Boletín electrónico agosto 2010

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agosto 2010
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Jornada sobre Enfermedades Infecciosas de la Reproducción
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Uso de Animales en Pruebas de Control de Biológicos
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Convención de Clientes
Buenas Prácticas de Laboratorio
Dermatofilosis en terneros de tambo
Jornada sobre Enfermedades
Infecciosas de la Reproducción en
Bovinos
CDV participó activamente de la jornada que
organizó Laboratorio Dorronsoro el día viernes 23
de abril en la Sociedad Rural de Las Flores, Buenos
Aires, una charla sobre las enfermedades
infecciosas más importantes que afectan a la
reproducción en bovinos. Abrió la jornada el Dr.
Martín Dorronsoro, quien tuvo a cargo la
introducción y la presentación de los disertantes.
Le siguió el Ing. Agrónomo Federico Traut, quien
presentó a la nueva División Agronómica de
Laboratorio Dorronsoro. El Dr. Pedro Soto, de
Laboratorio Tandil, expuso sobre Trichomoniasis
Bovina y el uso de la vacuna. El Dr. Fernando
Acuña, Jefe de Diagnóstico de CDV, describió y
presentó diversos casos de pérdidas de gestación
por Leptospirosis, charla durante la cual muchos
veterinarios participaron del debate sobre el
diagnóstico etiológico, manejo y vacunación.
Luego, y para cerrar la jornada de capacitación, el
Dr. Fernando Luna, Gerente Comercial y
Diagnóstico de CDV, realizó una exposición
integradora sobre el conjunto de Enfermedades
Infecciosas que afectan la Reproducción, cómo
diagnosticarlas y prevenirlas.
Destacamos el interés de los colegas por
enfermedades que parecen controladas y aún no
lo están, como es el caso de Brucelosis,
Campylobacteriosis,
y
las
tradicionales
enfermedades virales, IBR y BVD. Si bien no estaba
programado, se evacuaron muchas consultas sobre
el diagnóstico serológico de Neosporosis Bovina.
Al evento asistieron cerca de 100 profesionales, en
su mayoría veterinarios, con representantes de casi
todas las provincias del país.
La noche se cerró con una cena de camaradería y
un espectáculo.
CDV agradece a los organizadores, a los disertantes
y a la concurrencia, esperando que haya sido
provechoso, y que no falte oportunidad para
encontrarnos nuevamente.
Uso de Animales en Pruebas de
Control de Biológicos
Fuente: MOTIVAR
El 18 y 19 de febrero pasado se realizó en en la sede
Martínez del Senasa el Simposio de Alternativas
Prácticas para Reducir el Uso de Animales en
Pruebas de Control de Calidad de Biológicos
Veterinarios en las Américas. Contó con la presencia
de expertos de servicios oficiales, empresas
elaboradoras, expertos en enfermedades infecciosas,
inmunólogos y microbiólogos de toda la región.
“Como consecuencia de esta realidad, debemos
cumplir con ciertos parámetros tendientes a
capacitar, difundir y desarrollar nuevos proyectos y
técnicas de laboratorio, no sólo en el país, sino
también en todo el mundo”, comentó Jorge
Rodríguez Toledo, coordinador general de
Laboratorio Animal del Senasa. Asimismo, el
funcionario agregó que “si bien desde la década del
90 se está trabajando en la posibilidad de disminuir la
utilización de animales de laboratorio para la prueba
de control de biológicos, el evento es siempre
positivo para resolver o concretar diversas etapas de
los procesos”.
Por su parte, el director de la Fundación
PROSAIA/IAB, Alejandro Schudel, explicó que el
Simposio se realiza porque “existe una preocupación
mundial con respecto a la calidad de los productos
veterinarios, tendencia a partir de la cual la OIE cada
vez le presta más atención al tema”.
CDV auspició el evento.
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Tal como comentara Rodríguez Toledo, también
fue importante el intercambio de ideas con
representantes
extranjeros:
“participaron
especialistas de la Unión Europea, Estados Unidos,
Canadá, Brasil, Paraguay y Uruguay, lográndose un
debate respecto de la metodología que estamos
desarrollando aquí, tendiente a establecer
convenios de cooperación científica que nos
permitan lograr los mejores resultados de forma
rápida y precisa”, concluyó.
El evento fue organizado por la International
Association for Biologicals, junto con la OIE, el
SENASA, el Institute for International Cooperation
in Animal Biologics, Caprove, PANAFTOSA/OPS y la
Fundación PROSAIA. CDV participó como
auspiciante oficial del evento, y miembros del
Departamento Técnico y del Área de Calidad
estuvieron presentes en la charla.
Algunas conclusiones:
1. El objetivo de este simposio fue sentar las bases
científicas del concepto de las 3R (reducir,
reemplazar y refinar), a fin de lograr un sistema
económico, útil y efectivo para el control de los
biológicos veterinarios, teniendo en cuenta las
buenas prácticas de producción (GMP), los
procedimientos de producción estandarizados y el
bienestar animal.
2. Se destacó que la necesidad de desarrollar
sistemas apropiados y armonizados para el control
de biológicos veterinarios a nivel nacional es una
realidad en la mayoría de los países americanos.
3. Un gran porcentaje de los países no cuenta con
las facilidades para realizar pruebas con animales o
con las facilidades de bioseguridad apropiadas para
llevar a cabo estudios de desafío con animales
grandes.
4. Los costos de los ensayos en grandes animales
son muy elevados (costos de bioseguridad y
animales).
5. Las técnicas validadas reconocidas por las
autoridades veterinarias, para reemplazar o reducir
el uso de animales en las pruebas no son
suficientes.
Recomendaciones:
1. Adoptar técnicas validadas para reducir el uso de
animales en el control de calidad de biológicos
sobre la comprensión de los mecanismos de
protección inmunitaria de los agentes específicos de
las enfermedades.
2. Reemplazar los estudios de desafío por ensayos in
vitro que midan la protección inmunitaria después de
la vacunación a fin de establecer la potencia y eficacia
de los lotes de vacunas.
3. Evaluar el valor y fundamento de re-testear los
productos importados que tienen la aprobación
regulatoria del país exportador.
4. Las autoridades regulatorias deberían adoptar una
postura proactiva para promover y aceptar un
enfoque basado en la ciencia para reducir, refinar y
reemplazar el uso de animales en el control de
calidad de biológicos veterinarios.
5. Adoptar métodos físico-químicos o inmunoquímicos validados para establecer la potencia de
vacunas muertas.
6. Reemplazar pruebas en ganado o en animales de
compañía por pruebas en especies de laboratorio
cuando no se disponga de ensayos in vitro validados.
7. Identificar los cambios necesarios en la regulación
para facilitar la adopción de ensayos validados que
reduzcan el uso de animales en el control de
biológicos.
8. Implementar pruebas de potencia durante el
proceso de producción cuando sea posible.
9. Adoptar el modelo indirecto de fiebre aftosa, como
un ejemplo del concepto de las 3R con bases
científicas validadas y rigurosas.
10. Presentar estas conclusiones y recomendaciones,
y completar el documento presentado y discutido, al
organismo regional (CAMEVET) y también
internacional (OIE), a fin de que se considere la
incorporación potencial de estas conclusiones y
recomendaciones a sus procedimientos y estándares.
Convención de Clientes
CDV tuvo el agrado de realizar una convención para
clientes, invitados y personal técnico y comercial del
Laboratorio. Se realizó el viernes 7 de mayo, en el
Club Pilará, en Pilar, Buenos Aires. Se contó con la
presencia de clientes de las Divisiones de Biológicos,
Fármacos y Diagnóstico, tanto del país como del
exterior. Además asistieron importantes figuras del
SENASA, y de los medios especializados del sector.
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Estuvo Marcelo Pelaez, cubriendo el evento para
Canal Rural, y Luciano Aba, de Diario Motivar,
quien además nos gratificó con una exposición
sobre las novedades y perspectivas del sector.
planifican, ejecutan, controlan, registran, archivan y
difunden. Entendiendo por Calidad la satisfacción
total del cliente.
Son importantes para lograr la optimización de
recursos, incrementar la satisfacción del cliente, y
elevar la confiabilidad de los resultados.
Por esto, en CDV, apostamos a trabajar con Calidad.
Descripción de un Caso de
Dermatofilosis en Tambo
Pamela Agüero; Melina Briosso.
Laboratorio de Diagnóstico de CDV
También hablaron el Gerente General Ing. Hernán
Cobo Vega, y el Gerente Comercial y Diagnóstico,
el Dr. Fernando Luna, quienes ofrecieron su visión
del presente y el futuro del Laboratorio, y
aprovecharon para motivar a los presentes a seguir
trabajando en conjunto.
Fernando Luna durante el discurso de apertura.
Buenas Prácticas de Laboratorio
El Laboratorio de Diagnóstico de CDV se encuentra
trabajando íntegramente bajo las normas de
Buenas Prácticas de Laboratorio (BPL), logrando de
esta forma garantizar los resultados y el servicio.
Las BPL son un Sistema de Garantía de la Calidad
acerca de las condiciones en que los estudios se
-Introducción: Descripción de la Enfermedad
La dermatofilosis es una enfermedad aguda o crónica
de la epidermis, que origina una dermatitis exudativa.
Afecta a bovinos, ovinos, equinos, caprinos, animales
salvajes y al hombre, considerándose una zoonosis
menor.
El agente etiológico es una bacteria denominada
Dermatophilus congolensis, la cual forma,
morfológicamente, un puente entre las bacterias y
los hongos. Por su tamaño y composición química se
la clasifica como bacteria, pero se parece a los mohos
porque forma un micelio en las primeras fases de su
crecimiento. D. congolensis es la única bacteria que
forma filamentos ramificados que se dividen primero
en planos transversales y luego en longitudinales
múltiples, formando paquetes de células ovoides o
esporos de resistencia, que luego se transforman por
acción de la humedad y el dióxido de carbono de la
piel en esporos móviles o zoosporas infectantes.
La infección se produce cuando las esporas
infectantes toman contacto con la piel en zonas
donde las barreras normales de protección son
deficientes o se encuentran reducidas. Las lesiones
comienzan como zonas no pruriginosas, sangrantes y
dolorosas para luego evolucionar hacia la formación
de costras color crema a pardo de unos 2 a 5 cm de
diámetro. En la etapa inicial, las costras están muy
adheridas. Al desprenderlas producen dolor, dejando
expuesto tejido de granulación. En ocasiones, cuando
aparecen sobreinfecciones por otros gérmenes, hay
formación de exudado purulento. Finalmente
comienza la curación de la dermatitis, las costras se
separan de la piel pero quedan adheridas a los pelos
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circundantes. En el centro de la lesión se observa
alopecía.
En los bovinos, la dermatofilosis se presenta en
todas las edades, pero más comúnmente en
animales jóvenes. Las lesiones suelen comenzar
desde el cuello y la cruz extendiéndose hacia distal
por la pared torácica. En terneros, las primeras
lesiones aparecen, por lo general, en la boca y
zona peri ocular para luego extenderse hacia el
resto de la cabeza, cuello y otras partes del
cuerpo. En la madre suelen observarse costras en
la ubre. En el ovino las costras son más gruesas
(hasta 3 cm de espesor), rugosas, circulares y
frecuentemente pigmentadas. Se distribuyen
generalmente en la zona lateral y ventral del torax.
El vellón pierde prácticamente todo el valor
comercial.
En la mayorìa de los casos, no se afecta la salud
general, pero en infecciones muy severas,
principalmente en terneros y corderos, puede
producirse pérdida de estado corporal del animal,
o incluso la muerte.
En la mayoría de los animales la infección cura en
tres semanas aproximadamente. Las costras se
separan de la piel dejando debajo una piel suave
sin pelos o lana. En ovinos, particularmente en
animales de raza Merino, la infección puede
cronificarse produciendo las masas córneas
adheridas a la lana que caracterizan la “lana de
palo” o “lana de piedra”. Existe otra presentación
de la enfermedad en ovinos caracterizada por una
dermatitis interdigital que se denomina pietín
frutilla o strawberry footrot porque al
desprenderse la costra queda una superficie
sangrante en el área interdigital.
En cuanto a la transmisión de la enfermedad, la
fuente de infección de D. congolensis son los
animales enfermos o los portadores crónicos. Los
insectos probablemente actúen como vectores
mecánicos del agente. En bovinos se ha descripto
el papel de la garrapata Amblyomma variegatum,
como factor predisponente y diseminador de la
enfermedad. El tiempo cálido y húmedo, y
cualquier lesión en la piel, pueden favorecer la
infección lesionando la capa lipídica y queratinosa
de la piel y facilitando el ingreso de las esporas a la
epidermis. En el ovino, las lesiones postesquila
constituyen una importante vía de entrada de la
infección.
Figura 1. Ciclo de vida de Dermatophilus congolensis.
(Adaptado de Preston y Jongejin 1999)
-Caso de Dermatofilosis en Terneros de Tambo
El caso corresponde a un grupo de terneros de
tambo, raza Holando Argentino, de la zona de Lobos,
provincia de Buenos Aires, durante enero de 2010.
Cabe destacar que el promedio de lluvia de los meses
de noviembre, diciembre y enero fue de 170 mm, un
130% superior a igual período del año anterior. Los
animales tenían entre 1 y 15 días de vida, eran
criados artificialmente y todos habían recibido
calostro.
La mayoría de los animales de la guachera
presentaba lesiones no pruriginosas en piel con
descamación y alopecía, en algunos casos con
exudado seroso y otros sangrantes. Las lesiones se
hallaban principalmente en lomo, pero también en
otros sectores del cuerpo. Presentaron un cuadro
febril, con marcada adinamia e inapetencia. La
afección fue de rápida evolución, y en dos terneros
culminó con dificultad respiratoria y muerte.
Las muestras recibidas fueron costras, pelos e
improntas de las lesiones. Las costras y pelos fueron
sembradas en agar Columbia con sangre bovina
defibrinada al 5%, agar Sabouraud y agar Levine. El
agar Sabouraud fue incubado a temperatura
ambiente durante 10 días, el agar Columbia con
sangre se incubo en jarra de microaerofilia a 37ºC
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durante 48 horas, y el agar Levine en estufa a 37ºC.
Además, se hizo una observación directa del
material con hidróxido de potasio al 40% en busca
de dermatofitos. Las costras y pelos fueron
cortados y macerados en agua destilada estéril y,
junto con las improntas de las lesiones, fueron
teñidas con Giemsa.
Las muestras resultaron negativas para hongos
dermatofitos. Tanto en las improntas como en las
costras y pelos macerados, se visualizó la
morfología característica de D. congolensis, como
filamentos ramificados con múltiples cadenas de
cocos. En el agar Columbia con sangre el
microorganismo desarrollo a las 48 hs,
presentando
colonias
amarillo-anaranjadas, Figura 3. Dermatophilus congolensis. Giemsa. 400X.
rugosas, de 1 a 3 mm de diámetro, betahemolíticas, que se hundían en el medio de cultivo.
La identificación final se realizó mediante las
siguientes pruebas bioquímicas: catalasa (positiva),
ureasa (positiva), acidificación de glucosa, fructosa
y maltosa (positiva) y sucrosa, xilosa y salicina
(negativas).
El crecimiento de D. congolensis es fácilmente
enmascarado por el excesivo crecimiento de otras
bacterias, en caso de partir de muestras
contaminadas. De esto se desprende la
importancia de realizar la tinción a partir de
improntas de la lesión, o de costras y pelos
desprendidos. En este caso, se observó escaso Figura 4. Dermatophilus congolensis. Giemsa. 1000X.
crecimiento de contaminantes ambientales, los
-Conclusiones
cuales no dificultaron el aislamiento.
La dermatofilosis, si bien no es de aparición
frecuente, debe ser tenida en cuenta dentro de los
diagnósticos diferenciales de las manifestaciones
cutáneas. En los casos de afección general, con
presencia de mucosidad y enrojecimiento de la zona
nasal, puede confundirse con otras entidades como
IBR. Como lo describe la bibliografía, el grupo etario
más sensible son los animales jóvenes, que junto con
las condiciones ambientes de humedad, y factores de
estrés o inmunosupresores, como el hacinamiento y
presencia de ectoparásitos,
son los factores
predisponentes más importantes para su aparición y
desarrollo. La evidencia de la morfología
Figura 2. Colonia de Dermatophilus congolensis.
característica del microorganismo en frotis o
improntas es suficiente para arribar a un diagnóstico
rápido y certero, por eso hay que destacar la utilidad
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de enviar junto con las muestras de piel y
pelos, portaobjetos improntados con las lesiones y
secados al aire. No hay que olvidar que la
enfermedad puede afectar a varias especies y que
la principal fuente de infección son los portadores
crónicos.
-Bibliografía
Manual Merck de Veterinaria. 2008
Dermatofilosis caprina en la provincia de
Buenos Aires,2001, Otero M. M., Sánchez R.O.,
Fazzio L.E., Travería G.E., Romero J.R., Costa E.F.,
CEDIVE, Alvear y Salta Chascomús C.C. 147, FCVUNLP, Reinoso E.H, Cátedra de Micología Médica e
Industrial, FCV-UNLP
Dermatophilosis Dermatitis in Dairy Cows,
2005, John Kirk, DVM, MPVM, Veterinary Medicine
Extension, School of Veterinary Medicine
University of California.
Dermatofilosis, estreptotricosis cutánea,
lana de piedra, 2005 INTA Noticias y comentarios,
n° 395 ISSN 0327 3059
Brote de dermatofilosis en terneros, 2008,
Cattáneo M, Bermúdez J Apolo A, Bermúdez I,
Heras G, Velazques C, Juambeltz R, Assis R
Medicina Veterinaria séptima edición,
Blood, Radostits. Editorial Interamericana, 1992.
Diagnostic Procedures in Veterinary bacteriology
and Mycology, fifth edition, Carter, Cole Jr.
Academic press, 1990.
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