PRESENCIA DE ANTICUERPOS CONTRA Ehrlichia canis EN
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PRESENCIA DE ANTICUERPOS CONTRA Ehrlichia canis EN
PRESENCIA DE ANTICUERPOS CONTRA Ehrlichia canis EN PERROS SOSPECHOSOS, EN EL MUNICIPIO DE CAJEME, POR MEDIO DE LA TÉCNICA DE INMUNOFLUORESCENCIA INDIRECTA TESIS QUE PARA OBTENER EL TÍTULO DE MÉDICO VETERINARIO ZOOTECNISTA PRESENTA: MARÍA JESÚS LEAL ACOSTA MC. RAMÓN MIGUEL MOLINA BARRIOS MD. ISABEL ANGELES DE LA LLAVE CD. OBREGÓN, SONORA; FEBRERO DE 2004 ii DEDICATORIAS A DIOS principalmente porque me diste la Fé suficiente en cada momento de mi vida, ya que gracias a tu existencia y a tu amor hiciste posible uno más de mis sueños, gracias Señor por darme la vida, el coraje y la fuerza para vencer cualquier obstáculo. A los maravillosos seres que me dieron la dicha de ser su hija, MIS PADRES: Ing. Rafael Leal Maldonado y Sra. María Acosta de Leal; por ayudarme y acompañarme en cada paso que di, por enseñarme que lo más importante no es tropezar y caer, sino levantarme y apuntar hacia la cima, por estar conmigo en cada segundo de mi vida a pesar de la distancia, por enseñarme siempre a mirar hacia la luna y por darme las alas y enseñarme a volar. ¡Los adoro papitos!! A mis HERMANOS Carmina y Fausto por estar conmigo en cada momento de mi vida, por brindarme su cariño y ternura, por tenerme siempre en su corazón y en sus oraciones, gracias por ser mis hermanos. A mi NOVIO Carlos Rafael Fonseca López, ya que con tu ayuda he culminado con una etapa tan importante y especial en mi vida, gracias por estar a mi lado en Leal A. Ma. Jesús iii cualquier situación, por darme la fuerza, valentía y el amor para enfrentar la vida, por ser mi mejor amigo y por ser como eres . ¡Te amo Bebé!! A mi primo Luisito , a ti pequeño angelito por compartir con nosotros todas tus alegrías y sonrisas, ya que gracias a tu llegada has traído una gran felicidad en nuestros corazones y con tu presencia iluminas nuestras vidas, haciéndonos conocer fragmentos del cielo. ¡Te quiero chiquillo!! Al Ing. Rodrigo Gonzáles y Sra. Irma Vega, Carolina y Rodrigo, por abrirme las puertas de su casa y de su corazón, por ser como unos padres para mí, por darme la confianza de ganarme su cariño y entrar a su familia, por todos sus consejos, por darme su consuelo cuando lo necesité, por esto y más siempre los tendré presentes. A Jordan por ser mi mejor amigo, mi guía y mi compañero día, noche y en cada momento; estés donde estés siempre te llevaré conmigo por el simple hecho de plasmar tus huellitas en mi vida. A mis dos amigas de toda la vida Erika Von Borstel y Cristina Serrano por todos esos momentos que hemos compartido juntas, por sus consejos y disponibilidad. A mis demás amigochos de la carrera: José, Clemente, Gil, Edgar, Mario Zazueta, Mario Rochin, Carlos Ávila, Manuel Nieblas, Marcos Espinoza, Eleazar, Paul, Alfonso Peraza, Fabián Barreras y muchos más, ya que me dieron su amistad y en ustedes aprendí a ver la vida en diferentes dimensiones. Leal A. Ma. Jesús iv AGRADECIMIENTOS A Dios por guiar mis pasos en todo momento y tomarme de su mano para llevarme al lugar correcto y sobre todo por darme la vida y salud para estar donde ahora estoy. A mi Familia, por obsequiarme las herramientas indispensables para salir adelante, por tenerme la confianza y darme la seguridad para elegir mi destino. A mis ASESORES: M.C. Ramón Miguel Molina Barrios y M.D. Isabel Angeles De la Llave, por apoyarme en mi trabajo, por compartir conmigo su sabiduría, por abrirme las puertas en cada instante, y por permitirme aprender de ustedes. A mis Revisores: M.V.Z. Juan Manuel Martínez Montes, M.V.Z. Javier Rolando Reyna Granados y M.V.Z. Pablo Luna Nevárez; por ayudarme a culminar esta etapa y poder contar con sus comentarios en cada momento. A los Médicos, Dra. Victoria García Sánchez, Dr. Marco Antonio Valdez Zúñiga, Dr. Leopoldo Zavala Leal, Dra. Gabriela Cervantes, por proporcionarme su ayuda incondicional y estar en la mejor disposición de ayudar. Leal A. Ma. Jesús v A todos mis maestros de la carrera, en especial al M.V.Z José Ma. Aceves, M.V.Z. Alberto Torres, M.V.Z. Javier Munguía, M.V.Z. Guadalupe Méndez, M.V.Z. Carlos Aguilar, M.V.Z. Ramón Molina, M.V.Z. Isabel Angeles, M.V.Z. Ana Laura Miranda, Q. Jorge Robles, M.V Z. Fernando Calderón por compartirme sus conocimientos del divino tesoro del saber. Leal A. Ma. Jesús vi CONTENIDO ÍNDICE DE CUADROS...........................................................................................viii RESUMEN...............................................................................................................ix I. INTRODUCCIÓN .................................................................................................1 II. REVISIÓN DE LITERATURA...............................................................................4 2.1 Historia y distribución de la enfermedad ...........................................................4 2.2 Sinónimos ..........................................................................................................5 2.3 Etiología..............................................................................................................6 2.4 Epizootiología ....................................................................................................7 2.5 Patogénesis .......................................................................................................8 2.6 Signos clínicos ................................................................................................11 2.7 Diagnóstico ......................................................................................................15 2.8 Diagnóstico diferencial.....................................................................................17 2.9 Tratamiento.......................................................................................................18 2.10 Prevención .....................................................................................................21 2.11 Pronóstico.......................................................................................................21 2.12 Importancia en la salud pública......................................................................22 Leal A. Ma. Jesús vii III. MÉTODOS Y MATERIAL................................................................................24 3.1 Localización del sitio experimental ..................................................................24 3.2 Metodología .....................................................................................................24 3.2.1 Determinación del tamaño de la muestra .....................................................24 3.2.2 Técnica de Inmunofluorescencia Indirecta ...................................................25 3.3 Variables a analizar..........................................................................................26 3.4 Análisis Estadístico de la Información .............................................................26 IV. RESULTADOS Y DISCUSIÓN ........................................................................27 V. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES.....................................................33 VI. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS.................................................................35 Leal A. Ma. Jesús viii INDICE DE CUADROS Gráfica No. 1.Distribución porcentual de los resultados de la técnica de inmunofluorescencia indirecta por Ehrlichia spp.....................................................30 Gráfica No. 2 Principales signos encontrados en los perros seleccionados como sospechosos a Ehrlichiosis..........................................................................31 Gráfica No.3 Principales signos asociados a Ehrlichiosis presentados en los perros confirmados como positivos .......................................................................32 Leal A. Ma. Jesús ix RESUMEN María Jesús Leal Acosta. Presencia de anticuerpos contra Ehrlichia canis en perros sospechosos, en el municipio de Cajeme, mediante la técnica de Inmunofluorescencia indirecta. Asesores: M.C. Ramón Miguel Molina Barrios y M.D. Isabel Ángeles De la Llave. El objetivo de esta investigación fué determinar la presencia de anticuerpos en perros sospechosos a Ehrlichia canis por medio de la técnica de Inmunofluorescencia indirecta, para finalmente obtener un porcentaje de perros reactores positivos a la prueba. El muestreo fue realizado en los meses de octubre y noviembre del año 2003. Para ello se utilizaron 60 animales, de los cuales se obtuvieron 49 animales positivos y 11 negativos a E. canis, representando 81.66 y 18.30%, respectivamente. De acuerdo a los resultados obtenidos se llega a la conclusión que es posible realizar un diagnóstico presuntivo de ehrlichiosis basándose únicamente en la historia clínica e inspección física del paciente. El hacer uso de otros métodos de diagnóstico como la biometría hemática nos da un resultado más seguro y se puede dar un diagnóstico definitivo y así dar el tratamiento correcto y la atención merecida al paciente y de una forma concientizar al propietario sobre la importancia de combatir al vector causal de la enfermedad. Leal A. Ma. Jesús I. INTRODUCCIÓN La erliquiosis canina monocítica es una enfermedad infectocontagiosa de curso agudo, subclínico o crónico. Esta rickettsia afecta a perros y es transmitida por la garrapata Rhipicephalus sanguineus, siendo considerada además como una zoonosis (Romano, 1998). Es una enfermedad que se ha distribuido por todo el mundo y adquirió gran importancia durante la guerra de Vietnam, cuando una gran proporción de perros militares contrajeron esta enfermedad (Birchard y Sherding, 1996). En Alemania se realizó un estudio en los que se detectaron 211 perros infectados con E.canis durante 1997, de los 53 epidemiológicamente analizados, 19 de ellos habían viajado con sus dueños a áreas endémicas; las garrapatas encontradas en 4 de estos perros determinaron ser Rhipicephalus sanguineus (Gothe, 1998). Este artículo concuerda que en otras partes del mundo existe la enfermedad y su modo de propagarse a otros países es factible. En la ciudad de Mexicali B.C. Méx. se realizó un estudio en los meses comprendidos de septiembre a diciembre de 1997, donde se evaluaron 30 perros, de los cuales el 93.3% respondieron positivamente a E.canis ( Romano, 1998). En el estudio que se realizó durante el verano pasado en la región del mayo para determinar la presencia y frecuencia de anticuerpos contra E.canis se tomó una muestra de 30 animales sospechosos, de los cuales 21 fueron positivos, lo que Leal A. Ma. Jesús 2 indica que el 70% de la población posee anticuerpos contra la enfermedad (Silva, 2003). Los caninos, como todas las especies domésticas, pueden afectarse por problemas sanitarios, a nivel urbano es frecuente la presencia de garrapatas, las cuales pueden ser portadoras de diferentes agentes patógenos. La convivencia perro, garrapata, hombre, es estrecha en algunas áreas de la ciudad, lo que favorece a que los agentes que porta la garrapata también afecten a los humanos. Es necesario obtener información sobre los vectores y su efecto en los huéspedes, por lo cual es importante identificar los géneros de garrapatas presentes en los perros del municipio y de igual manera determinar la presencia y la frecuencia de anticuerpos contra Ehrlichia canis. La infestación de garrapatas en los cánidos es un tema de gran importancia, ya que son transmisoras de algunas enfermedades causadas por rickettsias que pueden perjudicar tanto al hombre como a los mismos animales. La ehrlichiosis es considerada una zoonosis, ya que es una enfermedad que se puede transmitir en una forma natural entre los animales vertebrados y el hombre, afectando así a personas de cualquier edad y sexo (García 1990, Vela 1997 y Bennenson 1997). También es importante resaltar que las enfermedades zoonóticas son diferentes al resto de enfermedades infecciosas por su idiosincrasia, por ello su prevención y Leal A. Ma. Jesús 3 control requieren estrategias muy particulares basadas en profundas investigaciones considerando sus diferencias sociales, climáticas y económicas (Gil y Samartino, 2000). Debido a esto, es conveniente realizar estudios en Cd. Obregón para encontrar anticuerpos complementándose el diagnóstico con serología, mediante la prueba de inmunofluorescencia indirecta (IFA). El objetivo de presente trabajo fue determinar la presencia de anticuerpos contra Ehrlichia canis en perros sospechosos, en el municipio de Cajeme, mediante la técnica de Inmunofluorescencia indirecta, esperando encontrar al menos un 10% del total de la población muestreada con anticuerpos contra Ehrlichia canis. Leal A. Ma. Jesús 4 II. REVISIÓN DE LITERATURA 2.1 Historia y distribución de la enfermedad Las enfermedades por rickettsias son muy comunes en los perros y raras en los gatos. La mayoría de las rickettsiosis son transmitidas por las garrapatas. Debido a que estas enfermedades son agudas en las áreas endémicas, hay una gran prevalencia durante o después de la temporada de calor, cuando hay mas garrapatas (Birchard, 1996). Las rickettsias fueron descubiertas por Ricketts en 1907 en la Fiebre de las Montañas Rocosas. Las denominaciones “rickettsias” fue inducida por Da Rocha Lima, quien en memoria de los investigadores Ricketts y Prowazek, muertos a causa del tifus exantemático en 1910 y 1915 respectivamente, puso el nombre de rickettsia proawzeki al agente productor, descubierto por el en 1916, de una enfermedad febril transmitida al hombre por piojos. Los primeros informes de esta enfermedad procedieron de Argelia, África del Sur, Kenya y Rhodesia (19351938). En el año de 1962 se diagnosticó también por primera vez en otras zonas de África, en la India, Antillas Holandesas y USA. En 1962 la E. canis fue reconocida por primera vez en los Estados Unidos. Hacia fines de la década de los Leal A. Ma. Jesús 5 60’s se definió el papel patogénico significativo de esta ricketsia cuando se pudo establecer su participación etiológica en la pancitopenia canina tropical (Beer 1987, Ettinger 1992). La enfermedad se presenta en los países tropicales y subtropicales del mundo donde hay existencia de la garrapata marrón del perro, excepto para Australia donde la infección no fue documentada (Ettinger, 1992). La ehrlichiosis canina se ha distribuido por todo el mundo y adquirió gran importancia durante la guerra de Vietnam, cuando una gran proporción de perros militares contrajeron esta enfermedad. Debido a su naturaleza crónica e insidiosa, la ehrlichiosis aparece durante todo el año y no solo durante los meses calurosos (Birchard y Sherding, 1996). 2.2 Sinónimos Los sinónimos que se le han utilizado en la literatura para esta alteración incluyen Enfermedad del perro rastreador, Pancitopenia tropical canina, Fiebre hemorrágica canina y Tifus canino. Enfermedad sangrante del Nairobi, Fiebre Canina Lahore, Rickettsiosis canina (Birchard y Sherding, 1996; Tilley et al.,1997). Leal A. Ma. Jesús 6 2.3 Etiología Esta especie es causada por la especie Ehrlichia canis, organismo de orden Rickettsiales, familia Rickettsiaceae, tribu Ehrlichiae y género Ehrlichia (Scanlan, 1988). Las rickettsias forman un grupo de bacilos, pequeños, cocoides y gram negativos, parásitos obligados de la células eucarióticas, los cuales son transmitidos fundamentalmente por artrópodos hematófagos (garrapatas, pulgas, ácaros) (Nicolet, 1985). El agente causal afecta a los monocitos, pero también a otros leucocitos de la sangre, los que son descubiertos con las tinciones de Giemsa (color rojo), Leishman y Romanowsky. La E. canis tiene forma cocoide; su tamaño varía mucho en el transcurso del ciclo de desarrollo (oscila entre 0.5 y 10 um). Este agente no se multiplica en embrión de pollo, ni en animales de laboratorio (Beer, 1987; Ettinger, 1992). La enfermedad es causada por Ehrlichia canis, este organismo es un miembro de la familia rickettsiacea. Se localiza intracitoplasmáticamente y se reproduce por fisión binaria (Scanlan, 1988). Leal A. Ma. Jesús 7 Existen otras variedades de Ehrlichia que afectan a los perros, E. platys que produce la trombocitopenia cíclica infecciosa del perro, E. equi, E. ewingii y E. chaffeensis que también puede infectar al perro con manifestaciones subclínicas o clínicas más benignas. La E .canis es un microorganismo que se observa en forma individual (cuerpo elemental) o en racimos (mórulas), en citoplasma de leucocitos infestados principalmente monocitos y linfocitos. Morfológicamente las otras variedades son similares a Ehrlichia canis; sin embargo, E. platys infecta específicamente a las plaquetas y E. equi a neutrófilos y eosinófilos. La E. canis es considerada agente causal de Ehrlichiosis humana (García, 1996; Birchard y Sherding, 1996). Los leucocitos albergan la E. canis como inclusiones citoplásmicas y en la primera fase de la enfermedad como corpúsculos iniciales; luego en la forma llamada mórula, a partir de la cual se forman las colonias, la constituyen la tercera forma (Beer, 1987). 2.4 Epizootiología Las garrapatas se infectan con la E.canis cuando se alimentan en perros que son rickettsémicos durante las 2 primeras semanas de comenzada la enfermedad. Los organismos se multiplican en los hemocitos, células del intestino delgado y de las glándulas salivales de las garrapatas infectadas. El agente puede persistir en las garrapatas durante más de 5 meses. Las garrapatas no transmiten la E. canis por Leal A. Ma. Jesús 8 vía transovárica. Esta transmisión toma lugar cuando la garrapata infectada ingiere sangre y sus secreciones salivales que contienen al organismo contaminan el sitio de alimentación. La E. canis puede ser transmitida por transfusión de sangre de un perro infectado a otro susceptible. Este mecanismo se ha documentado también en perros infectados crónicamente durante más de 5 años. Sin embargo, estos animales enfermos no actúan como reservorio para la transmisión natural a otros perros (Ettinger, 1992). El vector y reservorio es la garrapata café común en el perro (Rhipicephalus sanguineus), que transmite microorganismos por lo menos durante cinco meses después de haberse alimentado. La ehrlichiosis, así como otras enfermedades producidas por rickettsias, pueden ser transmitidas en forma iatrógena. El microorganismo se transmite a través de la mordida de las garrapatas, las cuales ingieren el microorganismo de un huésped infectado; el período de incubación de la Ehrlichia es de 7 a 21 días (Birchard y Sherding, 2002). Debido a que R. sanguineus acarrea otros microorganismos, los perros con ehrlichiosis pueden estar infectados de forma concomitante con Babesia y Haemobartonella (Tilley et al., 1997). 2.5 Patogénesis La infección de los hospederos vertebrados se presenta cuando la garrapata ingiere sangre como alimento y las secreciones salivales contaminan el sitio de Leal A. Ma. Jesús 9 alimentación. La Ehrlichiosis canina puede categorizarse por tres estadíos sucesivos: la fase aguda, subclínica y crónica (Heredia, 1998, Richard, 1992). Fase Aguda: Es variable en duración (2 a 4 semanas) y en intensidad (leve a grave). El microorganismo se duplica en las células mononucleares, principalmente en el Sistema Fagocítico mononuclear (SFM) de nódulos linfáticos, bazo, hígado y médula ósea, dando como resultado hiperplasia de esta línea celular. La trombocitopenia por destrucción periférica de plaquetas, con anemia o sin ella, y leucopenia (Birchard y Sherding, 1996). La trombocitopenia es un hallazgo relativamente constante en todo el curso de la ehrlichiosis, pero la ausencia de trombocitopenia en perros con infección por E.canis se está reconociendo con creciente frecuencia. Parece ser que varios mecanismos, entre ellos menor sobrevida plaquetaria, secuestro y destrucción de plaquetas en el bazo, daño plaquetario por complejos inmunes y consumo de plaquetas por vasculitis, contribuirían a la trombocitopenia (Richard, 1992). El número de linfocitos varía durante la fase aguda, sin embargo la utilización de los leucocitos circulantes o el secuestro por mecanismos inmunológicos puede disminuir su contabilidad. El decremento en la línea roja puede llegar a ser aparentemente como resultado de la respuesta inflamatoria (Heredia, 1998). Leal A. Ma. Jesús 10 La mayoría de los perros se recuperan de 1 a 2 semanas sin tratamiento, aunque presentan infección persistente y algunos desarrollan el cuadro crónico 1 a 6 meses más tarde (Ettinger, 1992 ). Fase Subclínica: Asociada a la persistencia del antígeno en las células infectadas obra como estímulo para el sistema inmune. Los títulos de anticuerpos continúan elevándose y el animal inmunocompetente por lo regular elimina al organismo durante esta fase de la enfermedad. Los perros que no eliminan la infección progresan hasta la fase crónica. La fase subclínica usualmente ocurre 6 a 9 semanas después de la infección inicial y dura entre 1 y 4 meses. Los perros pueden eliminar el microorganismo durante esta fase, o la infección progresa, como se indica en el párrafo anterior (Ettinger 1992; Birchard y Sherding, 1996). En un apartado se habla sobre la fase subclínica en perros Beagle infectados con E. canis para experimentación y observa la ausencia de signos clínicos durante este período; sin embargo, los hallazgos hematológicos mostraron una ligera trombocitopenia con incremento en el tamaño de las plaquetas, ninguno de los perros fueron leucopénicos ni neutropénicos, mostrando títulos altos en contra de E.canis. Los cambios hematológicos son similares a los que se presentan en la fase aguda (Heredia, 1998, Waner et al.,1997). Fase Crónica: La ehrlichiosis crónica ocurre en los perros que no logran montar una respuesta inmune eficiente contra el organismo. La hipergammaglobulinemia Leal A. Ma. Jesús 11 proviene de la estimulación antigénica persistente y es sugestiva de una respuesta inmune inadecuada, puesto que para la inmunidad son esenciales los anticuerpos y las células inmunes. Ocurre cuando el sistema inmunitario es ineficaz y el microorganismo no puede ser eliminado. En las áreas endémicas, esta enfermedad por lo general es crónica (Birchard y Sherding, 1996; Ettinger, 1992). En la fase crónica la supresión de la médula ósea; junto con la mayor destrucción de plaquetas, ocasionan trombocitopenia. Las comunicaciones clínicas sugieren que los anticuerpos antiplaquetarios contribuyen a la menor cantidad de plaquetas en la fase crónica de la enfermedad. La anemia, neutropenia, trombocitopenia, hiperglobulinemia o proteinuria deben poner sobreaviso al clínico ante la posibilidad de ehrlichiosis (Richard, 1992). La principal característica de esta fase, es el deterioro en la producción de elementos sanguíneos por la médula ósea (Heredia, 1998). 2.6 Signos clínicos Aunque algunos científicos consideren a la ehrlichiosis más común en los meses de verano, la enfermedad se presenta durante todo el año y en una gran variedad de condiciones climáticas. Pueden afectarse perros de cualquier edad, aunque el promedio de edad es de 2 a 5 años (Heredia, 1998). Leal A. Ma. Jesús 12 Las manifestaciones durante la fase aguda en general son leves y comprenden pirexia inespecífica, anorexia, linfadenopatía, secreción oculonasal y disnea. De la misma manera se puede encontrar esplenomegalia, hepatomegalia, disnea o intolerancia al ejercicio debida a neumonitis, signos neurológicos causados por meningoencefalitis, petequias y equimosis por trombocitopenia. Los títulos de anticuerpos pueden ser negativos durante esta fase (Ettinger, 1992). Los cambios hematológicos son variables durante la fase aguda de la enfermedad. Una leucopenia ligera es común durante el período sintomático y muchas veces es seguido por leucocitosis. La anemia se desarrolla durante esta fase (Ettinger, 1992). Aproximadamente 40% de los perros afectados con la fase aguda de la enfermedad se encuentran garrapatas, considerando que es el principal vector y reservorio de la enfermedad, la cual transmite el microorganismo a través de la picadura (Heredia, 1998; Birchard y Sherding, 2002). Los signos clínicos de la fase aguda generalmente se resuelven sin tratamiento, sin embargo, los perros pueden permanecer infectados y llegar a la fase subclínica la cual dura de 6 a 9 semanas y termina con el desarrollo de la fase crónica. No obstante, la fase subclínica puede persistir por periodo de meses o años (Heredia, 1998). Leal A. Ma. Jesús 13 En la fase subclínica los pacientes están asintomáticos, pueden identificarse cambios hematológicos y bioquímicos leves. Los cambios que se pueden encontrar son trombocitopenia, anemia arregenerativa y respuestas celulares variables de leucopenia a linfocitosis y monocitosis (Ettinger,1992; Birchard y Sherding, 1996). La pérdida de peso crónica, un apetito reducido o la anorexia, la palidez de las mucosas por la anemia, la debilidad y la depresión son las manifestaciones más ordinarias de la Ehrlichiosis crónica canina (Ettinger, 1992; Birchard y Sherding, 2002; Pusterla et al., 1997). Algunos perros se pueden afectar levemente durante la fase crónica, mientras que otros manifiestan severas complicaciones como las ya mencionadas y episodios hemorrágicos caracterizados por petequias en el abdomen y en las membranas mucosas, presencia de infecciones secundarias, edema escrotal y en las extremidades. En la fase crónica no son evidentes la linfadenopatía ni la esplegnomegalia, ni el hallazgo de garrapatas durante el examen físico (Heredia, 1998; Harrus et al., 1997). La tendencia hemorrágica reflejada a nivel de mucosas, retina, piel abdominal o en cualquier otro órgano es secuela común de la infección crónica pronunciada debida a la trombocitopenia persistente y trombocitólisis marcada. La epistaxis en los animales que tienen signos generales de infección crónica es considerada Leal A. Ma. Jesús 14 como característica distintiva de la enfermedad, aunque la rinorragia sólo se observa en una escasa proporción de los casos (Ettinger, 1992 ). La ausencia de hemorragias no se debe descartar la presencia de la enfermedad, debido a que únicamente el 50% de los perros infectados presentan este signo (Heredia, 1998). Las anormalidades oculares se caracterizan por la presencia de engrosamiento de los vasos retinianos, a veces se presentan manchas gris oscuro en el tapetum que pueden estar rodeadas de zonas de hiperactividad, así como uveitis anterior (Heredia, 1998). Los perros en la fase crónica de la infección pueden tener signos de neumonía intersticial, falla renal, desórdenes reproductivos, artritis y meningoencefalitis (Ettinger, 1992). Los signos neurológicos de meningitis son el resultado de hemorragias e inflamación de las meninges. Puede haber ataxia, disfunción vestibular central o periférica, hiperestesia generalizada o localizada además de anisocoria, disfunción cerebelar y tremores. También existen informes de la presencia de convulsiones como manifestación primaria en los perros afectados. Puede haber poliartritis o monoartritis, la cual puede ser evidente en los estudios radiológicos. También Leal A. Ma. Jesús 15 puede haber lesiones cutáneas asociadas a la enfermedad de Ehrlichiosis en perros (Frank, 1997; Heredia, 1998). En un estudio realizado se reportan 3 perros de Carolina del Norte y 3 de Virginia los cuales mostraban anemia crónica, moderada y severa y poliartritis como signos mas significativos de ehrlichiosis. Uno de los perros al realizarle el examen físico no presentó ningún tipo de anormalidad. Los signos clínicos no específicos se incluyen fiebre, letargia, anorexia, vómito y diarrea. En el examen de laboratorio las anormalidades que muestran son anemia normocítica normocrómica no regenerativa, trombocitopenia, linfopenia y eosinopenia (Goldman et al.,1998). 2.7 Diagnóstico El diagnóstico presuntivo de la ehrlichiosis se realiza con base a la historia clínica y en los hallazgos en el examen físico Así como otras pruebas de diagnóstico de laboratorio como la hematología, bioquímica y la serología son útiles para establecer el diagnóstico definitivo antemortem (Heredia, 1998). Mediante la aspiración con aguja delgada se puede identificar el microorganismo en el bazo, nódulos linfáticos y pulmones, aunque es extremadamente poco probable. A menudo hay plasmocitosis en estas muestras citológicas (Birchard y Sherding, 1996). Leal A. Ma. Jesús 16 La biopsia de médula ósea en perros con ehrlichia puede mostrar una marcada hipercelularidad de megacariocitos y series mieloides en la fase aguda y subclínica; mientras que en la fase crónica es frecuente encontrar una hipoplasia eritroide de plasmocitosis (Heredia, 1998). La reacción en cadena de la polimerasa y la inmunotransferencia Western pueden utilizarse para el diagnóstico en perros con serología negativa para distinguir E. canis de E. ewingrii y de otras especies de ehrlichia; sin embargo estas técnicas todavía no están disponibles para su uso sistemático en la clínica (Birchard y Sherding, 2002). La prueba de fluorescencia indirecta para detectar anticuerpos (IFA) contra Ehrlichia canis es áltamente sensible. Aunque tal vez haya ligera reactividad cruzada con otras rickettsias, los títulos mayores de 1:10 se consideran diagnósticos, aunque quizá no se descubran sino hasta 2 o 3 semanas después de la inoculación. Igual que en otras enfermedades los títulos elevados no confieren protección contra la reinfección. Los títulos pueden persistir durante 9 o 12 meses después del tratamiento o de la recuperación (Birchard y Sherding, 1996). La confirmación de laboratorio en los casos sospechosos se establece mejor mediante los estudios serológicos para los anticuerpos anti-E.canis. Los Leal A. Ma. Jesús 17 anticuerpos se detectan a la segunda y tercera semana de comenzada la infección (Ettinger, 1992 ). Citológicamente se ven las inclusiones intranucleares de apariencia morular se observa una mayor frecuencia en el citoplasma de los leucocitos durante la fase aguda, pero son transitorias y en bajo número. Las inclusiones de apariencia morular consisten en paquetes densos de organismos que se tiñen de rojo púrpura con la tinción de Wright o de color azul con la tinción de Giemsa. Estos se observan mas frecuentemente en la sangre procedente de la vasculatura periférica, como la que se obtiene de los bordes de las orejas (Heredia, 1998). Las inclusiones intracitoplasmáticas se pueden observar a partir de la evaluación citológica de la médula ósea, de los pulmones, nódulos linfoides y aspirado esplénico (Heredia, 1998). 2.8 Diagnóstico Diferencial Se tendrán en cuenta las Babesiosis y Leishmaniasis, también se excluirán las parasitaciones por vermes y las enfermedades carenciales. La forma en que se presentan las hemorragias cutáneas en los perros se parece a la forma exantemática del moquillo del perro (Heredia, 1998). Leal A. Ma. Jesús 18 Los signos clínicos, los hallazgos físicos y las anormalidades de laboratorio en los perros con erliquiosis crónica pueden semejarse a los del mieloma múltiple o la leucemia linfocítica crónica (Birchard y Sherding, 2002). La ehrlichiosis puede estar asociada con otras enfermedades o simplemente confundirse con otras similares. En un artículo se reporta un caso de Hepatozoonosis (Hepatozoon canis) de un perro importado de Italia a Alemania con una infección adicional de E.canis y Babesia canis (Deinert et al., 1997). 2.9 Tratamiento Se recomienda tetraciclina a una dosis de 22 mg/kg, PO, cada 8 horas por 14 a 21 días, y debe administrarse con el estómago vacío. Como contraindicación no utilizar tetraciclinas (o sus derivados) en perros menores de 6 meses porque puede producirse una coloración amarilla permanente en los dientes; y no emplearlas en perros con insuficiencia renal (Birchard y Sherding, 1996; Tilley et al., 1997). Doxiciclinas: es el fármaco de elección para tratar la Erliquiosis a una dosis de 2.5 a 5 mg/kg VO cada 12 a 24 horas durante 10 a 14 días y si puede ser utilizada en perros con insuficiencia renal ya que se excreta por vía gastrointestinal La Doxiciclina es menos nefrótica que la tetraciclina y es la de elección en las infecciones crónicas (Birchard y Sherding, 2002; Tilley et al., 1997; Ettinger 1992). Leal A. Ma. Jesús 19 En un estudio se evaluó el efecto terapéutico de la Doxiciclina en un caso experimental de Ehrlichiosis canina monocítica subclínica haciéndose la evaluación en 6 semanas en curso la enfermedad. Se tuvo una eficacia usándose una dosis de 10 mg/kg de peso corporal cada 24 horas por 42 días (Harrus et al., 1998). Cloranfenicol: También es eficaz, pero no se recomienda en perros con citopenia Puede ser usado en dosis de 15 a 20 mg/kg vía oral, intravenosa o subcutánea cada 8 horas por 14 días (Birchard y Sherding, 1996; Heredia, 1998). En los cachorros menores de 6 meses de vida, se recomienda cloranfenicol en dosis de 20 mg/kg, cada 8 horas. Vía oral, durante 14 días para evitar la coloración amarilla de los dientes en erupción causada por las tetraciclinas, sin embargo el propietario debe ser advertido sobre el riesgo del cloranfenicol debido a su interferencia directa con la síntesis de la hemoglobina y en médula ósea, de igual manera, el empleo debería ser evitado en perros con trombocitopenia o anemia (Tilley et al., 1997). Dipropionato de imidocarb: (Imizol) y la anticolinesterasa parasimpaticomimética, administrados a una dosis de 5 mg/kg por vía intramuscular o subcutánea, que se repite a los 14 días, han sido eficaces en perros con ehrlichiosis resistente y en perros con infecciones mixtas por E .canis y Babesia canis. El Dipropionato de imidocarb elimina la infección en casi el 80% de los perros con una sola inyección de 5 mg/kg (Birchard y Sherding, 2002; Ettinger, 1992). Leal A. Ma. Jesús 20 Glucocorticoides (prednisolona/ prednisona) 1-2 mg/kg, cada 12 horas, vía oral, durante 5 días pueden estar indicados en los casos agudos en los cuales la trombocitopenia inmunomediada es el principal diagnóstico diferencial, la administración de corticoesteroides puede estar indicada hasta que se conozcan los resultados de los estudios serológicos. El empleo prolongado de los glucocorticoides en niveles inmunosupresores puede interferir con la depuración y eliminación de la E.canis después de la terapia con tetraciclina (Tilley et al.,1997). Fluidoterapia de sostén y la transfusión de sangre son requeridas en los perros con infecciones crónicas. Los corticoesteroides (prednisolona 2-5 mg/kg/día durante 3 a 5 días) o acetato de metilprednisolona (2 mg/kg una sola vez vía intramuscular) son utilizados para combatir los efectos de la trombocitopenia y desórdenes de hemorragias. Soluciones electrolíticas balanceadas se indica en los animales deshidratados. La transfusión de sangre se utiliza en los animales anémicos. La transfusión de sangre o de plasma rico en plaquetas está indicada en animales con hemorragias provenientes de la trombocitopenia. El tratamiento de sostén (transfusión sanguínea, electrolitos, vitaminas) se deberán administrar de acuerdo a la necesidad (Tilley et al., 1997). Esteroides androgénicos pueden ser empleados para estimular la producción de la médula ósea en los perros con afección crónica e hipoplasia medular. La oximetolona a 2 mg/ kg cada 24 horas, vía oral hasta obtener resultados, y el Leal A. Ma. Jesús 21 decanoato de nandrolona a 1.5 mg/kg por semana vía intramuscular (Tilley et al.,1997). 2.10 Prevención El control de la garrapata constituye el punto principal para la prevención de la Ehrlichiosis. Pueden usarse dosis bajas de Tetraciclina o Doxiciclina en áreas endémicas durante la temporada de garrapatas (Tetraciclinas a 3 mg/kg vía oral cada 24 horas, ó Doxiciclina de 1-2 mg/kg vía oral cada 24 horas) (Birchard y Sherding, 1996). Debe existir un buen control tanto en el perro como en el ambiente que lo rodea. La aplicación de acaricidas en ambientes infestados puede hacerse mediante fumigaciones con carbaril, permetrina, resmetrina, piretrinas y clorpirifós (Cordero, 1999). 2.11 Pronóstico El pronóstico es de bueno a malo, dependiendo de la etapa de la enfermedad y de la gravedad de los signos clínicos. Es excelente con el tratamiento apropiado, a menos que la médula ósea se encuentre muy hipoplásica. La respuesta clínica en las formas crónicas puede tardar 3 a 4 semanas. La forma crónica de la enfermedad parece ser más grave en perros Pastor alemán y Doberman pinscher Leal A. Ma. Jesús 22 y Pastores alsacianos (Fenner, 1997; Tilley et al., 1997; Birchard y Sherding, 2002). 2.12 Importancia en la salud pública Se ha hablado de la posibilidad de transmisión al ser humano, sin embargo, aunque pueden infectarse con la E .canis, su transmisión no está directamente relacionada con los perros. Además el Riphicephalus sanguineus probablemente no es el vector para la ehrlichiosis humana. Los signos clínicos en el hombre muchas veces pasan desapercibidos aunque se ha reportado fiebre, dolor de cabeza, mialgia, dolor ocular y síntomas gastrointestinales (Heredia, 1998). La Universidad de Florida reporta que existen dos clases principales de erliquiosis humana en los Estados Unidos: Ehrlichiosis Monocítica Humana (EMH), causada por E. chaffensis; y Ehrlichiosis Granulocítica Humana (EGH), causada por E. phagocytophila. Los síntomas para las dos incluyen fiebre, dolores de cabeza, malestar y dolores musculares; salpullido ocurre con mas frecuencia en EMH que con EGH. El tratamiento para ambas es con antibióticos de la familia tetraciclina, usualmente Doxiciclina; su mortalidad es infrecuente (2-3% de los casos), pero puede ocurrir como resultado de complicaciones con la infección (Bakken y Dumler, 2001). Leal A. Ma. Jesús 23 Generalmente hay de uno a cinco casos de Erliquiosis humana en Florida anualmente. Probablemente ocurren mas casos, pero no son lo suficientemente severos para que no se busque tratamiento médico, o no son confirmados con pruebas de laboratorio. No todos los casos son reportados, pero la Erliquiosis canina y equina ocurre en Florida. En agosto del 2001 un grupo no típico de cuatro casos de Erliquiosis ocurrió en el condado de Jefferson, debido a lo cual se declaró una alerta médica. Las condiciones que fomentaron este grupo de casos son desconocidas, pero es probable que tenga relación con las poblaciones de garrapatas y el contacto humano con las mismas (Bakken y Dumler, 2001). Leal A. Ma. Jesús 24 III. MÉTODOS Y MATERIAL 3.1 Localización del sitio experimental El presente estudio se realizó en el Municipio de Cajeme Sonora. El cual está ubicado geográficamente a una latitud norte de 27°34’00”, longitud oeste de 109°53’30”, con una altitud de 50 metros sobre el nivel del mar. Cuenta con una temperatura de 16.8°C a 30.9°C en verano, con un promedio de 25.5°C anual, y humedad relativa de 47.2%, se clasifica como cálido seco (Félix, 1991), 3.2 Metodología 3.2.2 Determinación del tamaño de la muestra Se realizó un muestreo de 60 animales sospechosos a ehrlichiosis, tomándose en cuenta los signos mas característicos de la enfermedad como lo son: la presencia de garrapatas, epistasis, anemia, palidez y otros más que sirvieron como referencia al realizar el muestreo (Wayne y Meek,1987). Leal A. Ma. Jesús 25 3.2.2 Técnica de inmunofluorescencia indirecta Se tomó una muestra sanguínea por punción de la vena cefálica del animal, con la técnica conocida; la cantidad de sangre extraída fué de 2 mililitros, depositándose en tubos de ensayo sin anticoagulante e identificándolas por el número de caso, acompañada cada una con una reseña clínica de todos los perros susceptibles de la enfermedad; ya obtenido el suero de estas muestras, se procedió a congelarse a –20°C hasta su uso, el proceso de prueba fué recomendado por el reactivo de los Laboratorios VMRD Inc: 1. Proporcionar al portaobjetos una temperatura ambiente de 37°C, antes de remover del empaque la lámina. 2. Colocar 10 ul de suero diluido en los pozos designados. 3. Incubar el portaobjeto en cámara húmeda a 37°C por 30 minutos. 4. Enjuagar la laminilla brevemente en solución FA buffer (líquido de montaje para fluorescencia con un ph de 9.0). 5. Drenar la laminilla y eliminar el exceso de líquido. Colocar 10 ul de anti-IgG en los pozos. 6. Incubar como en el paso 3. 7. Enjuagar como en el paso 5. 8. Drenar la laminilla y secar con el filo de una toalla de papel. No dejar manchas en la superficie a secar. No enjuagar con agua. 9. Montar con una solución glicerol / FA, y examinar con microscopio de fluorescencia a 100x-250x. La confirmación puede ser hecha a 400x. (Recommended Staining Procedure for IFA; http:// www.vmrd.com). Leal A. Ma. Jesús 26 3.3 Variables a analizar Animales positivos y negativos a anticuerpos contra Ehrlichia canis. 3.4 Análisis Estadístico de la Información Los resultados son presentados en forma de porcentajes. Leal A. Ma. Jesús 27 IV RESULTADOS Y DISCUSIÓN De los 60 sueros estudiados 49 resultaron positivos a la prueba de anticuerpos fluorescentes y 11 fueron negativos; teniendo entonces un porcentaje de 81.66% de positivos y un 18.34% (gráfica 1) de animales negativos a la misma. En un estudio epidemiológico realizado en Israel, cuyo objetivo era el determinar la prevalencia de anticuerpos reactivos a Ehrlichia canis en perros callejeros y en perros de casa, se utilizaron 410 perros y el estudio se hizo por medio de la técnica de Inmunofluorescencia indirecta obteniéndose una prevalencia del 30%. De los perros de casa se tuvo un resultado positivo de 23.9% y 37.5% para perros callejeros. Este estudio fue realizado con perros sanos y enfermos y el resultado no fue significativo, únicamente se observó que los perros menores de un año de edad tuvieron menor prevalencia (Baneth et al., 1996). En la investigación que se realizó en Cajeme se tuvo alta prevelencia en perros caseros que presentaban signos compatibles con la enfermedad, sin tomar en cuenta la raza, el sexo ni la edad, más sin embargo se obtuvieron más animales positivos en adultos que en jóvenes. En un estudio realizado en Suiza, se tomó una muestra de 996 perros y se mostró mediante la técnica de anticuerpos fluorescentes el siguiente resultado; se Leal A. Ma. Jesús 28 obtuvieron 22 perros positivos (2.2%), 20 de éstos procedían de perros sospechosos (Pusterla, 1998). Como se observa en los resultados de esta investigación no fue muy significativo el resultado obtenido del total de la muestra analizada en comparación con la realizada en el municipio de Cajeme por la misma técnica. Otra investigación realizada contó con 211 perros para el diagnóstico de anticuerpos por la misma técnica antes mencionada. Los resultados mostraron una seropositividad alta y se llegó a la conclusión que la técnica de IFA es la apropiada para hacer estudios serológicos y se confirmó que tiene buena correlación con los signos clínicos del paciente (Egenvall et al.,1997). La técnica de Inmunofluorescencia es un método áltamente confiable al realizar este tipo de diagnóstico, ya que en este trabajo se analizaron perros que eran considerados sospechosos por los signos que presentaban, aún así no se podía contar con un diagnóstico definitivo, y al realizar la técnica se pudo confirmar que la mayoría de estos animales eran realmente positivos. Las condiciones medioambientales con las que se cuenta en el municipio de Cajeme favorecen el micro hábitat del vector transmisor y de la misma forma la incidencia de la enfermedad, ya que los resultados obtenidos así lo demuestran. Los principales signos obtenidos de los animales positivos son los siguientes: epistasis (44/49), garrapatas (43/49), pérdida de peso (28/49), depresión (27/49), Leal A. Ma. Jesús 29 debilidad (27/49), secreción oculonasal (19/49), anemia o palidez (18/49), pioderma (15/49), petequias (6/49), disnea (5/49) estornudos (4/49), vómito y/o diarrea (4/49), claudicación (3/49), uveitis (2/49) (gráfica 3). Como lo muestra la gráfica, los signos mas significativos que presentaron la mayoría de los pacientes fue la epistasis que es característico de la enfermedad debido a la trombocitopenia persistente; de igual manera la presencia de garrapatas fue significativo para realizar el muestreo. En la gráfica 2 se muestran los principales signos de el total de la población, más no todos los animales reaccionaron positivos a la prueba. La epistasis en los animales que presentan signos generales de la enfermedad es considerada como característica distintiva. Aunque esté ausente la hemorragia no se debe descartar la presencia de la enfermedad, ya que únicamente el 50% de los perros infectados presentan este signo (Heredia, 1998). Muchos de los signos encontrados en los pacientes están correlacionados con la enfermedad, pero no es indicativo de que exista, hasta no haber realizado algún diagnóstico que así lo señale. Leal A. Ma. Jesús 30 18% 82% Negativos (-) Positivos (+) Gráfica No.1 Distribución porcentual de los resultados de la técnica de Inmunofluorescencia indirecta por Ehrlichia spp. Leal A. Ma. Jesús 31 60 Epistasis Garrapatas Pérdida de peso Debilidad Depresión Secreción oculonasal Anemia o palidez Pioderma Petequias Disnea Fatiga Estornudos Vómito y/o diarrea Claudicación Uveitis 50 40 30 20 10 0 1 Gráfica No. 2 Principales signos encontrados en los perros seleccionados como sospechosos a Ehrlichiosis. Leal A. Ma. Jesús 32 Epistasis Garrapatas Pérdida de peso Debilidad Depresión Secreción oculonasal Anemia o palidez Pioderma Petequias Disnea Fatiga Estornudos Vómito y/o diarrea Claudicación Uveitis 45 40 35 30 25 20 15 10 5 0 1 Gráfica No. 3 Principales signos asociados a Ehrlichiosis presentes en perros confirmados como positivos. Leal A. Ma. Jesús 33 V. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES Se obtuvo 81.66% de animales reactores positivos y 18.34% de animales negativos a la técnica de Inmunofluorescencia indirecta; se esperaba encontrar al menos un 10% del total de la población muestreada con anticuerpos contra Ehrlichia canis en perros sospechosos y por medio de este estudio se pudo establecer la presencia de la enfermedad; de esta manera se cumple con el objetivo del trabajo y superándose al mismo tiempo con más del 70% de animales positivos. Es importante tener en cuenta que esta enfermedad es considerada como una zoonosis y que el Médico Veterinario informe al propietario sobre este tipo de problema, así como que de pequeñas asesorías, recomendaciones y que concientice al dueño sobre la importancia de mantener a sus mascotas libres de ectoparásitos. A los clínicos se recomienda el hacer uso de algunos métodos existentes como la biometría hemática, en la que se observará trombocitopenia persistente, anemia arregenerativa y otras respuestas celulares variables; además de que es un método seguro para establecer un diagnóstico y es recomendado para cualquier Leal A. Ma. Jesús 34 clínico hacerlo antes de realizar la prueba de anticuerpos, ya que su costo es mucho menor y se puede tener un buen resultado apoyado con la historia clínica del paciente. El hacer uso de la técnica de Inmunofluorescencia indirecta es una forma más para establecer un diagnóstico ya que se obtienen buenos resultados por su alta sensibilidad, ya que títulos mayores 1:10 se consideran diagnósticos. Es importante realizar estudios parasitológicos para identificar y clasificar todo tipo de garrapatas presentes en la región cajemense. También es indispensable establecer algún programa de control y realizar baños y fumigaciones con cualquier sustancia tóxica para las garrapatas. Un muestreo dirigido siempre es bueno hacerse para determinar los casos nuevos que se estén presentando en los diferentes criaderos; así como también combatir la garrapata, que en esta enfermedad actúa como vector principal. En las perreras es importante que los tratamientos vayan acompañados de un adecuado mantenimiento de las instalaciones, con el propósito de evitar que las garrapatas tengan acceso a lugares escondidos donde realizar sus mudas y estén al abrigo de los acaricidas. ; Leal A. Ma. Jesús 35 REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS Bakken, J.S; J.S. Dumler. 2001. Ehrlichia en Florida. University of Florida. Internet: http://edis.ifas.edu/INI9/1-k. Baneth G, T. Waner, A. Koplah , S. Weinstein and A. Keysary . 1996. Survey of Ehrlichia canis antibodies among dogs in Israel. Koret School of Veterinary Medicine, Hebrew University of Jerusalem, Rehovot, Israel. Mar 16; 138(11):257-9. Beer, J.1987. Enfermedades infecciosas de los animales domésticos. Acribia S.A. Tomo I. Zaragoza, España. pp 413-415. Benenson, A.S. 1997. Manual para el control de las enfermedades transmisibles. 16ª edición. Edición Organización Panamericana de la Salud. Washington D.C. Birchard, S. y R. Sherding . 1996. 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