“PROPAGACIÓN BOTANICA DE Annona muricata L. “Guanabana

Transcripción

UNIVERSIDAD NACIONAL DE LA
AMAZONIA PERUANA
FACULTAD DEAGRONÓMIA
ESCUELA DE FORMACION PROFESIONAL DE AGRONOMÍA
“PROPAGACIÓN BOTANICA DE Annona muricata L.
“Guanabana” BAJO CUATRO SUSTRATOS EN IQUITOS PERÚ”
TESIS
Para Optar el Título Profesional de
INGENIERO AGRONOMO
Presentado por
HILDA SOPLIN TRIGOSO
Bachiller en Ciencias Agronómicas
Iquitos – Perú
2015
UNIVERSIDAD NACIONAL DE LA AMAZONIA PERUANA
FACULTAD DE AGRONOMIA
TESIS APROBADA EN SUSTENTACION PÚBLICA, EL DIA 14 DE FEBRERO DEL 2015, POR EL
JURADO AD-HOC NOMBRADO POR LA ESCUELA DE FORMACION PROFESIONAL DE
AGRONOMIA, PARA OPTAR EL TITULO DE:
INGENIERO AGRONOMO
JURADOS:
___________________________________________
Ing. JOSÉ FRANCISCO RAMIREZ CHUNG, M.Sc.
PRESIDENTE
___________________________________________
Ing. JULIO ABEL MANRIQUE DEL AGUILA, M.Sc.
MIEMBRO
___________________________________________
Ing. MANUEL CALIXTO AVILA FUCUS
MIEMBRO
__________________________________________
Ing. RONALD YALTA VEGA, M.Sc.
ASESOR
__________________________________________
Ing. JUAN IMERIO URRELO CORREA, M.Sc.
DECANO
DEDICATORIA
 A mi amado hijo, Diego Ysaac tu afecto y tu cariño son la razón que me levanta cada día para
esforzarme por el presente y el mañana. Aun a tu corta edad, me has enseñado y me sigues
enseñando muchas cosas de la vida fuiste mi motivación más grande para concluir este proyecto
de tesis. Gracias Hijo.
 A mis queridos padres, Roberto y Esther, por haberme dado la vida, apoyado y criado de la
mejor manera posible, a ellos mi eterna gratitud.
 Con todo mi amor y cariño, a mi amado Jorge por su apoyo, comprensión y confianza, a ti por
siempre mi corazón y agradecimiento.
AGRADECIMIENTO
 El presente Trabajo de Investigación, no hubiera sido realizarlo sin el apoyo brindado por
personas e instituciones que contribuyeron de una u otra manera la culminación y publicación
correspondiente.

A DIOS por darme la vida y haberme permitido llegar hasta la culminación del presente Trabajo
de Tesis.

Un agradecimiento especial al Ing. Jorge Ysaac Villacrés Vallejo, por su apoyo incondicional e
invalorable en el desarrollo de la investigación.

A los Docentes de la Facultad de Agronomía que en este andar por la vida, influyeron con sus
conocimientos y experiencias en mi formación profesional, a todos y a cada uno de ellos.

Al Instituto de Medicina Tradicional – ESSALUD (IMET), por haberme dado las facilidades de sus
instalaciones, para la ejecución y culminación del presente Trabajo de Investigación.
INDICE GENERAL
Pág.
INDICE GENERAL ..........................................................................................................................05
INDICE DE CUADROS ....................................................................................................................07
INDICE DE GRAFICOS .................................................................................................................. 08
INDICE DE CUADROS DEL ANEXO ............................................................................................. 08
INDICE DE IMÁGENES DE ANEXO ...............................................................................................09
INTRODUCCION .............................................................................................................................10
CAPITULOI: PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA .......................................................................11
1.1 PROBLEMA, HIPÓTESIS Y VARIABLES ...............................................................................11
1.1.1. Problema .......................................................................................................................11
1.1.2. Hipótesis ........................................................................................................................11
1.1.2.1 Hipótesis general ...........................................................................................11
1.1.2.2 Hipótesis especificas ......................................................................................12
1.1.3 Variables ......................................................................................................................12
1.1.3.1 Variables dependiente....................................................................................12
1.1.3.2 Variables independiente .................................................................................12
1.2 OBJETIVOS DE LA INVESTIGACIÓN .....................................................................................13
1.2.1 Objetivo general ...........................................................................................................13
1.2.2 Objetivos específicos ...................................................................................................13
1.3 JUSTIFICACIÓN E IMPORTANCIA .........................................................................................13
1.3.1 Justificación..................................................................................................................13
1.3.2 Importancia ..................................................................................................................14
CAPITULO II: METODOLOGIA ......................................................................................................15
2.1 MATERIALES Y METODOS ...................................................................................................15
2.1.1 Materiales.....................................................................................................................15
2.1.2 Métodos .......................................................................................................................17
2.1.3 Características del Área Experimental .........................................................................18
2.1.4 De la conducción del experimento ...............................................................................19
CAPITULO III: REVISION DE LITERATURA..................................................................................24
3.1 MARCO TEÓRICO ..................................................................................................................24
3.1.1 Origen y Distribución Geográfica .................................................................................24
3.1.2 Taxonomía ...................................................................................................................24
3.1.3 Descripción botánica ................................................................................................... 25
3.1.4 Valor Nutricional ...........................................................................................................27
3.1.5 Condiciones climáticas ................................................................................................ 28
3.1.6 Condiciones del suelo ..................................................................................................28
3.1.7 Propagación ................................................................................................................28
3.1.8. Etapas fenológicas ......................................................................................................34
3.1.9 Plagas .........................................................................................................................35
3.1.10 Enfermedades ..............................................................................................................36
3.1.11 Usos .............................................................................................................................36
3.1.12 De los sustratos............................................................................................................38
3.2 MARCO CONCEPTUAL ..........................................................................................................43
CAPITULO IV: ANÁLISIS Y PRESENTACIÓN DE LOS RESULTADOS.......................................48
4.1 DE LOS SUSTRATOS EN ESTUDIO......................................................................................48
4.1.1 Suelo agrícola ..............................................................................................................48
4.1.2 Suelo agrícola + gallinaza ............................................................................................49
4.1.3 Tierra negra ..................................................................................................................50
4.1.4 Tierra negra + gallinaza ...............................................................................................50
4.2 SOBRE LAS VARIABLES EN ESTUDIO ................................................................................51
4.2.1 Porcentaje de germinación...........................................................................................51
4.2.2 Altura de plantas (cm.) .................................................................................................53
4.2.3 Número de hojas/planta ...............................................................................................55
4.2.4 Peso fresco promedio de hojas (gr.) ............................................................................56
4.2.5 Peso Seco promedio de hojas (gr.) ..............................................................................58
4.2.6 Peso fresco promedio de tallos (gr.) ...........................................................................59
4.2.7 Peso seco promedio de tallos (gr.) ...............................................................................60
4.2.8 Peso fresco promedio de raíces (gr.) de plántulas de guanábana ...............................62
4.2.9 Peso seco promedio de raíces (gr.) .............................................................................64
CAPÍTULO V. DISCUSION .............................................................................................................66
5.1 PORCENTAJE DE GERMINACIÓN ........................................................................................66
5.2 ALTURA DE PLANTA (cm) .....................................................................................................67
5.3 NÚMERO DE HOJAS/PLANTA ...............................................................................................68
5.4 PESO FRESCO PROMEDIO DE HOJAS ...............................................................................68
5.5 PESO SECO PROMEDIO DE HOJAS ....................................................................................69
5.6 PESO FRESCO PROMEDIO DE TALLOS .............................................................................69
5.7 PESO SECO PROMEDIO DE TALLOS ..................................................................................70
5.8 PESO FRESCO PROMEDIO DE RAÍCES ...............................................................................70
5.9 PESO SECO PROMEDIO DE RAÍCES ....................................................................................71
CAPITULO VI. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES ..........................................................72
6.1 CONCLUSIONES ....................................................................................................................72
6.2 RECOMENDACIONES .......................................................................................................... 72
BIBLIOGRAFIAS.............................................................................................................................73
ANEXOS ..........................................................................................................................................77
INDICE DE CUADROS
Pág.
Cuadro Nº 01. Aleatorización de los tratamientos ..........................................................................17
Cuadro Nº 02. Clave, descripción y tratamientos ...........................................................................18
Cuadro Nº 03. Análisis de varianza ................................................................................................18
Cuadro Nº 04. Taxonomía del cultivo de Annona muricata L. “guanábana” ..................................25
Cuadro Nº 05. Composición nutricional del fruto de guanábana/100 gr de fruta fresca .................27
Cuadro Nº 06. Propiedades medicinales de la graviola demostradas con pruebas de
laboratorio...............................................................................................................38
Cuadro Nº 07. Análisis de varianza del porcentaje de germinación de guanábana .......................52
Cuadro Nº 08. Prueba de DUNCAN del porcentaje de germinación de semillas de guanábana ...52
Cuadro Nº 09. Análisis de varianza de la altura promedio de plántulas (cm.) de guanábana ........53
Cuadro Nº 10. Prueba de DUNCAN de altura promedio de plántulas (cm.) de guanábana...........54
Cuadro Nº 11. Análisis de varianza del N° de hojas promedio en plántulas de guanábana ..........55
Cuadro Nº 12. Prueba de DUNCAN de N° de hojas promedio en plántulas de guanábana ..........55
Cuadro Nº 13. Análisis de varianza del peso fresco promedio de hojas (gr.) de plántulas
guanábana..............................................................................................................56
Cuadro Nº 14. Prueba de DUNCAN del peso fresco (gr) promedio de hojas de plántulas de
guanábana .............................................................................................................57
Cuadro Nº 15. Análisis de varianza del peso seco promedio de hojas(gr.) de plántulas de
guanábana..............................................................................................................58
Cuadro Nº 16. Prueba de DUNCAN del peso seco promedio de hojas gr de plántulas de
guanábana..............................................................................................................58
Cuadro Nº 17. Análisis de varianza del peso fresco de tallos de plántulas de guanábana ............59
Cuadro Nº 18. Prueba de DUNCAN del peso fresco promedio de tallos en plántulas de
guanábana..............................................................................................................60
Cuadro Nº 19. Análisis de varianza del peso promedio de tallos (gr.) en plántulas de
guanábana..............................................................................................................61
Cuadro Nº 20. Prueba de DUNCAN del peso promedio de tallos de plántulas de guanábana ......61
Cuadro Nº 21. Análisis de varianza del peso fresco promedio de raíces de plántulas de
guanábana............................................................................................................. 62
Cuadro Nº 22. Prueba de DUNCAN del peso fresco promedio de raíces (gr.) ..............................63
Cuadro Nº 23. Peso seco promedio de raíces (gr.) de plántulas guanábana ................................64
Cuadro Nº 24. Prueba de DUNCAN del peso seco promedio de raíces (gr.) de plántulas de
guanábana..............................................................................................................64
INDICE DE GRAFICOS
Pág.
Grafico Nº 01 Histograma del porcentaje de germinación de semillas de guanábana................. 53
Grafico Nº 02 Histograma de altura promedio de plántulas (cm.) .................................................54
Grafico Nº 03 Histograma del número de hojas/planta .................................................................56
Grafico Nº 04 Histograma del peso fresco promedio hojas (gr.) ...................................................57
Grafico Nº 05 Histograma del peso seco promedio hojas (gr.) .....................................................59
Grafico Nº 06 Histograma del peso fresco promedio tallos (gr.) ...................................................60
Grafico Nº 07 Histograma del peso seco promedio tallos (gr.) .....................................................62
Grafico Nº 08 Histograma del peso fresco promedio raíces (gr.) ..................................................63
Grafico Nº 09 Histograma del peso seco promedio raíces (gr.) ....................................................65
INDICE DE CUADROS DE ANEXOS
Pág.
Cuadro Nº 25: Datos climatológicos mensuales en el periodo experimental ..........................
79
Cuadro Nº 26: Análisis de caracterización del suelo del área experimental ...........................
80
Cuadro Nº 27: Composición química de la gallinaza ..............................................................
81
Cuadro Nº 28: Croquis del experimento .........................................................................................82
Cuadro Nº 29: Distribución de las plantula en macetas .................................................................83
Cuadro Nº 30: Datos originales del % de germinación de semillas de guanábana ........................84
Cuadro Nº 31: Datos transformados al Arc sen X% del porcentaje de germinación cultivo de
guanábana..............................................................................................................84
Cuadro Nº 32: Datos originales de la altura de planta (cm.) en el cultivo de guanábana...............84
Cuadro Nº 33: Datos originales del número de hojas/planta .........................................................84
Cuadro Nº 34: Datos Transformados a la raíz de x del número de hojas de guanábana .............85
Cuadro Nº 35: Datos originales del peso fresco promedio de hojas en el cultivo de guanábana 85
Cuadro Nº 36: Datos originales del peso seco promedio de hojas en el cultivo de guanábana.....85
Cuadro Nº 37: Datos originales del peso fresco promedio de tallos en el cultivo de guanábana...86
Cuadro Nº 38: Datos originales del peso fresco promedio de tallos en el cultivo de guanábana...86
Cuadro Nº 39: Datos originales del peso fresco promedio de raíces en el cultivo de guanábana .86
Cuadro Nº 40: Datos originales del peso seco promedio de raices en el cultivo de guanábana....87
Cuadro Nº 41: Prueba de homogeneidad de LAVENE (MODIFICADO) ........................................87
Cuadro Nº 42: Prueba de normalidad LAVENE (MODIFICADO) ...................................................88
INDICE DE IMAGENES DE ANEXOS
Pág.
Imagen 01:
Recolección del fruto de Guanábana. .......................................................................89
Imagen 02:
Obtención de las semillas a partir del fruto................................................................89
Imagen 03:
Semillas limpias de Annona muricata L. ....................................................................90
Imagen 04:
Distribución de los tratamientos para las pruebas de germinación ...........................90
Imagen 05:
Siembra de semillas de Annona muricata. ................................................................91
Imagen 06:
Germinación epigea de semillas Annona muricata. .................................................91
Imagen 07:
Formación de las primeras hojas de Annona muricata .............................................92
Imagen 08:
Distribución de plántulas en diferentes tratamientos .................................................92
Imagen 09:
Distyribución de los cuatro tratamientos ...................................................................93
Imagen 10:
Evaluación final de de las plántulas de Annona muricata L ......................................93
Imagen 11: Tratamiento tierra negra mostrando mejor desarrollo ................................................94
Imagen 12: Toma de datos del peso de tallos ..............................................................................94
Imagen 13: Toma de datos del peso de hojas ..............................................................................95
Imagen 14: Toma de datos del peso de raíces .............................................................................95
INTRODUCCION
En nuestra zona la especie Annona muricata L. “guanábana”, es muy popular por presentar frutos
para consumo en fresco, así como para preparar refrescos, helados entre otros. Esta pulpa según el
análisis químico y bromatológico indica que es una fuente razonable de carbohidratos, calcio, fósforo y
vitamina C, FLORES (1997). También sus hojas poseen propiedades medicinales cuya principal
cualidad es la capacidad que posee para eliminar las células cancerígenas, sin causar daño al resto
de células sanas, hecho que sitúa su potencial, como tratamiento alternativo ante el cáncer.
Sin embargo su producción y rendimiento se muestra restringido debido: Baja productividad por
limitaciones naturales en la polinización; alta susceptibilidad al ataque de plagas y enfermedades;
fragilidad del fruto maduro al manipuleo de cosecha y de transporte y perecibilidad del fruto, FLORES
(1997).
La investigación de este proyecto se realiza por el interés de conocer el sustrato o sustratos idóneos
para la propagación botánica y crecimiento de la guanábana con el uso de insumos propios de
nuestra región nos permite aprovechar al máximo los recursos naturales, estableciendo plantaciones
que permitan en el futuro una agricultura sostenible que tenga continuidad en el tiempo y en el
espacio.
CAPITULO I
PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
1.1 PROBLEMA, HIPOTESIS Y VARIABLES
1.1.1 Problema
En Amazonia Peruana existe desconocimiento de aspectos agronómicos básicos de
diversas especies frutales, por ello desde hace mucho tiempo se viene poniendo en práctica
muchas técnicas, métodos de germinación y propagación de plántulas de especies
especialmente perennes para su aprovechamiento, debido fundamentalmente a la variabilidad
de ecosistemas, variabilidad genética de las especies, el origen del material vegetal, los
volúmenes y disponibilidad de materia prima; está restringiendo las oportunidades para el
desarrollo de diversas actividades de producción y de trabajos de investigación en diversas
áreas, dificultando de esta manera el desarrollo sostenible de nuestro potencial de la agro
biodiversidad amazónica.
En los viveros frutícolas para la especie Annona muricata L. “Guanábana”, existe una serie de
dificultades en la germinación, viabilidad, crecimiento, entre otros aspectos que no permiten la
producción rápida de plantas de calidad, por lo que no se puede garantizar el establecimiento de
plantaciones perennes a mediana y gran escala.
Estos aspectos nos han permitido plantear la realización de este trabajo de investigación, con el
fin de poder determinar el efecto de diversos sustratos en la germinación y crecimiento inicial,
entre otras variables en la propagación de botánica de Annona muricata L.
1.1.2 Hipótesis
1.1.2.1 Hipótesis General
Al menos un sustrato tiene influencia positiva en la germinación y desarrollo
inicial de Annona muricata L. (guanábana).
[12]
1.1.2.2 Hipótesis Específicas

Al menos un sustrato tiene influencia en la germinación de Annona muricata
“guanábana”.

Al menos un sustrato tiene influencia en el desarrollo inicial de Annona
muricata “guanábana”.
1.1.3 Variables
1.1.3.1 Identificación de Variables
a. Variables independientes (X)
X Sustratos.
b. Variables dependientes (Y) Explicada
Y1 Germinación.
Y2 Crecimiento inicial de la guanábana.
1.1.3.2 Operacionalidad de las variables
Variables Independientes (X):
INDICADORES:
X1: Suelo Agrícola
X2: Suelo Agrícola + gallinaza
X3: Tierra Negra
X4: Tierra Negra + gallinaza
Variables Dependientes (Y):
Indicadores:
Parametro de Germinación
Y 1, 1: Porcentaje de germinación.
[13]
Indicadores:
Parámetros de crecimiento en el desarrollo inicial
Y 2, 1: Altura de planta.
Y 2, 2: N° de plantas/hoja.
Y 2, 3: Peso fresco hojas.
Y 2, 4: Peso seco de hojas.
Y 2, 5: Peso fresco de tallos.
Y 2, 6: Peso seco de tallos.
Y 2, 7: Peso fresco de raíces.
Y 2, 8: Peso seco de raíces.
1.2 OBJETIVOS DE LA INVESTIGACION
1.2.1 Objetivo General
 Evaluar la germinación y crecimiento inicial de la Annona muricata “guanábana” bajo
la influencia de cuatro sustratos.
1.2.2 Objetivos Específicos
 Evaluar los parámetros de germinación en la Annona muricata “guanábana”.
 Evaluar el crecimiento inicial de Annona muricata “guanábana”.
1.3 JUSTIFICACIÓN E IMPORTANCIA
1.3.1 Justificación
Uno de los principales problemas que afronta el agricultor de selva baja, cuando realiza la
siembra de las diversas especies vegetales frutícolas a partir de semilla botánica es el bajo
porcentaje de germinación, poca energía germinativa y lento crecimiento, tal es el caso de la
especie Annona muricata L. “Guanábana”.
[14]
Con los resultados que se obtuvieron en este ensayo específicamente, se está contribuyendo en
la producción de conocimientos básicos de sustratos, que por ser de origen orgánico, pueden
inducir y/o facilitar la germinación, mejorar la energía germinativa e incrementar el crecimiento
de las plantas a nivel de vivero en el cultivo de Annona muricata L. “Guanábana”.
Asimismo servirá como antecedente importante para posteriores investigaciones en el
crecimiento, producción y productividad en el cultivo de Annona muricata L. “guanábana” por
cuanto la información existente es insuficiente en la actualidad, razón por la cual asumimos el
reto de estudiar cuatro (04) insumos orgánicos que son fáciles de encontrar en la zona y ver su
efecto como sustratos a nivel de vivero.
1.3.2 Importancia
En este cultivo la obtención de plantas de calidad considerando un tamaño uniforme,
buen número de hojas y un diámetro adecuado que soporten condiciones adversas al ser
llevadas a campo definitivo, se inicia con un adecuado manejo a nivel de vivero sometiendo a
las semillas botánicas a condiciones ideales de germinación, es decir sustratos que les
proporcionen humedad, oxígeno, pH adecuado, y otros aspectos químicos y biológicos
adecuados, por eso es de vital importancia solucionar estos problemas desde la etapa inicial de
vivero.
La importancia del presente trabajo de investigación radica en su influencia directa e indirecta en
el desarrollo agrícola regional, donde la Guanábana como especie que se quiere difundir como
cultivo alternativo, es una de las especies agrícolas con potencialidades de expansión y/o
exportación, teniendo en cuenta que en los últimos años, el desarrollo agrícola nacional, se ha
visto favorecido en el aspecto económico, social y agrícola.
CAPITULO II
METODOLOGIA
2.1 MATERIALES Y METODOS
2.1.1 Materiales
a. Herramientas de trabajo
-
Wincha
-
Carretilla
-
Palas
-
Bolsas almacigueras
b. Insumos
-
Tierra negra
-
Suelo agrícola
-
Gallinaza
-
Semillas
-
Benomil al 0.1%
c. Ubicación del campo experimental
El presente trabajo se realizó en el vivero del Instituto de Medicina Tradicional (IMET)
ESSALUD, ubicado en el Pasaje San Lorenzo Nº 205 Distrito de San Juan, según el
Instituto Nacional Geográfico, dicho terreno se encuentra ubicado a una altitud de
122.4 msnm, la misma que está ubicada en las siguientes coordenadas geográficas:
Latitud
:
03° 47° 12” S
Longitud :
73° 19° 12” O
[16]
d. Características medio ambiente
SENAMHI. La precipitación anual varía entre 2,400 y 3,400 mm, en verano alcanza
200 a 350 mm por mes (de Julio a Octubre) y en “invierno” (épocas de lluvias entre
Diciembre y Marzo) con 150 a 350 mm por mes; no existiendo una estación seca
definida. El clima es relativamente uniforme, con temperatura medias anual entre 25º
y 27ºC, y con bruscos descensos en los días de friaje de San Juan (Junio – Julio) y
de Santa Rosa (Agosto - Setiembre). La variación diaria es menor de 8 – 10ºC y la
diferencia entre la temperatura diurna y nocturna es mayor que la de verano (Marzo,
25ºC) y la de “invierno” (Setiembre – Diciembre, 27.4ºC – 26.9ºC).
e. Material experimental
El material en estudio es el cultivo de Annona muricata L. “Guanábana”.
e.1 Características agronómicas de la especie:
 Forma de los frutos: ovoide o elipsoidal
 Tamaño promedio del fruto: 15-20 cm de largo y de 10-12 cm de diámetro.
 Color del fruto: Verde oscuro.
 Forma de semilla: Oblonga.
 Color de semilla: Marrón.
 Procedencia: Fundo “La coruña” – Distrito San Juan Bautista.
f.
Materiales para sustrato
Los sustratos utilizados en el trabajo experimental fueron los siguientes:
f.1. Suelo agrícola, procedente del Jardín botánico del Instituto de Medicina
Tradicional (IMET) - Essalud.
[17]
f.2. Suelo agrícola + gallinaza (3:1), procedente del jardín botánico del Instituto de
Medicina Tradicional (IMET) - Essalud.
f.3. Tierra negra, procedente del jardín botánico del Instituto de
f.4. Tierra negra + gallinaza (3:1), procedente del jardín botánico del Instituto de
El suelo y los diversos sustratos usados en el experimento fueron analizados en
el laboratorio de Análisis de suelos de la Universidad Nacional Agraria “La
Molina”.
2.1.2 Métodos
a. Tipo de investigación: Experimental.
b. Diseño experimental
A nivel de germinación y crecimiento el Diseño utilizado fue Completo al Azar (DCA)
con cuatro tratamientos y tres repeticiones, teniendo en cuenta que la mayoría de
factores estarán controlados.
CUADRO N° 01. ALEATORIZACIÓN DE LOS TRATAMIENTOS
TRATAMIENTOS
T1
T2
T3
T4
I
T11
T21
T31
T41
ALEATORIZACION
II
III
IV
T12
T13
T14
T22
T23
T24
T32
T33
T34
T42
T43
T44
V
T15
T25
T35
T45
[18]
c. Tratamientos estudiados
CUADRO N° 02. CLAVE, DESCRIPCIÓN Y TRATAMIENTOS
N°
CLAVE
1
2
3
4
T1
T2
T3
T4
TRATAMIENTOS
Suelo agrícola
suelo agrícola + gallinaza
Tierra negra
Tierra negra + gallinaza
d. Estadística empleada
d.1 Estadística descriptiva
Se calculó las medias de los tratamientos y en función a cada uno de los
indicadores de las variables independiente y dependiente y la elaboración de los
gráficos para representar los resultados obtenidos para su mejor interpretación.
Las fuentes de variabilidad con la que se analizó los resultados obtenidos fueron
los siguientes:
CUADRO N° 03. ANÁLISIS DE VARIANZA
F.V
Tratamiento
Error
Total
Grados de libertad
t–1=4-1
= 3
t ( r - 1 ) = 4 ( 4 ) = 16
r t - 1 = (5) (4) - 1 = 19
- FUENTE: Elaboración propia
Prueba de Duncan
2.1.3 Características del Área Experimental
a. Del vivero
a.1 Dimensiones del vivero
- Largo
5m
- Ancho
3m
- Área
15 m2
[19]
a.2. De los tratamientos para evaluar germinación
- Largo bandeja
40 cm
- Ancho bandeja
30 cm
- Alto bandeja
12 cm
- N° de bandejas por tratamiento
5
- N° de bandejas por repetición
4
- N° total de bandejas
20
- N° de semillas por bandejas
30
- N° total de semillas
600
a.3. De los tratamientos para desarrollo inicial
- N° Tratamientos
4
- N° repeticiones
5
- N° macetas por Tratamiento
20
- N° macetas por repetición
60
- N° total de bolsas
240
a.4. Croquis del campo experimental y del vivero
El croquis del campo experimental se detalla en el Cuadro N° 28.
2.1.4 De la conducción del experimento
El presente trabajo se instaló en setiembre del 2012 en las instalaciones del vivero del
(IMET), Instituto de Medicina
Tradicional-ESSALUD. Cuyas actividades realizadas fueron las siguientes.
a. Instalación del vivero
Para la instalación del vivero se realizaron las siguientes actividades.
[20]
a.1 Obtención de semillas del material experimental
Los frutos de Annona muricata L. “Guanábana” fueron recolectadas en el
Fundo La Coruña, ubicada en la carretera Iquitos -Santa Clara, en el distrito de
San Juan Bautista, provincia de Maynas, departamento de Loreto. Para la
extracción de las semillas se tuvo en cuenta lo siguiente:
 Se seleccionó frutos maduros de plantas selectas de guanábana, siendo
éstos de tamaño uniforme y maduro. Se despulpo la fruta manualmente,
partiéndolas por la mitad y se separó las semillas en un recipiente.
Seguidamente se dejó fermentar las semillas por 24 horas, luego se lavó
con abundante agua.
 Las semillas libre de mucilagos se colocó esparcidas en una bandeja de
plástico para el respectivo secado a temperatura ambiente por espacio de
tres días.
 Las semillas limpias y secas fueron colocadas en un recipiente
herméticamente cerrado.
a.2. Bandejas germinadoras de Plástico
La prueba de germinación se llevó a cabo en
bandejas de plástico se
acondicionaron los diferentes sustratos los cuales tenían una capacidad de
contener aproximadamente 5.5 kg de sustrato; en cada bandeja se colocaron
30 semillas de guanábana, las cuales se colocaron a 1 cm. de profundidad y
de 1 cm. entre ellas. Las bandejas se colocaron sobre mesones dentro del
vivero, el cual consiste de una estructura con techo de vidrio transparente, con
suficiente ventilación y presencia de luz, las bandejas recibieron riegos diarios
para mantener el sustrato constantemente húmedo.
[21]
a.3. Preparación de los Sustratos:
Los sustratos que se usaron fueron: Suelo agrícola, Tierra negra, Suelo
agrícola + gallinaza (3:1) y Tierra negra + gallinaza (3:1), todos éstos
materiales fueron respectivamente tamizados antes de ser llenados tanto a las
bandejas como las macetas plásticas y luego se identificaron con un cartel
cada uno de los tratamientos.
a.4. Análisis de sustrato
De cada sustrato se tomó 4 muestras de 500 gramos de cada uno, luego
secado, envasado y enviado al laboratorio de suelos de la Universidad
Nacional Agraria La Molina en el Cuadro N° 26.
a.5. Riego
Consistió en aplicar agua sobre las bandejas y macetas con las semillas y
plántulas respectivamente por un periodo de 4 meses luego del trasplante.
a.6. Control fitosanitario
Las semillas fueron desinfestadas con una aplicación de Benomil al 0.1 % en
inmersión por 5 minutos y luego oreadas por una hora y luego sembradas en
los diversos sustratos.
a.7. Evaluaciones iniciales
A partir de octubre del 2012 se iniciaron las evaluaciones con la siembra de
semillas de guanábana (Annona muricata L).
[22]
a.8 Evaluación final del experimento:
Se registraron los datos hasta el 16 de marzo del 2013.
b. Variables evaluadas
b.1 Germinación
a. Porcentaje de germinación (%)
Se procedió a tomar los datos de las semillas germinadas cada día una vez
iniciada la misma obteniendo el porcentaje de germinación, utilizando el
método propuesto por PINEDO (1989), cuya fórmula es la siguiente:
%G = Semillas germinadas X 100
Semillas sembradas
Intervalos de evaluación:
0 – 20Muy malo
21 – 40 Malo
41 – 60 Regular
61 – 80 Bueno
81 – 100Muy bueno
Fuente: PIDINICO, citado por DELGADO, 1996
b.2 Desarrollo Inicial:
Elección de las plantas
La elección de las plántulas de Annona muricata L. “guanabana”, se hizo de
manera aleatoria determinando plantas de que estaban en la unidad
experimental.
[23]
a. Altura de la planta: Comprendida desde el cuello de la planta hasta el
ápice de la yema terminal.
b. Número de Hojas/Planta: Es el número total de hojas formadas y
completas por planta.
c. Peso fresco: Se obtuvo de las plantas luego de su extracción de las bolsas
de plástico, se consideró la parte foliar y sistema radicular.
d. Peso seco: Las plantas en las cuales se evaluó el peso fresco también
sirvieron para evaluar el peso seco. Este material vegetal fresco luego de
su pesado se colocó en una estufa a 50ºC de temperatura para su secado y
posterior pesado.
CAPITULO III
REVISION DE LITERATURA
3.1 MARCO TEORICO
3.1.1 Origen y Distribución Geográfica
La guanábana es oriunda del Perú y se cultiva en la mayor parte de América tropical, en
Colombia cuenta con pocas áreas sembradas, siendo muy escasos los cultivos tecnificados. Sin
embargo, se puede mencionar cultivos en el Valle del cauca, Santander, Huila y en el Caribe
colombiano. La Annona muricata, guanábana o graviola, es un árbol endémico del Caribe,
México, Centro y Sudamérica, estrechamente relacionado con la chirimoya, Sierra (2010), en la
selva peruana, se cultiva en los Departamentos de Loreto, San Martin y Ucayali, Flores (1997).
La zona de producción en el Perú es la Selva central de Chanchamayo. Su fruto se encuentra
representado con frecuencia en la cerámica precolombina de la costa peruana, conforme lo
testimonia la existencia de varias piezas de cerámica de la Cultura Chimú en la que está
representada con exactitud. articulos.infojardin.com/.../guanabanas-guanabano-catucheannona-muricata.
3.1.2 Taxonomía
La guanábana se clásica de la manera siguiente:
[25]
CUADRO N° 04. TAXONOMÍA DEL CULTIVO DE Annona muricata L. “guanábana”
Reino:
Plantae
División:
Magnoliophyta
Clase:
Magnoliopsida
Orden:
Magnoliales
Familia:
Annonaceae
Subfamilia:
Annonoideae
Tribu:
Annoneae
Género:
Annona
Especie:
A. muricata L.
3.1.3 Descripción botánica
a. La planta
La guanábana es un arbusto, perteneciente a la familia de las Anonáceas, que
alcanza entre cinco y nueve metros de altura, de madera y hojas suaves, perennes,
de 6 a 20 cm de largo y de 2 a 7 cm de ancho, de forma oblonga o elíptica y de mal
olor. Sus flores que son pequeñas (4.5 cm de longitud) emergen en cualquier lugar del
tallo o ramas. Se multiplica por semilla o por injerto. Crece bien en alturas inferiores de
los 1000 msnm., en zonas de clima cálido y seco con temperaturas medias de 25 a
28ºC, con una precipitación anual de más de 1000 mm y una estación seca marcada.
No es exigente en cuanto a suelos, pero es sensible a la asfixia. Existe gran cantidad
de variedades, se clasifican por su sabor en dulces, semidulces y ácidas. FAO (2006).
La guanábana es un árbol de bajo porte de 3-10 m de altura; copa angosta y abierta,
fuste recto de 15 cm de DAP, corteza externa lisa de color pardo grisáceo y corteza
interna rosada. Ramitas lenticelada, Flores (1996).
[26]
c. La hoja
La guanábana posee hojas alternas y sin estípulas; lamina subcoracea, obovada,
subovabada u oblongo elíptica de 5-18 cm de largo y 2-7 cm de ancho, márgenes
enteros, ápice cortamente acuminados, base subcuneada, aguda u obusta; haz verde
oscuro, brillante y glabro, envés verde amarillento y opaco, pinnatinerve; peciolo hasta
0.8 cm de largo, Flores (1996).
d. La flor
Las flores son bisexuales solitarias o en pares en tallitos cortos que brotan da las
ramas viejas. Cáliz con 3 sépalos diminutos e inconspicuos de color verde. Corola con
6 pétalos amarillo pálido; 3 pétalos exteriores acorazonados, grandes, gruesos y 3
pélalos interiores más pequeños y más delgados. Estambres y ovarios numerosos,
Flores (1996).
e. Frutos
El fruto es una baya colectiva o sin carpo, ampliamente ovoide o elipsoide, verde de
15-40 cm de largo en la base debido a la polinización deficiente, está recubierta por
espinas suaves carnosas que miden de 0.3-0,5 cm de largo y están volteadas hacia el
ápice; la cascara es delgada y coriácea y la pulpa es blanca, cremosa, carnosa,
jugosa y subácida,Flores (1996).
e. Semillas
Heijden y Bouman, 1988; Grau et al, 1992, citados por Meza y Bautista, (2004).
Indican que las semillas del guanábano son lisas, de color marrón o crema y de forma
elipsoidal a ovoide; presentan un arilo rudimentario y un hilo circular y estrecho Grau
et al., (1992), el cual rodea externamente al micrópilo. Asimismo, estos autores
[27]
refieren que las envolturas seminales son medianamente gruesas, con paredes
fibrosas, resistentes y duras. El endospermo es blanquecino, de textura
medianamente dura y ligeramente aceitoso; en la medida que éste se va
desarrollando llena toda la cavidad seminal, tornándose ruminado de tipo
espiniformes, cuyas ramificaciones penetran de adentro hacia fuera, el integumento
interior.
f. Raíz
La raíz es pivotante con un anclaje ramificado y fuerte. El sistema radical es poco
profundo y bastante fibroso. El mayor porcentaje de raíces, se encuentra en los
primeros 30 cm de profundidad y están distribuidas alrededor del tronco tallo.
www.ecured.cu/index.php/Guanábana.
3.1.4 Valor Nutricional
Composición nutricional: 100 gramos de parte comestible
tienen la siguiente
composición:
CUADRO N° 05. COMPOSICIÓN NUTRICIONAL DEL FRUTO DE GUANÁBANA/ 100 gr DE FRUTA
FRESCA.
COMPUESTO
Calorías
Agua
Carbohidratos
Grasas
Proteínas
Fibra
Cenizas
Calcio
Fósforo
Hierro
Tiamina
Riboflavina
Niacina
Ácido ascórbico
CANTIDAD
53.1 – 61.3
82.8 g
14.63 g
0.97 g
1.0 g
0.79 g
0.6 g
10.3 mg
27.7 mg
0.64 mg
0.11 mg
0.05 mg
1.28 mg
29.6 mg
Fuente: Purdue University (USA). Fruits of warm climates.Julia F. Morton, Miami, FL.
[28]
3.1.5 Condiciones Climáticas
La guanábana se desarrolla bien entre los 500 y 1200 m.s.n.m. La temperatura ideal
puede estar entre los 25-28°C. Se comporta muy bien en zonas donde la precipitación está
entre los 800-1000 mm por año. La humedad relativa debe estar por encima del 80%.
La humedad relativa alta, aumenta la propensión a la Antracnosis. Una humedad relativa
demasiado baja, dificulta la polinización, afectando, por esta vía, los niveles de producción.
articulos.infojardin.com/.../guanabanas-guanabano-catuche-annona-muri.
3.1.6 Condiciones de Suelo
Los suelos recomendados para la siembra de guanábana deben ser terrenos no
inundables; es bastantes exigentes en suelos profundos, de textura franca, ligeramente ácidos,
ricos en materia orgánica y de mediana a elevada fertilidad, Flores (1997).
3.1.7 Propagación
a. Sexual
Soto et al (2011), evaluaron el efecto de la forma de propagación y la frecuencia de
fertilización nitrogenada sobre la calidad física de frutos de guanábana. Se evaluó: la
biomasa del fruto (BF) y del mesocarpo (BM), el diámetro polar (DP) Y ecuatorial (DE),
la biomasa de las semillas (BS), el número de semillas (NS) y la firmeza del fruto (F).
Se determinó efecto significativo (P<0,05) de la frecuencia fertilización sobre la
variación del comportamiento de las variables BF, BM, DP, y BS. Se obtuvieron frutos
grandes (818,26 g de BF y 136,76 mm de DP) y con mayor contenido de mesocarpo
(546,61g) con un plan de fertilización de 480 kg/Año de fertilizante nitrogenado (urea),
aplicando con una frecuencia trimestral.
[29]
Tacán (2007), estudio la caracterización e identificación de zonas de las dos especies,
siendo para Annona muricata los meses de Abril y Mayo una época con mayor
presencia de frutos y para Annona. cherimola los meses de Agosto y Septiembre.
Lobo et al (2007), estudiaron la latencia y germinación de semillas de guanábana y
chirimoya con el fin de categorizar la latencia de las simientes y desarrollar un
protocolo de rompimiento de ésta; No se detectó latencia exógena, a través de la
imbibición obtenida por las semillas. Se encontró, a través de pruebas de viabilidad,
con tetrazolio, que en cada uno de los taxa existe alrededor de un 20% de unidades
no viables en el conjunto de semillas aparentemente normales. A partir de los
resultados se clasificó el bloqueo de la germinación de las semillas de las dos
especies, como latencia morfofisiológica simple, no profunda. La caracterización
definida, junto con el protocolo de remoción, apoyan el establecimiento de un
duplicado de seguridad de la colección de campo, por la vía de semilla, con un
concepto dinámico que se esboza en este escrito.
Yamarteet al (2006), estudiaron las características de crecimiento vegetativo y
reproductivo del guanábano. Las variables estudiadas fueron brotes vegetativos (BV),
brotes florales (BFL) y épocas de ocurrencia estos. La ocurrencia de la brotación
coincidió con las épocas de precipitación (Enero- Mayo, Julio-Diciembre). La
ramificación es acrótona y el crecimiento es plagiotrópico.
Mesa y Bautista (2004), evaluaron los efectos de remojo en agua normal y
escarificación química con ácido sulfúrico, sobre la germinación de las semillas y
emergencia de la plántula de guanábana, Annona muricata. El remojo en agua, que
duró 24 horas, y 48 h, a 90°C durante 2 y 4 min, respectivamente, y el testigo (sin
[30]
remojo) iniciaron simultáneamente la emergencia a los 17, 66 d, mientras que la
iniciación tardía ocurrió con el tratamiento de remojó en ácido sulfúrico a los 19,33 d,
de 2 a 1 min diario. Los dos tratamientos de remojo en agua caliente a 90ºC, fueron
letales para la semilla por cuanto no hubo germinación. La emergencia total promedio
presentó diferencias significativas, variando su valor entre 77,33% para el tratamiento
de escarificación en ácido sulfúrico durante 1 min y el remojo de agua de 24 h,
mientras que el testigo mostró un 70,66%. La germinación y emergencia se
caracterizó a lo largo de 6 estados secuenciales, por ser epígea y criptocotilar, por
cuanto las envolturas seminales se levantan junto con los cotiledones al momento de
la emergencia.
Hayat, 1963; Hayat y Canright, 1965; Finneseth et al., 1998, citados por Meza y
Bautista, (2004), indicaron que el embrión es relativamente pequeño en relación al
tamaño de la semilla y ocupa sólo la quinta o sexta parte de la longitud de ésta,
característica muy frecuente en la familia Annonaceae.
Flores (1999); refiere que la semilla es el sitio de parcial desarrollo del nuevo
esporofito (embrión) y el lazo de unión entre generaciones sucesivas. Es además, la
estructura que permite supervivencia y dispersión en condiciones ambientales, así
como una subsiguiente germinación exitosa.
Fuentes Y, J. (1998), menciono que el crecimiento de un vegetal es debido a la
formación de nuevas células y a que éstas nuevas células formadas aumentan en
volumen. Desde el punto de vista de su crecimiento, en un vegetal se distinguen tres
zonas: Zona de formación de nuevas células en donde se localizan los tejidos
formadores. El volumen de los tejidos de formación se conserva constante y se
[31]
renueva continuamente mientras dura su actividad; Zonas de células más o menos
jóvenes, que crecen por aumento de su tamaño y zona de células viejas, que ya no
aumentan de tamaño.
Baskin (1998), reporto que la propagación por semilla de la guanábana resulta difícil y
errática por cuanto la germinación y emergencia ocurre de manera desigual e irregular
a la largo de un período de tiempo prolongado. Este patrón de germinación es
atribuido a la presencia de latencia, mediante la cual, las semillas van a germinar bajo
condiciones medioambientales óptimas, garantizándoles a las plántulas protección
natural y mayores oportunidades de supervivencia.
Las envolturas seminales de las semillas de Annona muricata “guanábana” son
medianamente gruesas, con paredes fibrosas, resistentes y duras. El endospermo es
blanquecino, de textura medianamente dura y ligeramente aceitoso; en la medida que
éste se va desarrollando llena toda la cavidad seminal, tornándose ruminado de tipo
espiniformes, cuyas ramificaciones penetran de adentro hacia fuera, el integumento
interior, Grau et al., 1992; Heijden y Bouman (1998).
Flores
(1997), reporto que la propagación por semilla botánica, es el método
corriente más utilizado. Las semillas procedentes de frutos maduros de plantas
superiores, se lavan hasta eliminar todo residuo de la pulpa y se orean por 24 horas
bajo sombra y se trata con fungicida. Se almacenan en ambiente fresco.
Villamil y Orchuelo (1998), estudiaron los factores fisiológicos que afectan la
germinación de semillas de guanábana, Annona muricata L. evaluando la ontogenia
de la semilla que busca la identificación y determinación de la cubierta, rumiado
[32]
endospermo, y tejidos de endospermo. Se consideraron cuatro etapas de desarrollo
de la semilla: muy tierna, tierna, juvenil y madura. Las porciones se realizaron de
aproximadamente 5 m de espesor. Las porciones de las secciones transversales de la
cubierta de la semilla mostraron la transversal y fibras oblicuas de este tejido, que
constituye una capa impermeable en la semilla. Mediano longitudinales secciones
mostraron la distribución del tejido rumiado y se observó el tapón micropilar y la
cavidad hilio redondeado por el collarete. Esta cavidad es la única estructura que
permite la difusión de agua a través de la semilla. Encontrándose que la cavidad hilio
se comunica alendorpermo a través de pequeñas grietas que se forman por el tejido
rumiado no vascular. El embrión en miniatura, que está integrado por el endospermo,
está rodeado por el tejido rumiado. La composición química cualitativa del
endospermo maduro mostró la distribución de las proteínas, almidón, lípidos y
contenido de azúcar. Se detectó un alto contenido de lípidos en estas semillas (33%)
utilizando el método de extracción soxlhet.
Rojas (1991), afirmaron que el inicio de la germinación, expresa el tiempo transcurrido
entre la siembra y la germinación de la primera semilla. Para que la semilla inicie su
germinación es necesario que haya superado cualquier barrera o bloqueo, sin lo cual
por muy vivo que éste y por muy adecuado que este el ambiente, la germinación no se
realizará.
Hartman (1990), indico que es posible que las semillas poco vigorosas no puedan
resistir condiciones adversas del almácigo. Así mismo indica que la germinación se
mide en dos parámetros; el porcentaje de germinación, esas medidas pueden indicar
vigor, pero también hay que considerar la tasa de crecimiento de las plántulas y su
aspecto morfológico; sobre el porcentaje de germinación, el mismo autor señala de
[33]
que los valores de porcentaje de germinación deben indicar en elemento de tiempo,
indicando el número de plantas producidas en un lapso específico.
Las semillas contienen el embrión y la sustancia de reserva, el embrión es una planta
en miniatura en estado de vida latente, en el embrión pueden reconocerse algunas de
las estructuras que van a dar lugar a las distintas partes de la planta adulta, así es
posible encontrar a la plúmula o gémula que producirá las primeras hojas; la radícula
que formará la raíz primaria y el talluelo que dará lugar al tallo de la planta.
(http://www.porquebiotecnologia.com.ar/educacion/cuaderno/ec_109.asp?cuade
rno=109).
La germinación de las semillas tiene lugar cuando se da determinadas condiciones, en
general es preciso disponer de un pH, texturas y estructuras adecuadas, oxígeno,
humedad, temperatura e insolación y otros parámetros como la fertilización y drenaje
adecuados. Cuando el embrión empieza a desarrollarse se alimenta de las reservas
contenidas en los cotiledones, recibiendo el alimento después a través de las primeras
hojas que produzca, éste embrión o planta incipiente se denomina plántula.
http://www.natureduca.con/agro_reprod_semillas1.php.
Los factores que afectan a la germinación lo podemos dividir en Factores internos
(intrínsecos); que son propios de la semilla, madurez y viabilidad de las semillas; y
factores externos (extrínsecos); dependen del ambiente, agua, temperatura y gases.
http://www.euita.upv.es/varios/biologia/temas/temas_17.htm.
La absorción de agua por la semilla desencadena una secuencia de cambios
metabólicos, que incluyen la respiración, la síntesis proteica y la movilización de
[34]
reservas. A su vez la división y el alargamiento celular en el embrión provoca la rotura
de las cubiertas seminales, que generalmente se produce por la emergencia de la
radícula. http://www.euita.upv.es/varios/biologia/temas/temas_17.htm.
Se llama germinación al acto por el cual la semilla en estado de vida latente entra de
pronto
en
actividad
y
origina
una
nueva
planta.
www.botanica.cnba.uba.ar/Trabprac/.../Lagerminacion.html.
b. Asexual
La propagación por injerto contempla la producción de los arbolitos patrones y las
yemas. Las yemas se deben tomar de árboles con muy buena producción, tanto en
cantidad como en calidad. Como patrón se puede utilizar cualquier tipo de anona de la
zona o la misma guanábana. Los mayores porcentajes de prendimiento del injerto, se
han obtenido mediante las técnicas de injerto de enchape lateral y el de yema.
3.1.8 Etapas fenológicas
En cuanto a los brotes florales se presentaron durante todo el periodo de estudio; sin
embargo, la mayor frecuencia de floración fue observada durante el mes de septiembre. Tanto la
brotación vegetativa, como la reproductiva aparecieron durante los meses de lluvia. En general,
los árboles de guanábano tienden a florecer y fructificar durante todo el año, en especial cuando
son adultos; sin embargo, en este caso existieron épocas definidas. Un hecho similar ha sido
observado en el Valle del Cauca en Colombia (19, 20), donde predomina un microclima con una
distribución de la precipitación en forma bimodal durante el cual se presentan dos picos de
floración, entre junio y agosto con una floración menos intensa en diciembre. Yamarte et al
(2004).
[35]
3.1.9 Plagas
La guanábana (Annona muricata), es una fruta tropical con gran potencial económico,
dado su valor comercial y la demanda en el mercado externo. En Costa Rica, en los últimos
años, debido al incremento del área de producción técnica que se le ha dado al cultivo, varios
insectos plagas han incrementado sus poblaciones, ocasionando una disminución del
rendimiento y de la calidad de la fruta, Coto (2001).
a) La broca del fruto (Cerconota annonella)
Son mariposas que ovopositan sobre las flores y frutos, las larvas rosadas de 2 cm de
longitud, perforan el fruto y se alimentan de la pulpa y de las semillas; los frutos se retuercen,
ennegrecen y caen. Flores (1997).
b) La broca del tronco y las ramas (Cratosomus bombina)
Estos insectos ovopositan en troncos y ramas de hasta 2 cm de diámetro. Las larvas
emergidas, penetran en la madera formando galerías y propiciando la exudación de savia
ennegrecida. Empupa en cámaras que construyen las larvas. Flores (1997).
c) El perforador del fruto y la semilla (Bephrata maculicollis Cameron). Himenóptera, cuyas
larvas se alimentan de las semillas. Flores (1997).
d) Mosca de la fruta (Ceratitis capitata)
Las larvas de esta mariposa se comen las flores y los frutos muy pequeños, por lo que su
combate debe hacerse apenas se inicia la floración.
[36]
e) Chinche de encaje Corythucagossipii (Hemiptera: Tingidae)
Los adultos y jóvenes de este chinche se localizan en el envés de las hojas y se alimentan de
la savia que chupan.
3.1.10 Enfermedades
a) Antracnósis
Esta enfermedad es causada por el hongo Colletotrichum gloeosporioides Penzig;
ocasiona la caída de flores y frutos jóvenes y la podredumbre negra del fruto. Flores
(1997).
b) Diplodia diplodia sp. Esta enfermedad es de poca importancia en este cultivo.
Ocasiona necrosis en las ramas terminales y posteriormente secamiento de las
mismas.
c) Scolecotrichum sp.
Invade las hojas y producen manchas de color rojizo que se convierten en numerosas
áreas necróticas.
Estas dos enfermedades, diplodia y Scolecotrichum, son consideradas de poca
importancia económica.
3.1.11 Usos
La pulpa del fruto es comestible. Se consume al estado fresco, tiene agradable aroma,
textura suave, fibrosa, sabor dulce, agridulce y sabores combinados según variedades. Flores
(1997).
 Fruta fresca: Se consume como fruta entera o en ensaladas de frutas. Se utiliza como
materia prima para preparar jugos, helados, postres y tortas caseras. FAO (2006).
[37]
 Fruta procesada: Se comercializa la pulpa de guanábana natural o congelada, concentrado,
mermelada, néctar, jaleas y puré. La fruta es muy apreciada para bebidas, y los países
productores exportan jugo en presentaciones industriales o en latas para consumo final. Esta
fruta exótica se consume principalmente en jugo, además se preparan helados, batidos y una
variedad de dulces y postres. Es un buen ingrediente para ensaladas de frutas y vegetales
además de variados platos gourmet, FAO (2006).
 Medicinales: Por lo que más destaca entre las propiedades medicinales es que es
anticancerígena, por contener en sus hojas unos compuestos naturales esencial para
combatir el cáncer sin causar daño al resto de células sanas. Hecho que sitúa su potencial,
como tratamiento alternativo ante el cáncer, muy por encima de los convencionales con
quimioterapia. Seguido de un sinnúmero de otras bondades que nos brinda como ser
antiparasitario, vasodilatador, antiespasmódico, antidiabético.
Y lo mejor es que cada una de sus propiedades las podemos adquirir de todas las partes de
la planta tales como la pulpa, corteza, hojas, tallo, y raíces, en fin todo lo que tiene la
guanábana es sumamente necesario, aportando el bienestar para nuestra salud por ser un
tratamiento natural.
http://www.monografias.com/trabajos91/guanabana-usos-.
[38]
CUADRO N° 06. PROPIEDADES MEDICINALES DE LA GRAVIOLA DEMOSTRADAS CON
PRUEBAS DE LABORATORIO
Anticancerígeno
Antibacteriana:
Antiparasitario:
Antiulceroso:
Galactogogo:
Antiespasmódico:
Sedativo:
Antimalarico:
Antidiabético:
Vasodilatador:
Pectoral:
Amebicida:
Vermifugo
Insecticida
Hojas y brotes tiernos
Corteza
Semillas y cortezas
Corteza
Fruto
Hojas
Hojas
Hojas
Hojas
Hojas
Flores
Corteza
Corteza y hojas
Hojas y raíz
3.1.12 De los sustratos
Un sustrato es todo material sólido distinto del suelo, natural, de síntesis o residual,
mineral u orgánico, que, colocado en un contenedor, en forma pura o en mezcla, permite el
anclaje del sistema radicular de la planta, desempeñando, por tanto, un papel de soporte
para la planta. El sustrato puede intervenir o no en el complejo proceso de la nutrición
mineral de la planta.
http://www.infoagro.com/industria_auxiliar/tipo_sustratos2.htm.(2012).
Para obtener buenos resultados durante la germinación, el enraizamiento y el crecimiento de
las plantas, se requieren las siguientes características del medio de cultivo:
a) Propiedades físicas:
 Elevada capacidad de retención de agua fácilmente disponible.
 Suficiente suministro de aire.
 Distribución del tamaño de las partículas que mantenga las condiciones anteriores.
 Baja densidad aparente.
[39]
 Elevada porosidad.
 Estructura estable, que impida la contracción (o hinchazón del medio).
b) Propiedades químicas:
 Baja o apreciable capacidad de intercambio catiónico, dependiendo de que la
fertilización se aplique permanentemente o de modo intermitente, respectivamente.
 Suficiente nivel de nutrientes asimilables.
 Baja salinidad.
 Elevada capacidad tampón y capacidad para mantener constante el pH.
 Mínima velocidad de descomposición.
Cuando se añade un material rico en materia orgánica a un suelo que tiene plantas (la
rizosfera), suele haber cierta modificación en las raíces como respuesta a este fenómeno.
Esta respuesta puede manifestarse en un acortamiento o destrucción parcial de las
mismas, un descenso en el metabolismo de la planta, e incluso, afectar al crecimiento de
la misma (si la materia orgánica contiene compuestos que puedan ser dañinos). Este
efecto no suele ser irreversible y en poco tiempo, la planta vuelve a los niveles anteriores
o incluso superiores si la materia orgánica tiene un efecto fertilizante. De esta manera,
conocer el efecto de la naturaleza de la materia orgánica en el desarrollo radicular nos
daría información sobre su estado de estabilidad o madurez, ya que como ya sabemos, la
materia orgánica durante el compostaje cambia por la acción microbiológica.
El uso de EM en agricultura tiene efectos positivos, como: Promueve la germinación,
crecimiento, florecimiento, fructificación y maduración de las plantas cultivadas, realza la
capacidad fotosintética de las plantas, incrementa la eficiencia de la materia orgánica
[40]
como fertilizante, mejora las propiedades físicas, químicas y biológicas del suelo, suprime
patógenos y plagas del suelo. Webmaster, (2009).
Respecto a la composición de la gallinaza, es una tarea realmente complicada debido a la
variabilidad con la que se pueden presentar los residuos de excrementos de animales.
Gran parte del nitrógeno, fósforo y potasio que son ingeridos por los animales estarán
presenten en sus residuos. Así mismo los problemas que los residuos de gallinaza
causan a los suelos son: variación de pH, efectos depresivos, salinidad, metales pesados,
patógenos,
exceso
de
nitratos
y
nitritos,
retención
de
agua.https://aguasresiduales.wordpress.com/.../tratamiento-de-residuos-organic,
(2008).
Las excretas de aves (EA), presentan contenidos elevados de proteína cruda y son
fuente de minerales, pero tienen algunas limitantes como son presencia de objetos
extraños y residuos tóxicos, elevado contenido de minerales y nivel de humedad, emisión
de olores, etc. El uso de EA mejora la rentabilidad del sistema de producción al reducir
costos de producción. Ríos et al (2005).
Los olores generados en los sistemas de producción de aves pueden provenir de las aves
directamente, pero en su mayoría incluyendo el amonio, son subproductos naturales de la
degradación microbiana del ácido úrico y de las heces. La conversión del nitrógeno de las
heces en amonio varía en función de la temperatura, humedad y pH de las excretas y
tasa de ventilación. También se ha demostrado que los olores aumentan con el contenido
de humedad, de este modo, a mayor humedad de las excretas, se incrementa la
liberación de amonio y por ende mayor generación de olores. Las excretas más húmedas
tienen mayor degradación microbiana de ácido úrico excretado por las aves, lo que trae
por consecuencia una mayor emisión de amonio (Carey et al., 2004; Lacey et al., (2004).
[41]
Proyecto VIFINEX (2002), estudiaron que el estiércol no es recomendado como fuente
de materia orgánica para preparar medios de cultivo. La materia orgánica en el estiércol
es alta en proteínas y otros compuestos nitrogenados que con facilidad, son convertidos
en amonio y nitritos. Este proceso de conservación, que comienza tan pronto es
producido el estiércol, continúa a un ritmo rápido después que es mezclado con el
sustrato. Asimismo desde el punto de vista de estandarización del medio de cultivo, los
estiércoles varían considerablemente en composición y textura. El tipo de animal, su
edad, condición y la alimentación que consume afecta la calidad del estiércol siempre
como el caso de la gallinaza, el contenido de amonio es muy alto y causa pudrición y
daño al follaje. Una acumulación de nitrógeno amoniacal contribuyendo al contenido total
de sales del sustrato.
Montenegro (2001), indica que la incorporación de gallinaza aumenta las interacciones
biológicas del suelo, que conlleva mayor abundancia de microflora y micro fauna, las
cuales son esenciales para mantener un equilibrio biológico de sus componentes y
disminuir el número de ciertos patógenos que atacan al cultivo.
Guerrero, (1993), manifiesto que entre los substratos orgánicos más usados en las
camas de almácigo, se encuentran los siguientes: Estiércol, compost, humus de lombriz,
musgo o turba, rastrojos, guano de islas, follaje de árboles. La gallinaza (materia orgánica
proveniente de las heces de las aves de corral) es un apreciado abono orgánico, rico en
N (6%) que contiene todos los nutrientes indispensables para las plantas en mayor
cantidad que los estiércoles de otros animales. Durante el año se puede acumular
excremento de gallina de 60 a 70 Kg por animal; pero más común es que la gallinaza se
encuentre en mezcla con aserrín lo que disminuye su calidad, por ello es preferible
realizar el compostaje o fermentación antes de su incorporación directa al suelo.
[42]
Chávez, (1990), menciono que el sustrato es la tierra en la cual se cría las plántulas; que
pueden ser:
Substrato Natural: Como sustrato natural se puede aprovechar la tierra suelta o arenosa
de color cenizo a negro, que contiene los elementos necesarios en proporciones
naturales para un desarrollo normal de la planta.
Sustrato especial: Es la mezcla de tierra, arena y abono en proporciones reguladas por
la mano del hombre para satisfacer en forma óptima las necesidades de la planta.
Para optimizar los resultados, es conveniente que antes de su uso, las EA sean
sometidas a un procesamiento previo, que puede ser importante para la eliminación de
cuerpos extraños, destrucción de patógenos, mejorar el almacenamiento, características
de manejo y mantenimiento, así como para incrementar la palatabilidad y reducir los
olores (Fontenot, 1983; McCaskey y Anthony (1979).
Cualquier residuo vegetal o animal es materia orgánica, y su descomposición lo
transforma en materiales importantes en la composición del suelo y en la producción de
plantas. La materia orgánica bruta es descompuesta por microorganismos y transformada
en materia adecuada para el crecimiento de las plantas y que se conoce como humus.
Mejora las condiciones físicas, químicas y biológicas de los suelos. Los suaviza; permite
una aireación adecuada; aumenta la porosidad y la infiltración de agua, entre otros. Es
una fuente importante de nutrientes, a través de los procesos de descomposición con la
participación de bacterias y hongos, especialmente. Absorbe nutrientes disponibles, los
fija y los pone a disposición de las plantas. Fija especialmente nitrógeno (NO3, NH4),
fósforo (P04), calcio (Ca), magnesio (Mg), potasio (K), sodio (Na) y otros.
(http://www.infoagro.com/industria_auxiliar/tipo_sustratos.htm).
[43]
Según BURGES, RAW (1991), las bacterias son los más numerosos microorganismos
que viven libremente en el suelo. Tomados colectivamente, su serie de capacidades
autotróficas y heterotróficas no es igualada por ningún otro de los grupos principales de
seres vivientes del suelo. El número de bacterias presentes en un gramo de suelo abarca
desde un millón o menos hasta varios miles de millones, esto debido a las grandes
diferencias que existen entre los suelos y los beneficios de las bacterias para los cultivos
se relacionan con un incremento en la cantidad de raíces y un aporte importante de
elementos básicos para el desarrollo y producción.
Según ACUÑA et al (2006), la función básica de los hongos es la descomposición y
mineralización de los residuos orgánicos frescos o recién incorporados al suelo, por esto
se les conoce como descomponedores primarios que mediante su metabolismo libera
gran cantidad de enzimas capaces de destruir compuestos de estructuras complejas,
para así obtener su fuente energética y alimenticia. Los beneficios de los hongos para los
cultivos se relacionan con un incremento en la cantidad de raíces, una protección al
ataque de Fito patógenos y un aporte importante de elementos básicos para el desarrollo
y producción.
3.2 MARCO CONCEPTUAL
 Semilla: Es la unidad de reproducción sexual de las plantas y tienen la función de multiplicar
y perpetuar la especie a la que pertenecen. Además es uno de los elementos eficaces para
que
la
especie
se
disperse,
tanto
en
el
tiempo
como
en
el
espacio.http://www.euita.upv.es/varios/biologia/temas/tema_17htm.
 Viabilidad de las semillas. Es el periodo de tiempo durante el cual las semillas conservan su
capacidad para germinar. Es un periodo variable y depende del tipo de semilla y de las
condiciones de almacenamiento.
[44]
http://www.euita.upv.es/varios/biologia/temas/tema_17htm.
 La Germinación. Conjunto de fenómenos por lo que el embrión contenido en una semilla
recobra
su
actividad
vital
para
dar
lugar
a
una
plántula.http://ciencia.glosario.net/botanica/germinaci%F3n-8406.html.
 Latencia de semillas. Estado en el cual ciertas semillas vivas, a pesar de estar en
condiciones óptimas para su germinación, no germinan. CAMACHO, (1994).
 Germinación Epigea. En las plántulas denominadas epígeas, los cotiledones emergen del
suelo debido a un considerable crecimiento del hipocotílo (porción comprendida entre la
radícula y el punto de inserción de los cotiledones). Posteriormente, en los cotiledones se
diferencian cloroplastos, transformándolos en órganos fotosintéticos y actuando como si
fueran hojas. Presentan este tipo de germinación la semilla de cebolla, ricino, judía, lechuga,
mostaza blanca, etc.http://www.euita.upv.es/varios/biología/temas/tema_17.htm.
 Germinación hipógea. En las plántulas hipogeas, los cotiledones permanecen enterrados,
únicamente la plúmula atraviesa el suelo. El hipocotilo es muy corto, prácticamente nulo. A
continuación el epicotilo se alarga, apareciendo las hojas verdaderas, que son, en este caso,
los primeros órganos fotosintetizadores de la plántula. Este tipo de germinación lo presentan
las semillas de los cereales (trigo, maíz, cebada, etc.), guisante, haba, roble,
etc.http://www.euita.upv.es/varios/biología/temas/tema_17.htm.
 Plántula. El término plántula no ha sido bien definido y su conceptualización varía de un
autor a otro. Flores (1999), define Plántula como el estadío más joven del nuevo esporofito,
desde la protrusión de la radícula hasta la total liberación de las estructuras protectoras, la
abscisión de los cotiledones y el alcance de una altura de 50 cm.
 Variedad. Conjunto de plantas por la expresión de los caracteres resultantes de un cierto
genotipo
o
de
una
cierta
http://www.upov.int/es/about/upov_system.htm.
combinación
de
genotipos.
[45]
 Porcentaje de Germinación:
PIDINICO, (1981) citado por DELGADO (1996), nos dice que el porcentaje (%) de
germinación, es el porcentaje de semillas germinadas al término de una prueba de
germinación.
 Energía germinativa
PIDINICO (1981), citado por DELGADO (1996), nos dice que es la velocidad en la que tiene
lugar la germinación de las semillas en sucesivas fracciones de tiempo.
 Índice de Vigor o Vigor de las semillas
PERRY (1976), es un término común, usado para describir un amplio rango de
características de las semillas. Al respecto AGRAWAL (1980), opinó que, las pruebas de
vigor de semillas predicen el potencial de resistencia a varias condiciones de tiempo.
 Periodo de Latencia
Delgado, (1984), es un estado de vida en el que la semilla reduce sus funciones vitales al
mínimo, es decir que no se desarrolla pero respira fundamentalmente de manera que se
puede conservar el poder germinativo durante más tiempo. El estado latente debido a la
resistencia al agua (dureza de la cubierta seminal) puede durar varios años, hasta que
suficiente agua haya penetrado a la parte interior de la semilla para que germine.
 Variable. Una variable es una característica, propiedad ò atributo, con respecto a la cual los
elementos de una población difieren de alguna forma y para denotar a una cierta variable se
utilizan letras mayúsculas y se hace referencia a un valor en particular observable en un
elemento de la población, a que se le suele llamar dato. Di Rienzo (2008).
 Experimento. Se define como la acción de aplicar uno o más tratamientos a un conjunto de
unidades experimentales para valorar sus respuestas. Di Rienzo (2008).
 Unidad experimental. Se llama unidad o parcela experimental a la mínima porción del
material experimental sobre el cual un tratamiento puede ser realizado. Di Rienzo (2008).
[46]
 Tratamiento. Se denomina tratamiento al conjunto de acciones que se aplican a las
unidades experimentales con la finalidad de observar cómo responden a éstas. Di Rienzo
(2008).
 Repetición. Se llama así a cada realización de un tratamiento. Di Rienzo (2008).
 ANVA. Es un método estadístico cuya finalidad es probar hipótesis referidas a los parámetros
de posición de dos o más poblaciones en estudio. Di Rienzo (2008).
 Parámetro. Es un valor fijo que rara vez conocemos. Los parámetros son estimados a partir
de la muestras. Little (1989).
 Prueba de Duncan. Se usa para comparar cada promedio de tratamiento, con cada uno de
los otros promedios, es una prueba de rango múltiple.
http://books.google.com/books?que+es+la+prueba+de+duncan.
 Riego. Consiste en aportar agua al suelo para que los vegetales tengan el suministro que
necesitan favoreciendo así su crecimiento. Se utiliza en la agricultura y en jardinería,
htp:/www.wiquipedia.org (2013).
 Gallinaza. son excretas de aves ponedoras, en etapas de producción, son las mezcladoras
con otros materiales, htp:/www.wiquipedia.org (2013).
 Trasplante. Esta labor consiste en extraer las plántulas del almacigo para colocarlas en el
terreno definitivo, donde van a completar su periodo productivo, Cerna (2007).
 Siembra. Consiste como una labor o conjunto de labores por la que se ubica la semilla en la
cama del suelo o del sustrato en condiciones favorables para que germine y de nacimiento a
la plántula que se desee cultivar, Cerna (2012).
 Diseño experimental. Técnica estadística que permite identificar y cuantificar las causas de
un efecto dentro de un estudio experimental, htp:/www.wiquipedia.org (2013).
 Unidades experimentales. El conjunto de elementos sobre los cuales se hacen mediciones
y a los cuales un tratamiento puede ser asignados independientemente se denomina
unidades experimentales, htp:/www.wiquipedia.org (2013).
[47]
 Vivero. Conjunto de instalaciones agronómicas en el cual se planta, germinan, maduran u
endurecen todo de plantas.
 Control fitosanitario. Uso de sustancias destinados a prevenir, atraer, repeler o controlar
cualquier plaga de origen animal o vegetal durante la producción, almacenamiento,
transporte,
distribución
y
elaboración
de
productos
y
sus
derivados.
 Análisis de varianza. Técnica descubierta por Fisher, es un procedimiento aritmético para
descomponer una suma de cuadros total y demás componentes asociados con reconocidas
fuentes de variación, AREVALO (2013).
 Coeficiente de variación. Es una medida de variabilidad relativo que indica el porcentaje de
la medida correspondiente a la variabilidad de los datos, AREVALO (2013).
 Tierra negra. Otros nombres que se emplean como sinónimo de “tierra negra”, con “tierra
vegetal” o “tierra de cultivo”. Puede comprarse embolsada o en grandes cantidades que se
transportan frecuentemente en camiones volcadores.
www.jardineria.pro/varios/tierra-negra-para-el-jardin(2010).
 Suelo agrícola; es aquel que se utiliza en el ámbito de la productividad para hacer referencia
a un determinado tipo de suelo que es apto para todo tipo de cultivos y plantaciones, es
decir, para la actividad agrícola o agricultura. El suelo agrícola debe ser en primer lugar un
suelo fértil que permita el crecimiento y desarrollo de diferentes tipos de cultivo que sean
luego cosechados y utilizados por el hombre, por lo cual también debe ser apto por sus
componentes para el ser humano.http://www.definicionabc.com/medio-ambiente/sueloagricola.
CAPITULO IV
ANALISIS Y PRESENTACIÓN DE LOS RESULTADOS
4.1 SOBRE LOS SUSTRATOS EN ESTUDIADO
El análisis de suelo se realizó en el laboratorio de análisis de suelos, plantas, aguas y
fertilizantes, de la UNIVERSIDAD NACIONAL AGRARIA LA MOLINA, y su interpretación dio
como resultado lo siguiente:
4.1.1 Suelo agrícola
El sustrato presenta un pH de5.81 Moles de H+/It de solución, lo cual indica un pH
moderadamente acido, existiendo problemas de toxicidad de H, Fe y Mn.
La Conductividad eléctrica es de 0.22 ds/m-1, indicando que hay problemas muy ligeros de
salinidad.
No hay presencia de Carbonatos de calcio, porque su concentración es de 0.00%.
La concentración de materia orgánica es de 2.80%, que indica un porcentaje medio.
En relación al fosforo disponible, presenta una concentración de 32.7 ppm, indicando alta
concentración de este elemento.
En relación al potasio disponible, presenta una concentración de 35 ppm, indicando baja
La Capacidad de Intercambio Cationoco(CIC),es de 7.52 meq/100g. de suelo, lo cual indica que
tiene una capacidad de absorción de nutrientes en términos medio.
La concentración de elementos calcio es de 5.89 meq/100g. de suelo, que indica un nivel bajo.
[49]
En relación al magnesio, su concentración es de adsorbente de los colides del suelo es de 0.39
meq/100g. de suelo, indicando una baja concentración de este elemento.
La clase textural. Es Franco arenoso, con una textura moderadamente gruesa lo cual indica que
el suelo es muy suelto, permeable, oxidable y muy lixiviable, debido a su alta concentración de
arena ((60%).
4.1.2 Suelo agrícola + gallinaza
El sustrato presenta un pH de 6.88 Moles de H+/It de solución, lo cual indica un pH
moderadamente acido, existiendo problemas de toxicidad de H, Fe y Mn.
La Conductividad eléctrica es de 1.38 ds/m-1, indicando que hay problemas muy ligeros de
salinidad.
Hay presencia de Carbonatos de calcio, porque su concentración es de 0.20%.
La concentración de materia orgánica es de 2.87%, que indica un porcentaje medio.
En relación al potasio disponible, presenta una concentración de 7.56 ppm, indicando baja
La Capacidad de Intercambio Cationoco (CIC), es de 8.32 meq/100g. de suelo, lo cual indica que
La clase textural. Es Franco arenoso, con textura moderadamente gruesa lo cual indica que el
suelo es muy suelto, permeable, oxidable y muy lixiviable, debido a su alta concentración de
arena ((60%).
[50]
4.1.3 Tierra negra
ligeramente alcalino, por su alta demanda de calcio o inhabilidad para tolerar aluminio y selenio.
La Conductividad eléctrica es de 0.79 ds/m-1, indicando que hay problemas muy ligero de
salinidad.
La concentración de materia orgánica es de 6.28%, que indica un porcentaje alto.
En relación al fosforo disponible, presenta una concentración de 69.2 ppm, indicando alto
En relación al potasio disponible, presenta una concentración de 6.50ppm, indicando baja
concentración de este elemento
La Capacidad de Intercambio Catiónico (CIC), es de 14.40meq/100g.de suelo, lo cual indica que
meq/100g.de suelo, indicando una baja concentración de este elemento.
La clase textural. Es Arena Franca, textura gruesa lo cual indica que el suelo es muy suelto,
permeable, oxidable y muy lixiviable, debido a su alta concentración de arena (80%).
4.1.4 Tierra negra + gallinaza
moderadamente alcalino, existiendo la posibilidad de problemas con la solución del agua por las
raíces de la planta y toxicidad de nitrógeno.
La Conductividad eléctrica es de 3. 04 ds/m-1, indicando que hay problemas ligeros de salinidad.
[51]
La concentración de materia orgánica es de 5.74%, que indica un porcentaje alto.
En relación potasio disponible, presenta una concentración de 249.6 ppm, indicando alta
La Capacidad de Intercambio Catiónico CIC), (es de 10.08meq/100g. de suelo, lo cual indica que
La clase textural. Es Arena Franca, textura gruesa lo cual indica que el suelo es muy suelto,
permeable, oxidable y muy lixiviable, debido a su alta concentración de arena (70%).
4.2 SOBRE LAS VARIABLES EN ESTUDIO
Antes de realizar los análisis estadísticos de las variables se efectuó la prueba de homogenidad
de variancias según Lavene (Cuadro N° 40. del Anexo) y prueba de distribución normal según
Shápiro - Wilks (Cuadro
N° 41 del Anexo), encontrando homogenidad de variancias y
distribución normal respectivamente.
4.2.1 Porcentaje de germinación
En el cuadro N° 07, se muestra el análisis de varianza del Porcentaje de germinación,
observando alta diferencia estadística significativa en la fuente de variación tratamientos, el
coeficiente de variación es de 4.95% lo cual nos indica confianza experimental de los datos
obtenidos en el ensayo.
[52]
CUADRO Nº 07. ANÁLISIS DE VARIANZA DEL PORCENTAJE DE GERMINACIÓN DE
GUANABANA
FV
GL
SC
CM
FC
Tratamientos
Error
Total
3
16
19
654.96
160.37
815.33
2.18.32
10.02
21.79**
FT
0.05
3.24
0.01
5.29
**Alta diferencia estadística significativa al 1% de probabilidad
CV = 4.95%
Para mejor interpretación de los resultados, se hizo la prueba de rangos múltiples de Duncan
que se indican en el cuadro siguiente:
CUADRO N° 08. PRUEBA DE DUNCAN DEL PORCENTAJE DE GERMINACIÓN DE SEMILLAS DE
GUANÁBANA.
OM
1
2
3
4
Clave
T3
T1
T4
T2
Tratamientos
Descripción
Tierra negra
Suelo agrícola
Suelo agrícola + gallinaza
Promedio
76.79
67.52
58.38
51.80
Significación (*)
A
B
C
D
*Promedios con letras diferentes son discrepantes estadísticamente.
Según el cuadro N° 08 y gráfico 01, se observa que los promedios son discrepantes, donde T3
(Tierra negra) obtuvo el mayor porcentaje de germinación con 76.79% superando
estadísticamente a los demás tratamientos, seguido del T1 (Suelo agrícola + gallinaza) con
67.52% y T4 (Tierra negra + gallinaza) con 58.38% y en el último lugar el T4 (Suelo agrícola +
gallinaza) con un promedio de 51.80% de germinación.
[53]
GRAFICO N° 01. HISTOGRAMA DEL PORCENTAJE DE GERMINACIÓN DE SEMILLAS DE
GUANÁBANA.
4.2.2 Altura de Planta (cm)
En el cuadro N° 09, se reporta el análisis de varianza de la altura de planta (cm), donde
se observa una alta diferencia estadística en la fuente de variación tratamientos, el coeficiente de
variación es de 5.17% indicando confianza experimental de los resultados obtenidos.
CUADRO N° 09. ANÁLISIS DE VARIANZA DE LA ALTURA PROMEDIO DE PLÁNTULAS (cm) DE
GUANÁBANA
FV
GL
SC
CM
FC
Tratamientos
Error
Total
3
16
19
270.84
86.16
357.00
90.28
5.38
16.78**
FT
0.05
3.24
0.01
5.29
**Alta diferencia estadística significativa al 1% de probabilidad. CV = 5.17%
que se indica en el cuadro siguiente:
[54]
CUADRO N° 10. PRUEBA DE DUNCAN DE LA ALTURA PROMEDIO DE PLÁNTULAS (cm) DE
GUANÁBANA.
OM
1
2
3
4
Clave
T3
T4
T1
T2
Tratamientos
Descripción
Tierra negra
Suelo agrícola
Promedio (cm)
50.36
45.52
42.88
40.44
Significación (*)
A
B
BC
C
*Promedios con letras iguales no difieren estadísticamente.
Según el cuadro N° 10 y gráfico N° 02, se observa la presencia de dos grupos estadísticamente
homogéneos, donde el tratamiento T3 ocupó el 1° lugar del orden de mérito con promedio de
altura de planta igual a 50.36 (cm) superando estadísticamente a los demás tratamientos, donde
T2 ocupó el último lugar del orden de mérito con promedio de 40.44 cm respectivamente.
GRÁFICO N° 02. HISTOGRAMA DE ALTURA PROMEDIO DE PLÁNTULAS (cm.)
Gráfico N° 02
100
50.36
45.52
42.88
40.44
T3
T4
T1
T2
50
0
[55]
4.2.3 Número de hojas/planta
Según el cuadro N° 11, se indica el Análisis de Varianza del número de hojas, se observa
alta diferencia estadística para la fuente de variación tratamientos; el coeficiente de variación de
17.62% nos está informando que los datos sometidos a prueba tienen confianza experimental.
CUADRO N° 11. ANÁLISIS DE VARIANZA DEL N° DE HOJAS PROMEDIO EN PLÁNTULAS DE
GUANÁBANA
FT
0.05
0.01
3.24
5.29
FC
FV
GL
SC
CM
Tratamientos
Error
Total
3
16
19
3.46
1.02
4.48
1.15
0.06
** Altamente significativo al 1% de probabilidad
19.17**
CV = 17.62%
Para mejor interpretación de los resultados obtenidos, se hizo la prueba de rangos múltiples de
Duncan que se indican en el cuadro siguiente:
CUADRO N° 12. PRUEBA DE DUNCAN DE N° DE HOJAS PROMEDIO DE PLÁNTULAS DE
GUANÁBANA.
OM
1
2
3
4
Clave
T3
T4
T1
T2
Tratamientos
Descripción
Tierra negra
Suelo agrícola
Promedio
53
50
41
39
Significación (*)
A
AB
B
B
*Promedios con letras iguales no se diferencian estadísticamente.
Según el cuadro N° 12 y gráfico N° 03, se observa que el número de hojas obtenidos están
distribuidos en dos grupos estadísticamente diferentes, donde T3 y T4 conforman un grupo
Homogéneo cuyos promedios, son igual a 53 y 50 hojas respectivamente, mientras que T4, T1 y
T2 son estadísticamente iguales entre sí.
[56]
GRÁFICO N° 03. HISTOGRAMA DEL NÚMERO DE HOJAS/PLANTAS
4.2.4 Peso fresco promedio de hojas (gr.)
En el cuadro Nº 13, se reporta el análisis de varianza del peso promedio fresco de hojas,
se observa alta diferencia estadística significativa para la fuente de variación tratamientos,
asimismo el coeficiente de variación de 11.46%, indica confianza experimental de los resultados
obtenidos en este experimento.
CUADRO Nº 13. ANÁLISIS DE VARIANZA DEL PESO FRESCO PROMEDIO DE HOJAS (gr.) DE
PLÁNTULAS DE GUANÁBANA.
FV
GL
SC
CM
FC
Tratamientos
Error
Total
3
16
19
81.62
64.71
146.33
27.21
4.04
6.74**
Ft
0.05
3.24
0.01
5.29
** Alta diferencia estadística altamente significativa al 1% de probabilidad.
C.V: 11.46%
Para mejor interpretación de los resultados, se hizo rangos múltiples de la prueba de Duncan,
que se indican en el cuadro siguiente:
[57]
CUADRO Nº 14. PRUEBA DE DUNCAN DEL PESO FRESCO (gr.) PROMEDIO DE HOJAS DE
PLÁNTULAS DE GUANABANA.
O.M
1
2
3
4
Clave
T3
T2
T1
T4
Tratamientos
Descripción
Tierra negra
Suelo agrícola
Promedio (gr.)
20.28
18.00
17.26
14.62
Significación (*)
A
AB
BC
C
El cuadro Nº 14 y gráfico N° 04, se reporta la presencia de tres (3) grupos estadísticamente
homogéneos entre sí, donde T3 (Tierra negra) ocupó el 1° lugar del orden de mérito con 20.28 g
de peso fresco promedio de hojas, siendo estadísticamente igual a T2 (suelo agrícola +
gallinaza) quien ocupó el 2° lugar con promedio de 18.00 g superando estadísticamente a los
demás tratamientos. El T4 (Tierra agrícola + gallinaza), ocupó el último lugar con promedio de
14.62 g de peso fresco promedio de hojas, respectivamente.
GRÁFICO N° 04. HISTOGRAMA DEL PESO FRESCO DE HOJAS (gr.)
[58]
4.2.5 Peso Seco promedio de hojas (gr).
En el cuadro Nº 15, Se indica el análisis de varianza del peso seco promedio de hojas, se
observa que no existe diferencia estadística significativa en la fuente de variación tratamientos,
asimismo el coeficiente de variación de 19.22%, indica confianza experimental de los resultados
obtenidos en este experimento.
CUADRO Nº 15. ANÁLISIS DE VARIANZA DEL PESO SECO PROMEDIO DE HOJAS (gr.) DE
FV
GL
SC
CM
Fc
Tratamiento
Error
Total
3
16
19
7.89
13.24
21.13
2.63
0.83
3.17 NS
Ft
0.05
3.24
0.01
5.29
NS: No Significativo C.V.: 19.22%
Para mejor interpretación de los resultados, se hizo la Prueba de Duncan, que se indican en el
cuadro siguiente:
CUADRO Nº 16. PRUEBA DE DUNCAN DEL PESO SECO PROMEDIO DE HOJAS (gr.) DE
O.M
1
2
3
4
Clave
T3
T4
T1
T2
Tratamientos
Descripción
Tierra negra
Suelo agrícola
Promedio
5.70
4.90
4.22
4.14
Significación (*)
A
A
A
A
*Promedio con letras iguales no difieren estadísticamente
En el cuadro Nº 16 y gráfico N° 05, se puede apreciar que los promedios para esta variable
constituyen un solo grupo estadísticamente homogéneos entre sí, donde el tratamiento T2 se
mantiene en el 1° lugar con promedio de 5.70 gr. de peso seco promedio de hojas.
[59]
GRÁFICO N° 05. HISTOGRAMA DEL PESO SECO DE HOJAS (gr.)
4.2.6 Peso fresco promedio de tallos (gr.)
En el cuadro Nº 17, se reporta el Análisis de Varianza del peso fresco de tallos en el
cultivo de guanábana, se observa alta diferencia estadística significativa en la fuente de variación
tratamientos; el coeficiente de variación fue de 12.39%, que indica que hay confianza
experimental de los resultados obtenidos.
CUADRO Nº 17. ANÁLISIS DE VARIANZA DEL PESO FRESCO DE TALLOS DE PLÁNTULAS DE
GUANÁBANA.
FV
Tratamientos
Error
Total
GL
SC
CM
Fc
3
16
19
81.37
57.57
138.94
27.12
3.60
7.53**
Ft
0.05
3.24
0.01
5.29
** Alta diferencia estadística significativa. C.V:12.39%
Para mejor interpretación de los resultados se hizo la prueba de Duncan que se indican en el
cuadro siguiente:
[60]
Cuadro Nº 18. PRUEBA DE DUNCAN DEL PESO FRESCO PROMEDIO DE TALLOS EN
O.M
1
2
3
4
Clave
T3
T1
T4
T2
Tratamientos
Descripción
Tierra negra
Suelo agrícola
Tierra negra+ gallinaza
Promedio
18.80
14.25
14.14
14.02
Significación (*)
A
B
B
B
Según el cuadro Nº 18 y gráfico N° 06, se reporta que el promedio del peso fresco de tallos del
T3 fue de 18.80 gr., ocupando el 1° lugar del orden de mérito, superando estadísticamente a
los demás tratamientos que constituyeron el único grupo homogéneo, donde el tratamiento T2
ocupó el último lugar con promedio de 14.02 g de peso fresco de tallos respectivamente.
GRÁFICO N° 06. HISTOGRAMA DEL PESO FRESCO PROMEDIO DE TALLOS (gr.)
4.2.7 Peso seco promedio de tallos
En el cuadro N° 19, se indica el análisis de varianza del peso seco de promedios de
tallos, se observa que para la fuente de variación tratamientos, existe alta diferencia estadística
[61]
significativa; El coeficiente de variación, fue de 14,86% que está indicando confianza
experimental de los resultados obtenidos en el ensayo.
CUADRO Nº 19. ANÁLISIS DE VARIANZA DEL PESO SECO PROMEDIO DE TALLOS (gr.) DE
PLANTULAS DE GUANABANA.
FV
GL
SC
CM
Fc
Tratamientos
Error
Total
3
16
19
11.25
8.55
19.80
3.75
0.53
7.08**
Ft
0.05
3.24
0.01
5.29
** Alta diferencia estadística significativa. CV: 14.86%
que se indica en el cuadro siguiente:
CUADRO Nº 20. PRUEBA DE DUNCAN DEL PESO SECO PROMEDIO DE TALLOS DE
O.M
1
2
3
4
Clave
T3
T4
T2
T1
Tratamientos
Descripción
Tierra negra
Suelo agrícola
Promedio %
6.10
4.94
4.42
4.14
Significación (*)
A
B
B
B
Según el cuadro N° 20 y gráfico N° 07, se aprecia que el promedio del peso seco de tallos del
T3 fue de 6.10 gr. ocupando el primer lugar del orden de mérito, superando estadísticamente a
los demás tratamientos que constituyeron el único grupo homogéneo, donde el tratamiento T2
ocupo el último lugar con promedio de 4.14 gr. de peso seco de tallos respectivamente.
[62]
GRÁFICO N° 07. HISTOGRAMA DEL PESO SECO DE TALLOS (gr.)
4.2.8 Peso Fresco promedio de raíces (gr.) de plántulas de guanábana.
El cuadro N° 21, se indica el Análisis de Varianza del peso fresco promedio de raíces, se
observa alta diferencia estadística significativa para la fuente de variación tratamientos, siendo el
coeficiente de variación igual a 13.86% que indica confianza experimental de los resultados
obtenidos en el experimento.
CUADRO Nº 21. ANÁLISIS DE VARIANZA DEL PESO FRESCO PROMEDIO DE RAÍCES (gr.) DE
PLÁNTULAS DE GUANÁBANA
FV
GL
SC
CM
Fc
Tratamientos
Error
Total
3
16
19
87.49
75.56
163.05
29.16
4.72
6.18**
Ft
0.05
3.24
0.01
5.29
**Alta diferencia estadística significativa. CV = 13.86%
Para mejor interpretación de los resultados se hizo la prueba de Duncan que se indica el cuadro
siguiente:
[63]
CUADRO Nº 22. PRUEBA DE DUNCAN DEL PESO FRESCO PROMEDIO DE RAÍCES (gr.)
O.M
1
2
3
4
Clave
T3
T2
T1
T4
Tratamientos
Descripción
Tierra negra
Suelo agrícola
Promedio %
19.14
15.12
14.94
13.52
Significación (*)
A
B
B
B
En el cuadro N° 22 y gráfico N° 08, se aprecia que el tratamiento T3 (tierra negra) ocupó el
primer lugar del orden de mérito con promedio de peso fresco promedio de raíces igual a 19.14 g
superando estadísticamente a los demás tratamientos que conforman el único grupo homogéneo
que son: T2(suelo agrícola + gallinaza), T1 (suelo agrícola) y T4 (tierra negra + gallinaza), cuyos
promedios fueron: 15,12 g, 14.94 g, y 13.52 g respectivamente.
GRÁFICO N°08. HISTOGRAMA DEL PESO FRESCO DE RAÍCES (gr)
[64]
4.2.9 Peso seco promedio de raíces (gr.)
En el cuadro N° 23, se indica el análisis de varianza del peso seco promedio de raíces, se
observa en la fuente de variación tratamientos alta diferencia estadística significativa, siendo el
coeficiente de variación igual a 20.98%, que está indicando confianza experimental de los
resultados obtenidos en el estudio.
CUADRO Nº 23. PESO SECO PROMEDIO DE RAÍCES (gr.) DE PLÁNTULAS GUANÁBANA
FV
GL
SC
CM
Fc
Tratamientos
Error
Total
3
16
19
16.43
5.78
22.21
5.48
0.36
15.22**
Ft
0.05
3.24
0.01
5.29
** Alta diferencia estadística al 1% probabilidad. CV: 20.98%
Para mejor interpretación de los resultados se hizo la prueba de Duncan que indica el cuadro
siguiente:
CUADRO Nº 24. PRUEBA DE DUNCAN DEL PESO SECO PROMEDIO DE RAÍCES (gr.) DE
PLÁNTULAS DE GUANÁBANA
O.M
1
2
3
4
Clave
T3
T1
T4
T2
Tratamientos
Descripción
Tierra negra
Suelo agrícola
Promedio %
4.04
3.14
2.72
1.52
Significación (*)
A
B
B
C
*Promedios con letras iguales no difieren estadísticamente
Observando el cuadro N° 24 y gráfico N° 09, se aprecia que el tratamiento T3 (tierra negra)
ocupó el 1° lugar del orden de mérito con promedio de 4.04 superando estadísticamente a los
demás tratamientos donde T1 (suelo agrícola) y T4 (tierra negra + gallinaza) con promedios de
[65]
3.14 gr y 2.72 gr y T2 (suelo agrícola + gallinaza) en el último lugar con promedio de 1.52 gr
respectivamente.
GRÁFICO N° 09. HISTOGRAMA DEL PESO SECO DE RAÍCES (gr.)
CAPÍTULO V
DISCUSION
De acuerdo a los resultados, se procedió a realizar el análisis de varianza y prueba de DUNCAN,
cuyos resultados obtenidos en el experimento se interpreta en lo siguiente:
5.1 PORCENTAJE DE GERMINACIÓN
Estos resultados expuestos en el cuadro N° 01, donde el T3 (Tierra negra) obtiene el más alto
porcentaje de germinación (76.79); se le atribuye, según el análisis de suelo a la mejor
estabilidad de las propiedades físicas (Arena franca), pH neutro los que contribuyeron a
mantener una humedad constante, mayor aireación estando asociada a una buena acción
microbiana.
Esto
se
menciona
en:
http://www.hydroenvironment.com.mx/catalogo/index.php?main_page=page&id=33&chapt
er=2.
Además se puede atribuir a que las semillas se adaptaron al entorno ecológico del medio en que
fueron sembradas, debido a la capacidad de adaptación a diferentes condiciones y sus
características
de
precocidad.
(http://www.cipca.org.pe/cipca/informacion_y.../cafe.htm).Asimismo HARTMANN Y KESTER
(1990); reportan que la baja tasa de germinación puede deberse a las propiedades genéticas de
ciertos cultivares, desarrollo incompleto de la planta, daños durante la cosecha, procedimientos
inadecuados, almacenamiento impropio, enfermedades y envejecimiento.
Estos valores tuvieron similitud con los encontrados por Meza y Bautista (2000) en un trabajo
sobre efecto de remojo y escarificación en semillas de guanábana, donde al escarificar con ácido
sulfúrico por 1 minuto obtiene 77.66 % y si remojar alcanza 70.66 % de germinación. Teniendo
en cuenta el valor alcanzado de 76.79 % y 67.52 % de germinación para el sustrato tierra negra
[67]
y suelo agrícola al comparar con los valores de intervalos de germinación establecidos por
PIDINICO citado por DELGADO (1996),se comportan como Bueno; mientras que tierra negra +
gallinaza y suelo agrícola + gallinaza con 58.38% y 51.8% respectivamente se comportan como
Regular.
Igualmente según estos resultados podemos indicar que el uso de gallinaza tiene un efecto
negativo, al no encontrar una respuesta favorable en la germinación al combinar con tierra negra
y suelo agrícola, posiblemente a la presencia de sales producto de la descomposición de las
excretas de aves, las cualespresentan contenidos elevados de proteína cruda y son fuente de
minerales, pero tienen algunas limitantes como son presencia de objetos extraños y residuos
tóxicos, elevado contenido de minerales y nivel de humedad, emisión de olores, etc. RÍOS et al
(2005). Así mismo los problemas que los residuos de gallinaza causan a los suelos son:
variación de pH, efectos depresivos, salinidad, metales pesados, patógenos, exceso de nitratos y
nitritos,
retención
de
agua.https://aguasresiduales.wordpress.com/.../tratamiento-de-
residuos-organic. (2008).Al respecto MONTENEGRO (2001), señala que la incorporación de
gallinaza aumenta las interacciones biológicas del suelo, que conlleva mayor abundancia de
microflora y micro fauna, las cuales son esenciales para mantener un equilibrio biológico de sus
componentes. Sin embargo, la gallinaza de granjas avícolas a diferencia de otros estiércoles, el
N está disponible de inmediato por lo que existe el riesgo de quemar las plantas con aplicaciones
no adecuadas sobre las plantas (FAO, 2009).
5.2 ALTURA DE PLANTA (cm)
En el cuadro N° 10, estos resultados obtenidos, muestran a T3 (Tierra Negra) presenta el mayor
promedio de altura de plantaeste resultado se atribuye a la mejor presencia de nutrientes como
se observa en el análisis de suelos, donde la materia orgánica es alta (6,28%), el fósforo
disponible es alto (69.2 ppm), potasio disponible alto (650 ppm), pH neutro (7.10), alta CIC
(14.40) del cual 9.77 corresponde al Calcio y 3.62 al magnesio, además de tener una textura de
[68]
Arena franca, lo cual lo hace ideal para el crecimiento y desarrollo de esta especie, asegurando
además mejor repartición de nutrientes para la planta así como agua que asegura mejor
desenvolvimiento del proceso metabólico inicial, esto contribuye a obtener una mejor altura de
planta. Según http://www.hydroenvironment.com.mx/catalogo/index.yFIGUEROA (1998).
De otro lado, el T4 y el T2 presentan los menores promedios de altura de planta. Ambos
sustratos presentan en sus componentes a la gallinaza como se puede observar en el análisis
donde la tierra negra presenta una C.E de 0.79, mientras que la tierra negra más gallinaza
presenta 3.04 dS/m. También MONTENEGRO (2001), señala que la incorporación de gallinaza
aumenta las interacciones biológicas del suelo, que conlleva mayor abundancia de microflora y
micro fauna, las cuales son esenciales para mantener un equilibrio biológico de sus
componentes y disminuir el número de ciertos patógenos que atacan a un cultivo. Sin embargo,
la gallinaza de granjas avícolas a diferencia de otros estiércoles, el N está disponible de
inmediato por lo que existe el riesgo de quemar las plantas con aplicaciones no adecuadas sobre
las plantas (FAO, 2009).
5.3 NÚMERO DE HOJAS / PLANTA
En el cuadro N° 12 este resultado muestra dos grupos estadísticamente homogéneos donde se
refleja que T3 fue superior en número de hojas de guanábanaeste resultado se atribuye a la
mejor presencia de nutrientes como se observa en el análisis de suelos, lo cual contribuyó a
que se muestre mayor número de hojas/planta. Mientras que T4, T1 y T2presentan un menor
número de hojas fueron menores.
5.4 PESO FRESCO PROMEDIO DE HOJAS
Los resultados obtenidos en el cuadro N° 14, se muestran que para esta variable a T3 (Tierra
Negra) como mejor sustrato, este resultado se atribuyen a las condiciones que generan
[69]
presencia de nutrientes como se observa en el análisis de suelos buenas características, lo cual
lo hace ideal para el crecimiento y desarrollo de esta especie, asegurando además de una buena
aireación y disponibilidad de agua que asegura mejor desenvolvimiento del proceso metabólico
(fotosíntesis),
lo
cual
contribuye
a
obtener
un
mayor
área
foliar.
http://www.hydroenvironment.com.mx/catalogo/index. y FIGUEROA (1998).
5.5 PESO SECO PROMEDIO DE HOJAS
Según los resultados obtenidos en el cuadro N°16, se muestran que no existen diferencias
estadísticas significativas para el peso seco de hojas estudiado, indicándose un efecto igual
entre los cuatro tratamientos estudiados. El coeficiente de variabilidad de los análisis fue de
19.22% indicándose confianza experimental, en tal sentido que el diseño experimental empleado
en relación a ésta característica ha controlado la variabilidad inherente al material experimental.
Igualmente T3 ocupo el primer lugar con 5.70 gr. se atribuye probablemente a la presencia de
nutrientes como se observa en el análisis de suelos, lo cual lo hace ideal para el crecimiento y
desarrollo de esta especie, FIGUEROA (1998). En comparación con T2 quien fue el que ocupo
el último lugar con 4.14gr., este resultado se atribuye probablemente a una disminución
sustancial de agua y sustancias de reservas de la materia seca.
5.6 PESO FRESCO PROMEDIO DE TALLOS
Según los resultados obtenidos en el cuadro N° 18, se muestran que existen alta diferencias
estadísticas significativas para peso fresco de tallos en gr. entre los cuatro tratamientos (T1, T2,
T3, T4) estudiados, indicándose un efecto heterogéneo entre los cuatro tratamientos estudiados.
Asimismo se indican que el T3 ocupo el primer lugar con 18.80 gr. éste resultado se atribuye
probablemente a la presencia de nutrientes como se observa en el análisis de suelos, lo cual lo
hace ideal para el crecimiento y desarrollo de esta especie, asegurando además de una buena
[70]
(fotosíntesis), lo cual contribuye a obtener un mayor peso fresco por planta, es decir una mayor
acumulación de agua y sustancias de reserva.
5.7 PESO SECO PROMEDIO DE TALLOS
estadísticas significativas para peso seco de tallos en gr. entre los cuatro tratamientos (T1, T2,
El coeficiente de variabilidad
de los análisis fue de 14.86 gr. indicándose confianza
experimental, en tal sentido que el diseño experimental empleado en relación a ésta
característica ha controlado la variabilidad inherente al material experimental. Igualmente T3
ocupo el primer lugar con 6.10 gr. En comparación con T4 quien fue el que ocupo el último lugar
con 4.14gr., este resultado se atribuye este resultado se atribuye probablemente a la presencia
de nutrientes como se observa en el análisis de suelos, lo cual lo hace ideal para el crecimiento
y desarrollo de esta especie, FIGUEROA (1998). En comparación con T4 quien fue el que ocupo
el último lugar con 4.14gr., este resultado se atribuye probablemente a una disminución
sustancial de agua y sustancias de reservas de la materia seca.
5.8 PESO FRESCO PROMEDIO DE RAÍCES
estadísticas significativas para peso fresco de raíces en gr. entre los cuatro tratamientos (T1, T2,
Asimismo se indican que el T3 ocupo el primer lugar con 19.14 gr. éste resultado se atribuye
hace ideal para el crecimiento y desarrollo de esta especie, asegurando además de una buena
[71]
(fotosíntesis), lo cual contribuye a obtener un mayor peso fresco de raíces, es decir una mayor
acumulación de agua y sustancias de reserva.
5.9 PESO SECO PROMEDIO DE RAÍCES
estadísticas significativas para peso seco de tallos en gr. entre los cuatro tratamientos (T1, T2,
Asimismo se indican que el T3 ocupo el primer lugar con 4.04 gr. este resultado se atribuye
hace ideal para el crecimiento y desarrollo de esta especie, FIGUEROA (1998).En comparación
con T4 quien fue el que ocupo el último lugar con 1.52 gr., este resultado se atribuye
probablemente a una disminución sustancial de agua y sustancias de reservas de la materia
seca.
CAPÍTULO VI
CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
6.1 CONCLUSIONES
De los resultados obtenidos se asume las siguientes conclusiones:
1. El sustrato Tierra negra obtuvo el más alto porcentaje de germinación (76.79);
considerándolo como un buen sustrato para la propagación botánica de la guanábana.
2. De igual manera el sustrato Tierra Negra, producto de la descomposición de material
vegetal, presentó mejores resultados en el crecimiento inicial como: Altura de plántulas,
número de hojas, peso fresco y seco de hojas, tallos y raíces.
3. Asimismo, se puede observar el efecto negativo de la gallinaza al afectar la germinación y el
crecimiento de las plántulas, por la presencia de sales producto de la descomposición.
4. La germinación se inició a los 23 días extendiéndose hasta los 40 días, rango comprendido
para esta especie.
6.2 RECOMENDACIONES
1. El sustrato tierra negra como el más indicado ya que posee características apropiadas para
la propagación botánica de Annona muricata L “Guanábana”.
2. Continuar con estudios específicos sobre esta especie a nivel de campo definitivo.
3. Ejecutar trabajos de investigación sobre el sustrato Tierra negra en otras especies
amazónicas.
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http://www.infoagro.com/industria_auxiliar/tipo_sustratos.htm).
http://www.monografias.com/trabajos91/guanabana-usos- ...
ANEXOS
[79]
CUADRO Nº 25: DATOS CLIMATOLÓGICOS MENSUALES EN EL PERIODO EXPERIMENTAL:
JULIO 2012- MARZO 2013
MESES
JULIO
AGOSTO
TEMPERATURA °C
MAXIMA
MINIMA
31.3
22.3
HUMEDAD
RELATIVA %
85
PRECIPITACION
PLUVIAL (mm)
147.0
32.7
22.9
82
178.9
SETIEMBRE
33.4
22.9
81
107.7
OCTUBRE
33.5
23.0
82
141.5
NOVIEMBRE
33.9
23.2
81
320.0
DICIEMBRE
32.5
22.9
83
519.4
ENERO
31.6
23.3
81
402.9
FEBRERO
31.4
23.3
85
244.7
MARZO
31.9
23.5
85
434.6
FUENTE: SENAMHI – LORETO
[80]
CUADRO N° 26. ANALISIS DE CARACTERIZACIÓN DEL SUELO DEL AREA EXPERIMENTAL
[81]
CUADRO N° 27. COMPOSICION QUIMICA DE LA GALLINAZA
[82]
CUADRO N° 28. CROQUIS DEL EXPERIMENTO
DISTRIBUCIÓN DE BANDEJAS DE PLÁSTICO PARA LA PRUEBA DE GERMINACIÓN (Annona
muricata L.).
R4
R2
R5
R4
R2
R5
R3
R4
R2
R1
R5
R3
R4
R2
R1
R3
R1
R5
R3
R1
[83]
CUADRO N° 29. DISTRIBUCIÓN DE LAS PLANTAS EN MACETAS
[84]
DATOS ORIGINALES
CUADRO N° 30. DATOS ORIGINALES DEL % GERMINACIÓN DE SEMILLAS DE GUANÁBANA
Resúmenes
Tratamientos
T1
69.90
65.30
70.50
64.20
67.60
1
2
3
4
5
T2
56.60
46.50
51.30
55.70
48.90
T3
69.80
79.50
76.30
80.20
77.70
T4
45.30
67.10
63.50
56.40
59.20
CUADRO N° 31. DATOS TRANSFORMADOS AL ARC SEN X% DEL PORCENTAJE DE
GERMINACIÓN CULTIVO DE GUANÁBANA.
Resúmenes
T1
56.72
53.91
57.10
53.25
55.30
276.28
67.52
1
2
3
4
5
T.TRAT.
X-
Tratamientos
T2
T3
48.79
56.66
42.99
63.08
45.74
60.87
48.27
63.58
44.37
61.82
230.16
306.01
51.80
76.79
T. REPET.
T4
42.30
55.00
52.83
48.68
50.30
249.11
58.38
204.47
214.98
216.54
213.78
211.79
1061.56
63.91
CUADRO N° 32. DATOS ORIGINALES DE LA ALTURA DE PLANTA (cm) EN EL CULTIVO DE
GUANÁBANA.
Resúmenes
T1
45.0
43.8
40.8
42.0
42.8
214.4
42.88
1
2
3
4
5
TOTAL
X
Tratamientos
T2
T3
40.0
52.2
36.6
51.8
40.4
47.0
44.8
50.0
40.4
50.8
202.2
251.8
40.44
50.36
T. REPET.
T4
48.0
44.0
42.2
47.8
45.6
227.6
45.52
185.2
176.2
170.4
184.6
179.6
896.0
44.80
CUADRO N° 33. DATOS ORIGINALES DEL NÚMERO DE HOJAS/PLANTA EN EL CULTIVO DE
LA GUANÁBANA.
Resúmenes
1
2
3
4
5
T1
40
39
41
45
41
Tratamientos
T2
T3
43
54
37
57
33
46
44
54
40
53
T4
49
51
48
50
50
[85]
CUADRO N° 34. DATOS TRANSFORMADOS A LA RAÍZ DE X DEL NÚMERO DE HOJAS DE
GUANÁBANA
Resúmenes
1
2
3
4
5
T.TRAT.
X
T1
6.32
6.24
6.40
6.71
6.40
32.07
41
Tratamientos
T2
T3
6.56
7.35
6.08
7.55
5.74
6.78
6.63
7.35
6.32
7.28
31.33
36.31
39
53
T. REPET.
T4
7.00
7.14
6.92
7.07
7.07
35.20
50
27.23
27.01
25.84
27.76
27.07
134.91
1.39
CUADRO N° 35. DATOS ORIGINALES DEL PESO FRESCO PROMEDIO DE HOJAS EN EL
CULTIVO DE GUANÁBANA.
Resúmenes
1
2
3
4
5
TOTAL
X
T1
17.50
19.30
19.10
14.40
16.00
86.30
17.26
Tratamientos
T2
T3
16.30
19.10
17.00
17.30
16.10
24.00
20.40
19.80
20.20
21.20
90.00
101.40
18.00
20.28
T. REPET.
T4
14.20
13.40
16.10
14.40
15.00
73.10
14.62
67.10
67.00
75.30
69.00
72.40
350.80
17.54
CUADRO N° 36. DATOS ORIGINALES DEL PESO SECO PROMEDIO DE HOJAS EN EL CULTIVO
DE GUANÁBANA.
Resúmenes
1
2
3
4
5
TOTAL
X
T1
5.0
5.8
3.5
3.0
3.8
21.10
4.22
Tratamientos
T2
T3
4.0
5.8
3.4
4.8
5.1
7.0
4.4
6.1
3.8
4.8
20.70
28.50
4.14
5.70
T. REPET.
T4
4.8
4.0
5.1
4.4
6.2
24.50
4.90
19.60
18.00
20.70
17.90
18.60
94.80
4.74
[86]
CUADRO N° 37. DATOS ORIGINALES DEL PESO FRESCO PROMEDIO DE TALLOS EN EL
RESÚMENES
1
2
3
4
5
TOTAL
X
T1
15.2
12.90
14.10
14.00
15.20
71.40
14.28
TRATAMIENTOS
T2
T3
13.90
17.20
14.40
16.20
14.80
24.10
15.10
18.80
11.90
17.70
70.10
94.00
14.02
18.80
T. REPET.
T4
13.60
12.30
14.30
14.10
16.40
70.70
14.14
59.90
55.80
67.30
62.00
61.20
306.20
15.31
CUADRO N° 38. DATOS ORIGINALES DEL PESO SECO PROMEDIO DE TALLOS EN EL
Resúmenes
1
2
3
4
5
TOTAL
X
T1
4.2
4.9
3.8
3.6
4.2
20.70
4.14
Tratamientos
T2
T3
3.9
5.2
3.4
5.2
4.8
7.6
5.1
6.8
4.9
5.7
22.10
30.50
4.42
6.10
T4
4.6
4.3
5.3
5.1
5.4
24.70
4.94
T.
REPET.
17.90
17.80
21.50
20.60
20.20
98.00
4.90
CUADRO N° 39. DATOS ORIGINALES DEL PESO FRESCO PROMEDIO DE RAÍCES EN EL
Resúmenes
1
2
3
4
5
TOTAL
X
T1
18.2
14.0
15.1
13.6
13.8
74.7
14.94
Tratamientos
T2
T3
15.3
19.0
11.5
17.4
15.2
23.0
16.3
19.8
17.3
16.5
75.6
95.7
15.12
19.14
T. REPET.
T4
12.6
11.3
16.5
12.7
14.5
67.6
13.52
65.1
54.2
69.8
62.4
62.1
313.6
15.68
[87]
CUADRO N° 40. DATOS ORIGINALES DEL PESO SECO PROMEDIO DE RAÍCES EN EL
CULTIVO DE GUANABANA.
Resúmenes
1
2
3
4
5
TOTAL
X
T1
3.2
4.0
3.1
2.6
2.8
15.7
3.14
Tratamientos
T2
T3
1.3
3.8
1.5
3.4
1.7
5.7
1.8
3.8
1.3
3.5
7.6
20.0
1.52
4.04
T. REPET.
T4
2.6
2.3
2.5
2.7
3.5
13.6
2.72
10.9
11.2
13.0
10.9
11.1
57.1
2.86
CUADRO N° 41. PRUEBA DE HOMOGENEIDAD DE LAVENE (MODIFICADO)
Variables
% de Germinación
Altura de planta
Nro. de hojas/planta
Peso fresco prom.hojas
Peso seco prom. hojas
Peso fresco prom. tallos
Peso seco prom. tallos
Peso fresco prom. raíces
Peso secoprom. raíces
Homogeneidad
Lavene
Anva modificado
Anva modificado
Anva modificado
Anva modificado
Anva modificado
Anva modificado
Anva modificado
Anva modificado
Anva modificado
Significación
Conclusión
No significativo
No significativo
No significativo
No significativo
No significativo
No significativo
No significativo
No significativo
No significativo
Varianzas son homogéneas
Según este cuadro, se aprecia que para todas las variables evaluadas, según la prueba de Lavene,
las varianzas son homogéneas.
[88]
CUADRO N° 42. PRUEBA DE NORMALIDAD DE SHAPIRO-WILKS (MODIFICADO)
Variables
% de Germinación
Altura de planta
Nro. de hojas/planta
Peso fresco prom. hojas
Peso seco prom. hojas
Peso fresco prom. tallos
Peso seco prom. tallos
Peso fresco prom. raíces
Peso seco prom. raíces
Normalidad de
Shapiro
Wc˃Wt
W˃Wt
Wc˃Wt
Wc˃Wt
Wc˃Wt
Wc˃Wt
Wc˃Wt
Wc˃Wt
Wc˃Wt
Significación
significativo
significativo
significativo
significativo
significativo
significativo
significativo
significativo
significativo
Conclusión
Distribución normal
Distribución normal
Distribución Normal
Según la prueba de Shapiro, se establece que para todas las variables evaluadas en el presente
experimento, todas tuvieron distribución normal según los cálculos de W (shapiro) donde
primeramente se sacó el W calculado y comparado con W tabular y luego fueron comparados para
luego decidir las hipótesis adecuadas.
[89]
IMÁGENES DE LAS ACTIVIDADES REALIZADAS
FOTO 01: Recoleccion del fruto de guanabana
FOTO 02:Obtención de las semillas a partir del fruto
[90]
FOTO 03: Semillas limpias de Annona muricata
FOTO 04. Distribución de los tratamientos para las pruebas de germinación
[91]
FOTO 05: Siembra de semillas de Annona muricata
FOTO 06: Germinación epigea de semillas de Annona muricata
[92]
FOTO 07: Formación de primeras hojas de Annona muricata
FOTO 08: Distribución de plántulas en diferentes tratamientos
[93]
FOTO 09: Distribución de los cuatro tratamientos
FOTO 10: Evaluación final de las plántulas de Annona muricata L.
[94]
FOTO 11: Tratamiento tierra negra mostrando mejor desarrollo
FOTO 12: Toma de datos del peso de tallos
[95]
FOTO 13: Toma de datos del peso de hojas
FOTO 14: Toma de datos del peso de raíces

“PROPAGACIÓN BOTANICA DE Annona muricata L. “Guanabana

Transcripción

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