB1 (Chee & Sinicrope, 2010). Esto debido a que la activación del receptor promueve la proliferación celular, diferenciación, migración y adhesión, por lo que su sobrerregulación fomenta procesos relativos al crecimiento tumoral, como la angiogénesis, inhibición de apoptosis, invasividad y metástasis (Wu, Charabaty, Pishvaian & Marshall, 2010). Tras su aprobación la FDA en 2004, Cetuximab ha sido usado para tratar el cáncer colorrectal metastásico ya que se ha reportado una mayor supervivencia en las pruebas clínicas (Brand, Iida & Wheeler, 2011). Sin embargo, el anticuerpo no es activo en todos los pacientes, ya que estudios recientes demuestran que los pacientes con mutaciones en KRAS generan resistencia (Misale et al., 2012). MECANISMO DE ACCIÓN Tras la unión de Cetuximab al EGFR, se bloquea la señalización intracelular y disminuye la proliferación, angiogénesis y diferenciación. Además de estimular la apoptosis y bloquear la liberación de proteasas y sus inhibidores, por lo que inhibe a su vez la metástasis. También inhibe la producción de factores angiogénicos y estimula la inmunidad antitumoral a través de la activación del complemento y la citotoxicidad dependiente de anticuerpos (Holubec et al., 2012) (Figura 2). En ausencia de Cetuximab, los ligandos naturales se unen a EGFR y permiten la formación de homodímeros o heterodímeros con los demás miembros de la familia ErbB (ErbB2/neu, ErbB3/HER3 y ErbB4/HER4, lo cual permite la autofosforilación del dominio intracelular a través de actividad tirosina cinasa que posteriormente activan dos principales rutas de señalización: KRAS/RAS/ERK y PI3K/AKT, las cuales son responsables de estimular la actividad cancerígena (Mlcochova, Faltejskova, Nemecek, Svoboda & Slaby, 2013). Alumno Expositor: Vicente Paul Armenta Pérez Líder: Dra. en C. Clara Patricia Ríos Ibarra Figura 2. Principales rutas de señalización oncogénicas de EGFR. Entre las vías metabólicas reguladas por EGFR se encuentran Angiogénesis, Antiapoptósis, Proliferación Celular y Metástasis. Como se mencionó, la activación de EGFR conlleva a la estimulación del oncogén KRAS que siguiendo su cascada de señalización, activa el oncogén BRAF, una cinasa que una vez activada fosforila la también cinasa MEK1/2 (mitogen-activated protein-kinase kinase). Ésta última a su vez activa ERK (extracelular signal-regulated kinase), la cual tiene mayor variedad de sustratos, en su mayoría factores de transcripción que participan en la respuesta génica (Roskoski, 2012). La otra ruta PI3K, puede ser activada por KRAS o por el mismo EGFK. PI3K activa las cinasas AKT (Vakt murine thymoma viral oncogene homolog 1) y posteriormente a mTOR (mammalian target of rapamycin), la cual activa proteínas relacionadas con el ciclo celular y factores de transcripción que participan en el proceso de tumorigénesis. La desregulación de esta ruta lleva a inhibición de apoptosis, proliferación celular, angiogénesis y migración (Sood et al., 2012). En esta ruta, PTEN es un supresor de tumores importante ya que inhibe la función de PI3K y regula de forma negativa la fosforilación de AKT (Roock, Vriendt, Normanno, Ciardiello & Tejpar, 2011). Otras rutas secundarias que promueven el cáncer son las de la PKC (protein kinase C) y (STAT Signal Transducer and Activator of Transcription); por otra parte, cabe señalar que SOCS-1 es un supresor de tumor, cuyos cambios epigenéticos han sido asociados a efectos anti-tumorales en otros tipos de cáncer como hepatocarcinoma (Chu,2010). DOSIS Y EFECTOS SECUNDARIOS Normalmente el medicamento se administra una vez a la semana, las dosis máxima aprovada por el FDA es de 400 mg/m2 en infusiones que duran aproximadamente dos horas. Para las siguientes semanas la dosis se debe reducir hasta 250 mg/m2. (DrugBank, 2011). No obstante, Hubbard, M. (2013) determinó que las dosis óptima libre de toxicidad se alcanza a una concentración de 500 mg/m2. Es importante notar que el tiempo máximo que un paciente puede recibir este tratamiento es de 16 semanas, una vez pasado este tiempo; el paciente debe suspender el tratamiento, y se debe asesorar para una cirugía con objetivo de liberar los tumores en el hígado. Cabe destacar que antes de iniciar el tratamiento, es necesario realizar un estudio para verificar que no existan alergias o reacciones secundarias al medicamento, para ello se utiliza una dosis de Alumno Expositor: Vicente Paul Armenta Pérez Líder: Dra. en C. Clara Patricia Ríos Ibarra 20 mg. También se recomienda que cada individuo se suministre con 50 mg de difenhidramina por vía intravenosa a manera de pretratamiento, ya que actúa como antihistamínico, sedante, antiemético (previene vómito), antitusivo (previene la tos) y anticolinérgico (inhibe el neurotransmisor acetilcolina). Después de una dosis, la concentración en el suero de Cetuximab es aproximadamente de 184 g/mL, y la vida media del mismo es de aproximadamente 97 horas. Para las sesiones de refuerzo de 250 mg/m2 la concentración máxima fue de 140 g/mL. A partir de la tercera semana, ya se pueden observar concentraciones del medicamento en estado estable en valores aproximados de 41 y 85 g/mL (DrugBank, 2011). En una investigación se comparó la eficacia que podría tener el Cetuximab como terapia de cáncer colorrectal, para ello se realizó un muestreo con 7,954 pacientes; donde aproximadamente la mitad tuvo un tratamiento sin Cetuximab mientras que la otra sí lo tenía. Los resultados obtenidos indican que el tratamiento puede mejorar la supervivencia en 11% y reduce la progresión del tumor en por lo menos 29% (Liu, 2010). También se ha demostrado que tiene un efecto potenciado contra la formación de tumores cuando se usa junto a un fármaco citotóxico en líneas celulares de cáncer de colón (Correale, 2010). Se analizaron 4 líneas celulares de cáncer colorrectal bajo tratamiento de Cetuximab en conjunto con Rapamicina, los resultados indicaron que el cotratamiento con ambos fármacos potencia la citotoxicidad del Cetuximab, al inhibir las cascadas de señalización de mTOR. (Chen, W. 2014). En un estudio realizado por Ocvirk (2010) se analizaron 31 pacientes con cáncer colorrectal metastásico que fueron tratados con Cetuximab en combinación con quimioterapia. Los resultados referentes a la evaluación de efectos secundarios mostraron que 6 pacientes presentaron erupciones cutáneas de grado 3, 16 pacientes con grado 2 y 9 pacientes con erupciones de grado 1. También se observó en un grupo de pacientes la presencia de piel seca, prurito, fisuras cutáneas, paroniquia y conjuntivitis. Otro efecto secundario del medicamento es la paroniquia, la cual es una infección que se caracteriza por rodear a la uñas con inflamación y daño a la cutícula. Este sólo se presenta en aproximadamente 12% de los casos y se manifestó durante todo el periodo que duraba el tratamiento (Rodríguez-Murphy et al., 2011). El 3.5% de la población tiene predisposición a presentar reacciones alérgicas severas, donde se recomienda parar la terapia, estas se caracterizan por la anafilaxia la cual es una reacción inmunitaria rápida y potencialmente mortal, y uno de los principales síntomas es salpullidos, inflamación de la garganta, caída de presión y comezón. Otros efectos secundarios de los cuales se deben cuidar los pacientes con este padecimiento es que el tratamiento pude causar hipersensibilidad a tratamientos como adrenalina, antihistamínicos y corticosteroides. Por último, también se ha reportado efectos secundarios como fiebre, nausea, vómitos, dolores de cabeza, mareo y disnea (dificultad para respirar). Si se recibe el tratamiento de Cetuximab en conjunto con otras terapias y en combinación con otros tratamientos como el 5-fluoracil (5-FU), ácido folínico u oxiplatino, los efectos secundarios pueden incrementar dependiendo del fármaco utilizado. Por ejemplo, si se utiliza alguna terapia basada en platino puede haber reducción del conteo de glóbulos blancos, lo cual puede ocasionar infecciones que pueden llegar a ser mortales, inflamación, diarrea, reacciones en la piel, fiebre, cansancio; en caso de presentar la mayoría de estos síntomas, es vital reportar al médico lo antes posible (NICE, 2012). Asimismo, la conjugación de Cetuximab con nanopartículas de oro de 14 nm promueve e incrementa la actividad citotóxica y antitumoral al bloquear las vías de señalización de EGFR, pero incrementa la tasa apotótica en células sanas. (Joseph M.M., 2013). Alumno Expositor: Vicente Paul Armenta Pérez Líder: Dra. en C. Clara Patricia Ríos Ibarra MATERIAL Y MÉTODOS Cultivo Celular y Tratamiento con Cetuximab Se incubó a 37°C y 5% CO2 hasta obtener 90% de confluencia. Para realizar la exposición al tratamiento, se sembraron 40,000 células Caco-2 de cáncer de colon en placas de 24 pozos con ADMEM y 2 % de SBF, a una concentración de 20 ug/mL de cetuximab. Extracción de RNA Total Se realizó la extracción del RNA total de las células Caco-2 post-tratamiento con cetuximab, utilizando Trizol y cloroformo; posteriormente se precipitó el RNA con isopropanol, se lavó con etanol al 70% y recosntituyó con H20-DEPC+inhibidores de RNAsas para ser finalmente almacenado a -80°C hasta su conversión a cDNA. Retrotranscripción (RT-PCR) Se retrotranscribieron las muestras de RNA utilizando MMLV, previo a su análisis cuantitativo mediante PCR en tiempo real; los productos de cDNA se almacenaron a -20°C. PCR en Tiempo Real (qPCR) En las tablas se presenta los reactivos en la reacción y las condiciones de ciclos de la PCR. Reactivo Sybr Green Agua DEPC Primer foward 40 mM Primer reverse 40 mM cDNA 10 ng/uL Paso 1 Paso 2 Paso 3 Paso 4 Cantidad (μL) 10 7 1 1 1 Ciclos de PCR 50°C - 2´ 95°C - 10´ 95°C - 15” 60°C - 1´ Repetir 45 veces paso 3 y 4 ANÁLISIS EPIGENÉTICO: transformación de citocinas en uracilos y secuenciación Se extrajo el DNA total de células Caco-2 post-tratamiento con cetuximab y posteriormente fue tratado con bisulfito de sodio y analizado por secuenciación para identificar los cambios de metilación en la región del promotor de EGFR y SOCS-1. ANÁLISIS ESTADÍSTICO Los experimentos se realizaron por triplicado y las variables fueron evaluadas mediante ANOVA de una vía y la prueba de Dunnet. Las diferencias se consideraron significativas con valor de p ≤0.05. Alumno Expositor: Vicente Paul Armenta Pérez Líder: Dra. en C. Clara Patricia Ríos Ibarra RESULTADOS VIABILIDAD CELULAR. Mediante un ensayo de azul alamar se confirmó que no existiera un efecto citotóxico con 20 ug/uL de cetuximab en células de cancer de colon, de acuerdo a la literatatura y encontrando equivalencia en nuestros resultados (Figura 3). Figura 3. A una concentración de 20 ug/mL no se observa efecto citotóxico de cetuximab en células de cáncer de colon a los 3 distintos tiempos de exposición (24, 48 y 72 hr). CUANTIFICACIÓN DE LOS NIVELES DE EXPRESIÓN DE RNA DE EGFR Y SOCS-1. Para llevar a cabo la cuantificación de la expresion mediante PCR en tiempo real del RNA para EGFR y SOCS-1 en células Caco-2, se estandarizó el método realizando una curva logarítmica con 10, 100 y 1000 ng de cDNA, para seleccionar la candidad necesaria de éste para la reacción; posteriormente se verificó la especificidad de los oligonucleótidos validando las curvas de disociación (melting curve) (Figura 4). Figura 4. Curvas de disociación para la validación de la especificidad de los oligonucleótidos utilizados en la reacción de PCR en tiempo real con Sybr Green. Alumno Expositor: Vicente Paul Armenta Pérez Líder: Dra. en C. Clara Patricia Ríos Ibarra Nosotros observamos un descenso estadísticamente significativo para EGFR y SOCS-1 a las 72 hr post-tratamiento con cetuximab (Figura 5) (Figura 6). Figura 5. SOCS-1 disminuye su expresión a nivel de RNA (~76%, p=0.008) a las 72 hr post-tratamiento con cetuximab vs el control negativo. Figura 6. EGFR disminuye su expresión a nivel de RNA (~99%, p<0.001) a las 72 hr post-tratamiento con cetuximab vs el control negativo. SECUENCIACIÓN DE EGFR-PROMOTOR Al llevar a cabo la secuenciación de un fragmento correspondiente a una región del promotor génico de EGFR, a partir de DNA aislado de células expuestas a cetuximab durante 72 hr, se observó la metilación de una única citosina: Negativo 121 GTGGAA -TGCGTTCGGCGGCGGTCGTCGTCGTTTAGACGAAATTT--GTTTWT--GGTGCGACRK Cetuxibab 121 GTGGAAATGCGTTCGGCGGCGGTCGTCKTCGTTTAGACGAA-TTTTTGTTCTTTCGGTGCGTCKG Alumno Expositor: Vicente Paul Armenta Pérez Líder: Dra. en C. Clara Patricia Ríos Ibarra CONCLUSIONES PRELIMINARES En la línea celular CaCo-2, cetuximab no es citotóxica a una concentración de 20 ug/mL. Para corroborar la especificidad de cada oligonucleótido, se obtuvo la curva de fusión (melting curve) de la cual se derivaron picos únicos para EGFR, SOCS-1 y Actina (gen constitutivo, con el cual fueron normalizados los resultados de PCR en tiempo real para obtener los valores de ΔΔCt). Con respecto a la literatura, CaCo-2, es una línea celular con respuesta positiva al tratamiento con cetuximab; en nuestro estudio, a las 72 hr post-tratamiento, el marcador positivo representado por EGFR disminuye su expresión a nivel de RNA (~99%, p<0.001) al igual que SOCS-1 (~76%, p=0.008); adicionalmente, hemos realizado el procesamiento de las muestras de DNA con bisulfito de sodio (control vs tratamiento), para evaluar si existe un cambio epigenético en presencia del tratamiento; a la fecha contamos con los resultados derivados de secuenciación correspondientes para EGFR (fragmento de la región promotor), cuyo resultado presenta la metilación en un único nucleótido a las 72 hr post-tratamiento. Analizar diferentes genotipos en pacientes con cáncer de colon y correlacionar su perfil de expresión transcripcional con el perfil de metilación, para implementar herramientas de pronóstico de respuesta al tramiento a cetuximab y transferirlas a cualquier otro agente farmacológico con capacidad hipo o hipermetilante. BIBLIOGRAFÍA 1. Brand, T., Iida, M., & Wheeler, D. (2011). Molecular mechanisms of resistance to the EGFR monoclonal antibody cetuximab. Cancer Biology & Therapy, 11(9), 777-792. http://dx.doi.org/10.4161/cbt.11.9.15050. 2. Chee, C., & Sinicrope, F. (2010). Targeted Therapeutic Agents for Colorectal Cancer. Gastroenterology Clinics Of North America, 39(3), 601-613. http://dx.doi.org/10.1016/j.gtc.2010.08.017. 3. Chen, W., Hu, Q. D., Xia, X. F., Liang, C., Liu, H., Zhang, Q., Liang, T. B. (2014). Rapamycin enhances cetuximab cytotoxicity by inhibiting mTOR-mediated drug resistance in mesenchymal hepatoma cells. Cancer Biol Ther, 15(8), 992-999. doi:10.4161/cbt.29113. 4. Chu PY1, Yeh CM, Hsu NC, Chang YS, Chang JG, Yeh KT. Epigenetic alteration of the SOCS1 gene in hepatocellular carcinoma. Swiss Med Wkly. 2010 Jul 15; 140:w13065. 5. Correale, P., Marra, M., Remondo, C., Migali, C., Misso, G., Arcuri, F. P., . . . Caraglia, M. (2010). Cytotoxic drugs up-regulate epidermal growth factor receptor (EGFR) expression in colon cancer cells and enhance their susceptibility to EGFR-targeted antibody-dependent cell-mediated-cytotoxicity (ADCC). Eur J Cancer, 46(9), 1703-1711. doi:10.1016/j.ejca.2010.03.005. 6. Drug Bank. (2011, Julio 31). Cetuximab. Recuperado el Noviembre 2012 de: http://www.drugbank.ca/drugs/DB00002. 7. Garrett, C., & Eng, C. (2011). Cetuximab in the treatment of patients with colorectal cancer. Expert Opinion On Biological Therapy, 11(7), 937-949. http://dx.doi.org/10.1517/14712598.2011.582464 8. Gomez, D., De Rosa, A., Addison, A., Brooks, A., Malik, H., & Cameron, I. (2013). Cetuximab therapy in the treatment of metastatic colorectal cancer: The future frontier?. International Journal Of Surgery, 11(7), 507-513. http://dx.doi.org/10.1016/j.ijsu.2013.04.014. Alumno Expositor: Vicente Paul Armenta Pérez Líder: Dra. en C. Clara Patricia Ríos Ibarra 9. Holubec, L., Liska, V., Matejka, V.M., Fiala, O., Dreslerova, J., & Mrazkova, P.l.. The role of cetuximab in the treatment of metastatic colorectal cancer. Anticancer Res 32,4007-11. 10. Hubbard, J. M., & Alberts, S. R. (2013). Alternate dosing of cetuximab for patients with metastatic colorectal cancer. Gastrointest Cancer Res, 6(2), 47-55. 11. Joseph, M. M., Aravind, S. R., Varghese, S., Mini, S. & Sreelekha, T. T. (2013). PST-Gold nanoparticle as an effective anticancer agent with immunomodulatory properties. Colloids Surf B Biointerfaces. 104, 32–39. 12. Misale, S., Yaeger, R., Hobor, S., Scala, E., Janakiraman, M., & Liska, D. et al. (2012). Emergence of KRAS mutations and acquired resistance to anti-EGFR therapy in colorectal cancer. Nature. http://dx.doi.org/10.1038/nature11156 13. Mlcochova, J., Faltejskova, P., Nemecek, R., Svoboda, M., & Slaby, O. (2013). MicroRNAs targeting EGFR signalling pathway in colorectal cancer. Journal Of Cancer Research And Clinical Oncology, 139(10), 1615-1624. http://dx.doi.org/10.1007/s00432-013-1470-9 14. National Institute for Health and Clinical Excellence. (2012). Cetuximab for the first-line treatment of metatastic colorectal cancer. Nice Technology. 15. Ocvirk, J., & Cencelj, S. (2010). Management of cutaneous side-effects of cetuximab therapy in patients with metastatic colorectal cancer. J Eur Acad Dermatol Venereol, 24(4), 453-459. doi:10.1111/j.1468-3083.2009.03446.x. 16. Rodríguez-Murphy, E., Villanueva-Herraiz, S., Ortega-García, M., Pérez-Feliu, A., LópezMontenegro Soria, M., & Camps-Herrero, C. (2011). Toxicidad cutánea asociada a cetuximab en cáncer colorrectal metastásico. Farmacia Hospitalaria, 35(3), 114-120. http://dx.doi.org/10.1016/j.farma.2010.10.004. 17. Roock, W., Vriendt, V., Normanno, N., Ciardiello, F., & Tejpar, S. (2011). KRAS, BRAF, PIK3CA, and PTEN mutations: implications for targeted therapies in metastatic colorectal cancer. The Lancet Oncology, 12(6), 594-603. http://dx.doi.org/10.1016/s14702045(10)70209-6. 18. Roskoski, R. (2012). ERK1/2 MAP kinases: Structure, function, and regulation. Pharmacological Research, 66(2), 105-143. http://dx.doi.org/10.1016/j.phrs.2012.04.005 19. Sood, A., McClain, D., Maitra, R., Basu-Mallick, A., Seetharam, R., & Kaubisch, A. et al. (2012). PTEN Gene Expression and Mutations in the PIK3CA Gene as Predictors of Clinical Benefit to Anti-Epidermal Growth Factor Receptor Antibody Therapy in Patients With KRAS Wild-Type Metastatic Colorectal Cancer. Clinical Colorectal Cancer, 11(2), 143-150. http://dx.doi.org/10.1016/j.clcc.2011.12.001. 20. Wu, C., Charabaty, A., Pishvaian, M., & Marshall, J. (2010). Molecularly Targeted Therapy for Metastatic Colon Cancer: Proven Treatments and Promising New Agents. Curr Colorectal Cancer Rep, 6(4), 193-198. http://dx.doi.org/10.1007/s11888-010-0061-2.