Dugesiana, Año 22, No. 1, Enero-Junio 2015, es una publicación

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Dugesiana, Año 22, No. 1, Enero-Junio 2015, es una publicación Semestral, editada por la Universidad de
Guadalajara, a través del Centro de Estudios en Zoología, por el Centro Universitario de Ciencias Biológicas y
Agropecuarias. Camino Ramón Padilla Sánchez # 2100, Nextipac, Zapopan, Jalisco, Tel. 37771150 ext. 33218,
http://dugesiana.cucba.udg.mx, [email protected]. Editor responsable: José Luis Navarrete Heredia.
Reserva de Derechos al Uso Exclusivo 04-2009-062310115100-203, ISSN: 2007-9133, otorgados por el
Instituto Nacional del Derecho de Autor. Responsable de la última actualización de este número: Coordinación
de Tecnologías para el Aprendizaje, Unidad Multimedia Instruccional, M.B.A. Oscar Carbajal Mariscal. Fecha de
la última modificación 30 de Junio 2015, con un tiraje de un ejemplar.
Las opiniones expresadas por los autores no necesariamente reflejan la postura del editor de la publicación.
Queda estrictamente prohibida la reproducción total o parcial de los contenidos e imágenes de la publicación sin
previa autorización de la Universidad de Guadalajara.
ISSN 1405-4094 (edición impresa)
ISSN 2007-9133 (edición online)
DUGESIANA
Volumen 22
Número 1
Fecha de distribución: 30 de junio 2015
Mailing date for this issue: 30 June 2015
Dugesiana 22(1): 1-2
Fecha de publicación: 30 de junio de 2015
©Universidad de Guadalajara
Primer registro de Cora marina Selys, 1868 para el estado de Jalisco, México (Odonata: Zygoptera:
Polythoridae)
First record of Cora marina Selys, 1868 for the state of Jalisco, Mexico (Odonata: Zygoptera: Polythoridae)
Rodolfo Novelo-Gutiérrez1, Sergio Smith-Gómez2 y José Antonio Gómez-Anaya1
Instituto de Ecología, A.C., Red de Biodiversidad y Sistemática. Carretera Antigua a Coatepec # 351, El Haya, 91070
Xalapa, Veracruz, México.2Laboratorio de Entomología, Centro de Estudios en Zoología, Depto. de Botánica y Zoología,
CUCBA, Universidad de Guadalajara, Apdo. Postal 234, CP 45100, Zapopan, Jalisco, México. [email protected] ;
[email protected] ; [email protected]
1
La familia Polythoridae es exclusivamente Neotropical y
contiene solo siete géneros. El género Cora es el que presenta
la distribución latitudinal más amplia y el más diverso con 22
especies (Garrison et al. 2010). Cora marina Selys es la única
especie registrada para México y se distribuye actualmente en
los estados de Chiapas, Guerrero, Oaxaca y Veracruz (GonzálezSoriano y Novelo-Gutiérrez 2007). La larva fue descrita por
Novelo-Gutiérrez y González-Soriano (1985) y su comportamiento
reproductivo estudiado por González-Soriano y Verdugo-Garza
(1984).
Cora marina Selys, 1868
Material examinado: MÉXICO: Jalisco; Municipio Cabo
Corrientes, Sierra Paraíso, arroyo La Ciénega, Selva Mediana
Subperennifolia, 635 m; 20° 22.840 N; 105° 19.664 W.,
07-septiembre-2014, S. Smith-G., J.A. Gómez-A., R. Novelo-G.
Cols., 2 ♂, 2 ♀ (una pareja en cópula). R. Novelo det. 2014.
Depositado en la Colección Entomológica del Instituto de
Ecología, A. C. (IEXA).
Los ejemplares hallados en Jalisco presentan el labro totalmente
azul y un mayor desarrollo de esta coloración por encima de las
genas (Fig. 1), un fuerte tinte ambarino en las alas con una banda
transversal difusa un poco más oscura a la mitad y muy débil en
el extremo apical de las mismas, así como la primera banda lateral
azul del tórax igual o más ancha que las áreas negras adyacentes
(Fig. 2), y el noveno segmento abdominal totalmente negro (Fig.
3). Estas características también las presentan ejemplares de
Guerrero y Oaxaca y contrastan con los individuos provenientes
del estado de Veracruz, los cuales tienen el labro negro con dos
grandes manchas azules y negro por encima de las genas (Fig. 4),
las alas ambarinas con dos bandas transversales café oscuro, una
a la mitad y otra en la parte apical de las alas, y la primera banda
lateral azul del tórax más angosta que las áreas negras adyacentes
(Fig. 5), y el noveno segmento abdominal mayormente negro con
dos manchas azules dorsobasales, contiguas y subtriangulares
(Fig. 6). Es posible que esta variación en coloración se deba a las
condiciones más secas de la vertiente del Pacífico, como sucede con
Argia oenea Hagen, cuyos especímenes presentan una coloración
más violácea en los estados del Pacífico y de la cuenca del Balsas,
y más azul en la vertiente del Golfo de México (González-Soriano
y Novelo-Gutiérrez, 2007), o quizás a un incipiente proceso de
especiación que podría determinarse mediante análisis futuros de
ADN.
Finalmente, cabe resaltar que con este hallazgo se incrementa
el rango de distribución latitudinal de C. marina en poco más de
3 grados hacia el norte y de 5 grados al oeste. Creemos que esta
especie podría ser encontrada eventualmente en Nayarit y Sinaloa,
donde existen condiciones de clima y vegetación similares.
AGRADECIMIENTOS
El primer autor agradece al M. en C. Enrique González
Soriano las facilidades para revisar ejemplares de C. marina de los
estados de Guerrero, Oaxaca y Veracruz depositados en Colección
Nacional de Insectos del IBUNAM.
LITERATURA CITADA
Garrison, R.W., N. von Ellenrieder & J.A. Louton. 2010. Damselfly
Genera of the New World. An illustrated and Annotated Key to
the Zygoptera. The Johns Hopkins University Press, Baltimore,
USA.
González-Soriano, E. & R. Novelo-Gutiérrez. 2007. Odonata of
Mexico Revisited. (pp. 05-136). In: Tyagi, B.K. (Ed.). Odonata:
Biology of Dragonflies. Scientific Publishers, Jodhpur, India.
González-Soriano, E. & M. Verdugo-Garza. 1984. Estudios en
Odonatos Neotropicales II: notas sobre el comportamiento
reproductivo de Cora marina Selys (Odonata: Polythoridae).
Folia Entomológica Mexicana 62: 3-15.
Novelo-Gutiérrez, R. & E. González-Soriano. 1985. Descripción
de la náyade de Cora marina Selys, 1868 (Odonata:
Polythoridae). Folia Entomológica Mexicana 63: 5-12.
Recibido: 26 de noviembre de 2014
Aceptado: 12 de enero de 2015
Dugesiana
Figuras 1-6. Detalles de la coloración de Cora marina. Figuras 1 y 4. Cabeza mostrando la coloración del labro y genas. Figuras 2 y 5.
Vista lateral del macho adulto mostrando el patrón de coloración alar y del tórax. Figuras 3 y 6. Dorso del segmento abdominal 9 (Figuras
1-3 ejemplar de Jalisco; Figuras 4-6 ejemplar de Los Tuxtlas, Ver.).
2
Primer registro de Atractocerus brasiliensis Lepeletier y Audinet-Serville, 1825 para Colima, México
First record of Atractocerus brasiliensis Lepeletier and Audinet-Serville, 1825 for Colima, Mexico
Miguel Angel Ayala-Zermeño, Beatriz Rodríguez-Vélez, Joel Felipe Morfín-Méndez y Hugo Cesar ArredondoBernal
Centro Nacional de Referencia de Control Biológico, Km 1.5 Carretera Tecomán-Estación FFCC, Col. Tepeyac. C.P. 28120,
Tecomán, Colima, México. [email protected], [email protected], [email protected], hcesar_64@
yahoo.com.mx
La familia Lymexylidae es una pequeña familia de coleópteros
distribuida principalmente en las regiones tropicales del mundo
(Wheeler 1986). La familia incluye 12 géneros y aproximadamente
61 especies en cuatro subfamilias: Atractocerinae, Hylecoetinae,
Lymexylinae y Melittomminae (Casari y Teixeira 2011). En
México se han registrado dos especies de limexílidos: Atractocerus
brasiliensis Lepeletier y Audinet-Serville, 1825 (Fig. 1) y
Melitoma brasiliensis Laporte, 1832 (Navarrete-Heredia 2004). El
género Atractocerus se caracteriza por presentar élitros reducidos
(Fig. 2) y los palpos maxilares con ramificaciones largas (Figs.
3 y 4) (Rivera-Cervantes et al., 2008). La biología del género
Atractocerus es poco conocida. De acuerdo con Wheeler (1986)
todas las larvas de Lymexylidae son barrenadoras de la madera y
muchas de ellas establecen asociaciones simbióticas con hongos
y otros microorganismos. A pesar de que no se han encontrado
asociaciones simbióticas entre A. brasilensis y hongos que crezcan
en sus galerías, este insecto se ha asociado al himenóptero Sirex
noctilio Fabricius, 1793, el cual sostiene asociaciones simbióticas
como parte de su ciclo de vida con el hongo Amylosterium
areolatum (Fr.) Boidin. Considerando lo anterior es probable que
A. brasiliensis establezca asociaciones simbióticas con hongos que
destruyen la madera (Casari y Teixeira 2011). El nombre común
de la familia tiene su origen en una especie del norte de Europa
que en el pasado constituyó una plaga destructiva de los barcos
construidos con madera (MacRae 2009). La especie Atractocerus
brasiliensis también se ha registrado en México, América Central
(Guatemala, Nicaragua, Panamá), el Caribe (Cuba, República
Dominicana, Haití, y Puerto Rico) y Sudamérica (Brasil, Argentina
y Chile) (Wheeler 1986, Casari y Teixeira 2011). En la República
Mexicana A. brasiliensis ha sido registrada en los estados de
Veracruz (Córdoba, Tuxtla, Fortín de las Flores y Coatzacoalcos);
Guanajuato (Moroleón); San Luis Potosí (Tamazunchale); Chiapas
(Unión Juárez); Sinaloa (Villa Unión) (Villada 1901, Vaurie 1956,
Navarrete-Heredia 2004), Jalisco (Mascota) (Rivera-Cervantes et
al., 2008) y Quintana Roo (Obregón-Zúñiga et al., 2014).
Como parte del proyecto “Diversidad de Insecta en huertos
citrícolas del estado de Colima”, se realizaron recolectas con
trampas Malaise durante el año 2013, en la localidad de Tecomán.
En el mes de agosto se capturó un ejemplar de la familia
Lymexylidae (Coleoptera), de la especie Atractocerus brasiliensis
constituyendo el primer registro de esta especie para el estado de
Colima.
Material examinado: México, Colima, municipio de Tecolapa,
01-04-VIII-2013, trampa Malaise, huerto de cítricos (limón
mexicano), 79 msnm, 18° 5.675’ N, 103° 50.394’ O. El espécimen
estudiado se encuentra depositado en la Colección de Insectos
Entomófagos del Centro Nacional de Referencia de Control
Biológico (CIE-CNRCB), en Tecomán, Colima, México.
LITERATURA CITADA
Casari, S.A. & E.P. Teixeira. 2011. Larva of Atractocerus
brasiliensis (Lepeletier & Audinet Serville, 1825)
(Lymexylidae, Atractocerinae). Papéis Avulsos de Zoologia,
51(12): 197‑205.
Navarrete-Heredia, J.L. 2004. Synopsis of the Mexican
Lymexylidae (Coleoptera). Folia Entomológica Mexicana,
43(2): 233-236.
MacRae, T.C. 2009. Ship-timber beetle. Beetles In The Bush:
Experiences and reflections of a Missouri entomologist. http://
beetlesinthebush.wordpress.com/2009/02/28/ship-timberbeetle/ (Consultado 16 de enero 2014).
Obregón-Zúñiga, J. A. S. Vergara-Pineda & F. Varela-Hernández.
2014. Nuevo registro de Atractocerus brasiliensis Lepeletier &
Audinet-Serville (Coleoptera: Lymexylidae) para el estado de
Quintana Roo. Dugesiana, 21(1): 69-70.
Rivera-Cervantes, L.E., E. García-Real & M.A. Morón. 2008.
Primer registro de Atractocerus brasiliensis Lepeletier
&Audinet-Serville (Coleoptera: Lymexylidae) para Jalisco,
México. Acta Zoológica Mexicana (nueva serie) 24(3): 225227.
Vaurie, P. 1956. Atractocerus brasiliensis in Cuba. The
Coleopterists Bulletin, 10(6): 86
Villada, M. 1901. Catálogo de la Colección de coleópteros
mexicanos del Museo Nacional, formada y clasificada por el
Dr. D. Eugenio Dugés (salón de entomología). Imprenta del
Museo Nacional, México.
Wheeler, Q.D. 1986. Revision of the genera of Lymexylidae
(Coleoptera: Cucujiformia). Bulletin of the American Museum
of Natural History, 183 (2): 113-210.
Recibido: 17 de diciembre 2014
Dugesiana
Figuras 1-4. Atractocerus brasiliensis. 1) vista dorsal, 2) cabeza y tórax, donde se aprecia tamaño
de ojos y élitros, 3) vista ventral de cabeza, 4) vista ventral de palpos.
4
Two new Staphylinid Species from Mexico (Coleoptera, Staphylinidae)1
Dos especies nuevas de estafilínidos de México (Coleoptera, Staphylinidae)1
Volker Puthz
Burgmuseum Schlitz, Vorderburg 1, D-36110 Schlitz, Germany
ABSTRACT
Two new Staphylinid species are described from Mexico, Veracruz: Stenus baumanni sp. nov. and Megalopinus baumanni sp. nov., Stenus tricornis
nom. nov. = Stenus tricuspis Puthz, 2014 nec Puthz 1984.
Key words: Coleoptera, Staphylinidae, Steninae, Megalopsidiinae, Mexico.
RESUMEN
Se desciben dos especies de Staphylinidae de Mexico, Veracruz: Stenus baumanni sp. nov. et Megalopinus baumanni sp. nov., Stenus tricornis
nom. nov. = Stenus tricuspis Puthz, 2014 nec Puthz 1984.
Palabras clave: Coleoptera, Staphylinidae, Steninae, Megalopsidiinae, Mexico.
Amongst a large collection of Steninae from the Arthropod
Collection of the Monte L. Bean Life Science Museum, Brigham
Young University, Provo, U.S.A. there were found two new
species from Mexico which are described here.
Abbreviations: DE= average distance between eyes; EL=
greatest length of elytra; EW= greatest width of elytra; HT=
holotype; HW= head width; PL= pronotal length; PM =
proportional measurements (1 unit = 0,025 mm); PT/T: paratype/s;
PW= pronotal width; SL= sutural length of elytra.
TAXONOMIC PART
Stenus baumanni sp. nov.
Description: Macropterous, black with a slight plumbeous
hue, shiny, forebody coarsely and densely punctate, abdomen
with moderately coarse, dense punctation anteriorly, moderately
finely and moderately sparsely punctate posteriorly; pubescence
indistinct. Antennal base yellow, club yelllowish-red. Maxillari
palpi yellow. Legs yellow, apical portions of femora slightly
infuscate as are apices of tarsal segments. Clypeus dark brown,
densely pubescent on either side of the middle line, labrum light
brown anteriorly, brown posteriorly. Abdomen ummargined, tarsi
bilobed.
Length: 4.2-4.8 mm (forebody 2.0-2.2mm).
PM of HT: HW: 32; DE: 18; PW: 23,5; PL: 31; EW: 35; EL:
40; SL: 34.
Head narower than elytra, frons broad, shallowly concave,
longitudinal furrows very shallow, median portion indistinctly
separate from lateral portions, slightly elevated, not extending to
the level of medial eye margins; punctation moderately coarse and
dense, diameter of punctures about equal to medial cross section
of antennal segment 3, interstices mostly smaller than punctures,
as large as in places near medial eye margins posteriorly and along
actual middle (but this has no distinct separate shining area).
Antennae very long, when reflexed the last two segments extending
beyond the posterior margin of the pronotum, penultimate
1
segments twice as long s broad. Pronotum much longer than broad,
broadest slightly behind middle, sides from there first convergent
in straight lines anteriad, more strongly constricted near anterior
margin, sides posteriorly slightly concave; no impressions;
punctuation coarse and dense, diameter of punctures about as large
as apical cross section of antennal segment 2, interstices mostly
smaller than half diameter of punctures, may be larger along
posterior middle. Elytra subquadrate, longer than broad, shoulders
rectangular, sides nearly straight, distinctly constricted in posterior
fourth; sutural and humeral impressions indistinct; punctuation
about as coarse as on pronotum, slightly less dense in sutural third.
Abdomen cylindrical, basal constrictions of anterior segments
deep, tergite 7 with a distinct membranous fringe posteriorly;
punctuation of anterior tergites about as coarse as on frons, dense,
posteriorly slightly less dense, punctuation of tergite 7 distinctly
finer, punctures about as large as eye facets at medial eye margins,
interstices nearly twice as large as punctures. Legs very slender,
metatarsi nearly three fifths as long as metatibiae, segment 1
nearly as long as segments 2-4 combined, much longer than the
last segment; segments 3 and 4 broadly bilobed. Forebody without
microsculpture, abdominal tergites 7-10 distinctly reticulated.
Male: Legs simple. Sternite 7 with a broad and shallow apical
emargination. Sternite 8 (Fig. 1), sternite 9 (Fig. 8), tergite 10
(Fig. 5). Aedeagus (Fig. 7, apical portion of median lobe narrowly
acutely pointed with few apical setae; a strong and very long tube
projecting from the basal portion of the median lobe; parameres
very long, much entending beyond the apex of the median lobe,
with about 16-18 setae in apical third.
Female: Sternite 8 (Fig. 3), posterior margin with a slight
median projection. Valvifer with a short and distinct tooth
apicolaterally. Tergite 10 (Fig. 2).
Type material: Holotype (♂) and 1♂, 3♀♀-paratypes:
MEXICO: Veracruz: Rio Laguna Escondida, Los Tuxlas Biological
Station, 17.XI.1993, R. W. Baumann (together with Stenus albipes
Sharp and S. cylindricus Sharp).- HT and PTT in the Monte L.
340th contribution to the knowledge of Steninae and 29th contribution to the knowledge of Megalopsidiinae.
Dugesiana
Bean Life Science Museum, Provo, U.S.A., 2 PTT in the author’s
collection.
Discussion: This new species belongs to the ariolus-group
(Puthz, 2007) and closely resembles S. macehualli Puthz from San
Luis Potosi (Puthz, 2014). In this species the base of elytra is not
distinctly pubescent (as is often the case in the ariolus-group). It
may be distinguished from it by the less broad head, the reticulate
tergite 7 and the shorter apicolateral teeth of sternum 9 (the male
of S. macehualli is unknown). Since the new species differs from
many of its group relatives by the lack of conspicuous pubescence
it may be easily misidentified as a member of the cupreus-group
(Puthz, 1984), particularly with the common and widely distributed
S. albipes Sharp. From this species and from S. cylindricus Sharp
it may be distinguished by the nearly smooth posterior margin
of tergite 10 (compare Fig. 4), the different posterior shape of
sternum 9 (Fig. 6) and by the morphology of aedeagus.
Etymology: This new species is named in honour of the
collector, Richard W. Baumann (Provo).
Stenus tricornis nom. nov.
Stenus tricornis new name for Stenus tricuspis Puthz, 2014:
1698 (junior homonym) nec Puthz, 1984: 77 (senior homonym).
By mistake the specific epithet tricuspis has been published twice.
This is corrected here.
Megalopinus baumanni sp. nov.
Description: Black, shiny, elytra with an indistinctly limited
reddish yellow pattern (Fig. 10) and two short rows of punctures.
Antennal base yellowish, club slightly darker. Maxillary palpi
yellowish-brown. Legs completely yellowish brown.
Length: 2.8-3.4mm (forebody 1.7mm).
PM of HT: HW: 32; DE: 19; PW: 25; PL: 24,5; EW: 38; EL:
37; SL: 30.
Head distinctly narrower than elytra, punctuation of frons
moderately coarse, sparse, 17 punctures on actual middle.
Pronotum about as long as broad, without lateral teeth, sides
convex in anterior half, concave posteriorly; punctuation coarse,
moderately sparse, transverse impressions moderately deep. Elytra
about as long as broad, punctuation as in Fig. 10. Lateral stria of
tergite 5 not extending to the middle of the tergite, paratergites
smooth.
Male: Antennal segment 11 nearly three fifths ad broad as
long (17: 22). Posterior margin of sternite 8 concave on each
side, slightly projecting in the middle. Tergite 10 impunctate.
Aedoeagus (Fig. 9), median lobe with 4 strong spines, parameres
without apical setae.
Female: Unknown.
Type material: Holotype (♂): MEXICO: Veracruz: Ria
Laguna Escondida, Los Tuxtlas Biological Station, 17.XI.1993, R.
W. Baumann: In the Monte L. Bean Life Science Museum, Provo,
U.S.A..
Discussion: This new species belongs to the mixed group 4 of
the punctatus-group (definition see Puthz, 2012: 618), its elytral
pattern closely resembles that of M. cruciger (Sharp), from which
it may be distinguished by the longer elytra, narrower head, minor
length and the morphology of aedeagus (compare Fig. 1, Puthz,
1976). In my key to the neotropic Megalopinus it should be
inserted at column 78 Etymology: This new species is named in honour of the
collector, Richard W. Baumann (Provo).
ACKNOWLEDGEMENT
My thanks are to Dr. Shawn Clark from the Monte L. Bean
Life Science Museum, Provo, for providing the material treated
here.
LITERATURE CITED
Puthz, V. 1976: Beiträge zur Kenntnis der Megalopininen XI Über
Megalopinus cruciger (Sharp) und Megalopinus mexicanus
(Sharp) (Staphylinidae, Coleoptera). Philippia, 3: 159-162.
Puthz, V. 1984: Über neue und alte neotropische Stenus
(Hypostenus) - Arten (Coleoptera, Staphylinidae) 198.Beitrag
zur Kenntnis der Steninen. Entomologische Blätter für Biologie
und Systematik der Käfer, 79 (1983): 65-140.
Puthz, V. 2007: Neue Stenus-Arten, vorwiegend aus dem
Amazonasgebiet (Coleoptera: Staphylinidae). Amazoniana,
19: 87-95
Puthz, V. 2012: Über die neuweltlichen Megalopinus-Arten
(Coleoptera, Staphylinidae) (24. Beitrag zur Kenntnis der
Megalopsidiinen). Linzer biologische Beiträge, 44: 613-834.
Puthz, V. 2014: Neue und alte neotropische Stenus-Arten
(Coleoptera, Staphylinidae) 339. Beitrag zur Kenntnis der
Steninen.- Linzer biologische Beiträge, 46: 1671-1736.
Received: 5 de enero 2015
Accepted: 26 de enero 2015
6
Two new Staphylinid Species from Mexico (Coleoptera, Staphylinidae)
Figures 1-8: Sternite 8 of male (1) of female (3), Sternite 9 of male
(6, 8), tergite 10 (2, 4, 5). ventral aspect of Aedeagus (7): 1-3, 7,
8: Stenus baumanni sp. nov. (PTT), 4, 6: S. albipes Sharp.- Scale
= 0.1 mm.
Figures 9, 10: Dorsal aspect of Aedeagus (9), elytral pattern (10)
of Megalopinus baumanni sp. nov. (HT).- Scale = 0.1mm.
7
Dugesiana
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8
Description of the male of Leptomastidea debachi Trjapitzin and Ruíz Cancino from Baja California Sur,
Mexico, with notes on L. abnormis (Girault) (Hymenoptera: Encyrtidae)
Descripción del macho de Leptomastidea debachi Trjapitzin y Ruíz Cancino de Baja California Sur, México, con notas
sobre L. abnormis (Girault) (Hymenoptera: Encyrtidae)
Serguei Vladimirovich Triapitsyn
Department of Entomology, University of California, Riverside, California, 92521, USA, [email protected]
ABSTRACT
The previously unknown male of the encyrtid wasp Leptomastidea debachi Trjapitzin and Ruíz Cancino is described from Baja California Sur,
Mexico, and a digital image of the holotype female of this species is provided. A lectotype is designated for Paraleptomastix abnormis Girault
(Hymenoptera: Encyrtidae) [= Leptomastidea abnormis (Girault)], which is illustrated; some distributional and host records of this common parasitoid
and also of several other species of the genus Leptomastidea García Mercet are given.
Key words: Hymenoptera, Encyrtidae, Leptomastidea, Mexico, taxonomy, parasitoid.
RESUMEN
Se describe el macho (antes desconocido) del encírtido Leptomastidea debachi Trjapitzin y Ruíz Cancino de Baja California Sur, México, y se
proporciona un imágen digital del holotipo hembra de esta especie. Se designa un lectotipo para Paraleptomastix abnormis Girault (Hymenoptera:
Encyrtidae) [= Leptomastidea abnormis (Girault)], el cual se ilustra; se incluyen registros de distribución y de los huéspedes de este parasitoide común
y de otras especies del género Leptomastidea García Mercet.
Palabras clave: Hymenoptera, Encyrtidae, Leptomastidea, México, taxonomía, parasitoide.
Trjapitzin and Ruíz Cancino (2002) described a very distinctive
species of the encyrtid wasp genus Leptomastidea García Mercet
(Hymenoptera: Encyrtidae), L. debachi Trjapitzin and Ruíz
Cancino, from the state of Baja California Sur, Mexico, based
on female sex only. During a visit to the Entomology Research
Museum, Department of Entomology, University of California,
Riverside, California, USA (UCRC) in 2003, my father Vladimir
Alexandrovich Trjapitzin identified and marked additional,
non-type specimens of this species including several males (the
non-type females were identified by John S. Noyes in 1998 as
“Leptomastidea [sp.]/Gyranusoidea [sp.]”); more recently, I have
recognized yet some more conspecific specimens, all from the type
locality. The holotype of this taxon is deposited in the collection
of the National Museum of Natural History, Washington, District
of Columbia, USA (USNM). Females of L. debachi can be easily
recognized due to its good original description; the taxon is
also included in the world key to the species of Leptomastidea
(Trjapitzin 2009).
Using this opportunity, I also include some taxonomic
information on the common congeneric mealybug (Hemiptera:
Pseudococcidae) primary parasitoid L. abnormis (Girault). It
was described, as Paraleptomastix abnormis Girault, from two
syntypes in the USNM (a female and a male on slides), as well as
from two paratype females (on points) from Sicily, Italy (Girault
1915). Seemingly, these syntypes have never been examined by
encyrtid taxonomists except by Gordon Gordh in 1981 who marked
the slide with a female syntype (Fig. 7) as a lectotype but has never
published that designation; Noyes (2000, p. 137) mentioned a
holotype female of P. abnormis. I have borrowed that slide from
the USNM and thus am able to provide relevant illustrations and
measurements of the lectotype female, which is being properly
designated. Additional distributional and host records of L.
abnormis are given based on specimens deposited in the UCRC
(identifications were made by P.H. Timberlake, H. Compere, D.
Rosen, G. Gordh, J.S. Noyes, and S.V. Triapitsyn); also provided
are new records of some other species of Leptomastidea which I
have recently identified.
Terms used for morphological features are those of Gibson
(1997). Abbreviations used are: F = antennal funicle segment;
mps = multiporous plate sensillum or sensilla on the antennal
flagellar segments (= longitudinal sensillum or sensilla or sensory
ridge(s) of authors). The microscopic slides were examined under
a Zeiss Axioskop 2 plus compound microscope using Nomarski
differential interference contrast optics, and photographed using
the Auto-Montage® system; the photographs were then retouched
where necessary using Adobe Photoshop®.
TAXONOMY
Leptomastidea debachi Trjapitzin and Ruíz Cancino, 2002
(Figs 1-6)
Leptomastidea debachi Trjapitzin and Ruíz Cancino 2002:
32-35. Type locality: Las Barracas (~30 km E of Santiago,
23°28’02’’N, 109°27’01’’W, 50 m), Baja California Sur, Mexico.
Leptomastidea debachi Trjapitzin and Ruíz Cancino: Trjapitzin
et al. 2008: 171 (catalog); Trjapitzin 2009: 166 (key), 169-170
(comments, illustrations); Triapitsyn et al. 2014: 184 (mentioned).
Type material examined. Holotype female [USNM] on point
labeled: 1. “Mex. Baja Cal. Sur, Las Barracas 13 - V - 1985”; 2.
“Coll. P. DeBach Pan trap”; 3. [red] “Holotypus ♀ Leptomastidea
debachi Trjapitzin et Ruíz Cancino”. The holotype (Fig. 1) is in
Dugesiana
excellent condition, complete. Also 4 paratype females [UCRC]
(on points, with some body parts on 2 slides), as listed by
Trjapitzin and Ruíz Cancino (2002); these were initially identified
by Vladimir A. Trjapitzin in 1997 as a “Leptomastidea sp.”.
Additional material examined [all in UCRC]. MEXICO,
BAJA CALIFORNIA SUR, Las Barracas (~30 km E of Santiago,
23°28’02’’N, 109°27’01’’W, 50 m), P. DeBach (pan traps):
22.iv.1984 [1 female]; 7.iv.1985 [1 male]; 20.iv.1985 [1 female, 1
male]; 30.iv.1985 [1 female, 1 male]; 9.v.1985 [1 female, 1 male];
11.v.1985 [1 male]; 21.iv.1986 [1 male]; 12.vi.1986 [1 male].
Description. MALE. Body length 0.66-0.825 mm (drymounted specimens). Vertex mostly brown with yellow borders,
rest of head yellow-orange; base of scape whitish or yellowish and
remainder of scape brown except whitish ventrally, pedicel and
flagellum brown; mesosoma mostly brown except mesopleuron
orange anteriorly; base of gaster light brown, remainder of gaster
brown; legs whitish to pale brownish. Vertex with a strong sculpture
(Fig. 2), in frontal view about 0.54x head width. Antenna (Fig.
3) with scape minus a short radicle about 3.0x as long as wide;
flagellar segments with very long setae (much longer than each
segment’s width); funicle segments much longer than wide (F1,
F5 and F6 the longest), short mps on F3 (1), F4 (1), F5 (1), F6 (2);
clava entire, about 6.4x as long as wide, just slightly wider than
funicle segments, with at least 4 short mps. Mesosoma slightly
longer than metasoma (Fig. 4). Fore wing (Fig. 5) 2.2x as long as
wide, hyaline; longest marginal seta 0.09x maximum wing width.
Hind wing (Fig. 5) hyaline, 4.8x as long as wide; longest marginal
seta 0.36x maximum wing width. Genitalia (Fig. 6) occupying
about 0.4x length of gaster.
Comments. Leptomastidea debachi is known only from the
type locality in Baja California Sur, Mexico, and is native to the
region (Trjapitzin and Ruíz Cancino 2002). The body length of
its holotype female (Fig. 1) is 1.083 mm. Based on the non-type
female and male which have been recently slide-mounted, the
mandible is 2-dentate; the maxillary palpus is 3-segmented and
the labial palpus is also 3-segmented. Thus this taxon may fit
more in the closely related genus Gyranusoidea Compere species
of which, according to Noyes (2000), have a 3-segmented labial
palpus. But Gyranusoidea spp. have at most 2 infuscate fasciae on
the fore wing (Noyes 2000) whereas L. debachi has 3 such fasciae.
Both characters, however, do not seem to be of generic-level value,
and their variability within several very similar nominal genera
of the Anagyrini is just another indication that Gyranusoidea and
Leptomastidea are likely congeneric.
Leptomastidea abnormis (Girault, 1915)
(Figs 7, 8)
Paraleptomastix abnormis Girault 1915: 184-185. Type
locality (of the lectotype designated here): an unspecified locality
in Sicily, Italy (Girault 1915); apparently either [Contrada] Salina
or Mondello, Palermo Province, Sicily (see “Comments” below).
Leptomastidea abnormis (Girault): Noyes 2000: 137138 (taxonomic history, list of synonyms, diagnosis, host
associations, use in biocontrol, distribution, comments), 301-302,
347 (illustrations); Trjapitzin and Ruíz Cancino 2000: 114-117
(history and use in biological control, taxonomy, distribution,
10
host associations, illustration); Trjapitzin and Ruíz Cancino 2002:
31-32 (mentioned), 34 (illustration); Trjapitzin et al. 2004: 90-91
(catalog); Trjapitzin et al. 2008: 171 (catalog); Trjapitzin 2009:
166-168 (key, distribution, history and use in biological control,
comments, host associations, illustrations).
Type material examined. Lectotype female [USNM], here
designated to avoid any possible ambiguity regarding the identity
and status of its type specimens, on slide (Fig. 7) labeled: 1. “Calif.
State Insectary No. 19409 U.S.N.M. Type ♀. Paraleptomastix
abnormis Girault LECTOTYPE GORDH81”; 2. “Calif. State
Insectary No. 700XV Ex Pseudococcus citri Sicily Harry S.
Smith”; 3. [USNM bar code, on the underside] “USNMENT
01049089”. The lectotype (Fig. 8) is in good condition, mounted
dorsoventrally, complete. The male syntype in the USNM
mentioned by Girault (1915) is the paralectotype (not examined).
Other material examined [UCRC]. ARGENTINA,
AUTONOMOUS CITY OF BUENOS AIRES, Buenos Aires,
21.iv.1976, M. Rose (from a mealybug) [1 female, 1 male].
AUSTRALIA, QUEENSLAND, Brisbane, vi.1917, E.J. Vosler
(from Planococcus sp. [P. ?citri (Risso)] California State Insectary
[Sacramento, Sacramento Co., California, USA] No. 3934) [3
females, 2 males]. BRAZIL, RIO DE JANEIRO, Niterói [as
Nictheroy], 12.xii.1934, H. Compere (“captured by P. citri”) [1
female]. CHILE, V REGIÓN DE VALPARAÍSO, Quillota, i.1944,
C. Capdevilla [3 females]. CYPRUS, LIMASSOL, Limassol,
14.x.1968, G.P. Georghiou (from a mealybug) [1 female].
HAWAIIAN ISLANDS (USA), HAWAII, Oahu I., Honolulu:
12-16.iv.1916 (from P. citri) [7 females, 2 males]; v.1916 (from
Saccharicoccus sacchari (Cockerell)) [2 females]; 23.vi.1916
(from P. citri) [1 female]. ISRAEL, Rishon LeZion, viii.1938
[4 females]. ITALY, CAMPANIA, Napoli Province, Sorrento,
19.v.1955, S. Flanders (from a mealybug on Citrus sp.) [2 females,
1 male]. SICILY, Palermo Province: 23.iv.1914 (emerged 2.vi.1914
at the California State Insectary (No. 720C), E.J. Vosler, from the
same material as the type series of L. abnormis, see below under
“Comments”); arrived from Palermo to Sacramento, California,
USA 17.vii.1914 (California State Insectary No. 780, emerged from
P. citri 21-22.vii.1914, E.J. Vosler) [6 females, 2 males]; Palermo,
Università degli Studi di Palermo garden, 26-29.viii.2005, S.V.
Triapitsyn (yellow pan traps under red wine grapes with fruit
heavily infested with Planococcus ficus (Signoret)) [7 females,
1 male]. JAPAN, Honshu I., SHIZUOKA, Okitsu, vii.1914, S.I.
Kuwana (from Planococcus sp. [as Pseudococcus sp.] on Citrus
sp.; California State Insectary No. 783) [1 female]. KENYA,
Kianzabe [Estate], 2.ii.1937, A.R. Melville (from Planococcus
kenyae (Le Pelley)) [1 female]. Kiambu, A.R. Melville (from
P. kenyae, misidentified by H. Compere as L. jeanneli García
Mercet): 19.iv.1937 [1 female]; 3.v.1937 [1 female]. MEXICO,
BAJA CALIFORNIA SUR, La Paz, 13.i.1967, P. DeBach (from
Ferrisia virgata (Cockerell) on Philodendron sp.) [1 female].
NUEVO LEÓN, Monterrey, P. DeBach (from F. virgata on lime):
5.xi.1965 [1 male]; 30.xi.1965 [1 female]. PUEBLA, Puebla,
3.iv.1954, P. DeBach (from P. citri on orange) [6 females, 1 male].
REPUBLIC OF THE CONGO, POOL, Lesio-Louna Reserve,
Iboubikro site, 3°16’11’’S 15°28’16’’E, 340 m, 9-15.ix.2008,
M. Sharkey [1 female]. USA, CALIFORNIA: Los Angeles Co.,
Description of the male of Leptomastidea debachi from Baja California Sur, Mexico, with notes on L. abnormis
Whittier: 20.i.1922, E.W. Rust (from P. citri) [numerous females
and males]; vi.1922, H. Compere (from P. citri) [7 females];
28.viii.1934 [1 male]. Orange Co.: Irvine: University of California
South Coast Research and Extension Center, 7.xii.1977, M. Rose
[3 females]; 33°41’40.6’’N 117°46’34.3’’W, 38 m, 19.viii.2012,
V.V. Berezovskiy (on pomegranate infested with mealybugs) [2
females]. Locality unknown, 17.i.1946, P. DeBach (from P. citri
on melon in an insectary) [3 females, 3 males]. Riverside Co.,
Riverside: 1947, Citrus Experiment Station Insectary (from a
mealybug) [5 females]; 1956 (propagated on P. citri at the University
of California, Riverside Quarantine by T. Fisher; originally from:
Puebla, Mexico, 17.iii.1956, P. DeBach, from a mealybug on
oleander) [numerous females and males]; University of California
Biocontrol Grove, 33°58.2’N 117°19.1’W, 355 m, 7.x.2005, R.
Waterworth (from a mealybug on Citrus sp.) [4 females]. San
Bernardino Co., Big Bear Lake, 15.x.1963, M. Badgley (on
Ceanothus sp.) [1 male]. San Diego Co.: Escondido: 15.x.1963
(from a mealybug on lemon) [23 females, 16 males]; 16.x.1969,
W. White (from P. citri on Valencia orange) [4 females, 7 males].
Rancho Santa Fe, 1.ix.1981, D. Friese (on Valencia orange) [1
female]. San Diego: 2368 Moore St., 25.xi.1968, S.C. Warner (on
lemon) [3 females, 1 male]; 3878 Old Town Ave., 25.xi.1968, S.C.
Warner (on lemon) [1 female, 9 males]. Ventura Co.: Fillmore,
21.viii.1934 [1 female]. Santa Paula, 16.viii.1956, C.F. Lagace
(from P. citri) [1 female, 3 males]. Simi Valley: 14.ix.1961, W.
White (from P. citri on Citrus sp.) [1 female]; 2.x.1968, W. White
(on Valencia orange at Sinaloa Ranch) [2 males].
Taxonomic notes. Measurements of the lectotype of
Paraleptomastix abnormis (mm, as length or length:width). Body:
0.978; head: 0.209; mesosoma: 0.412; gaster: 0.48; ovipositor:
0.215. Antenna: radicle: 0.048; scape: 0.193; pedicel: 0.067; F1:
0.067; F2: 0.067; F3: 0.073; F4: 0.073; F5: 0.07; F6: 0.071; clava:
0.161. Fore wing: 0.99:0.338; longest marginal seta: 0.012; hind
wing: 0.615:0.086; longest marginal seta: 0.079.
Comments. Leptomastidea abnormis is a widespread, common
mealybug parasitoid which is probably native to the Mediterranean
region and has been introduced, accidentally or otherwise, to the
New World and elsewhere (Noyes 2000; Trjapitzin and Ruíz
Cancino 2000; Trjapitzin 2009). Republic of the Congo is a new
country record for this species.
The published data on the lectotype and other specimens of
the type series of L. abnormis are incomplete (Girault 1915). The
unpublished California State Insectary records (notes) on small
cards are being kept under my care at the University of California,
Department of Entomology Insectary and Quarantine Facility.
Among them, I have found several hand-written notes, starting
with No. 700 and then No. 700XV indicated on the lectotype slide
(Fig. 7), which are pertinent to the type specimens of L. abnormis
that provide additional, important information about their origin,
as follows (Figs 9-11).
Note No. 700 (dated 23.iv.1914, Fig. 9): “CALIFORNIA
COMMISSION OF HORTICULTURE Note No. 700 Date 4-2314 Noted by HARRY S. SMITH. This number to be used for
identification of unknown species. Each species to be given a
Roman numeral, the 700 number being used for permitting the
records to be filed in the regular series of notes.”.
Note No. 700 (dated 2.vi.1914, Fig. 10): “CALIFORNIA
COMMISSION OF HORTICULTURE Note No. 700 Date Je214 Noted by E. J. Vosler No XV from 720C – small long legged
Encyrtid three smoky bands on wings which are held at an angle
to the body…”.
Note No. 720 (dated 20.v.1914, Fig. 11): “2. CALIFORNIA
COMMISSION OF HORTICULTURE Note No. 720 Date 5-2014 Noted by Smith II – lemon twigs – Jos. Martino – Contrada
Salina, Mondello – Palermo. Collected 4-23 – shipped 4-25 – given
#720C (in tubes, bad condition)… [data on #720d]… Shipped via
S.S. Europa”.
Thus L. abnormis specimens [as parasitized mealybugs, most
likely P. citri, on lemon twigs] were collected by J. Martino on
23.iv.1914 apparently either in Salina (Contrada Salina, ca. 2-3
km W of Trabia) or in Mondello, Palermo Province, Sicily (or,
possibly, in both localities) and shipped from Palermo on 25.iv.1914
via SS Europa (this Steam Ship was operated by “La Veloce”
Navigazione Italiana line, which was then carrying passengers and
cargo from Italy to New York, USA); the parasitoids emerged at
the California State Insectary in Sacramento, California, USA on
2.vi.1914 (collected by E.J. Vosler) after that shipment had been
received there on 20.v.1914.
Records of some other species of Leptomastidea
(material in UCRC)
Leptomastidea jeanneli García Mercet, 1924
ERITREA, NORTHERN RED SEA, Nefasit, 14.iv.1930,
H. Compere (from Pseudococcus sp. on Olea europaea subsp.
cuspidata [as O. chrysophylla]) [1 female]. Eritrea is a new
country record for this species.
Leptomastidea rubra Tachikawa, 1956
JAPAN, Honshu I., CHIBA, Yawata-zaki (near Katsuura),
23.viii.1979, D. Meyerdirk (from Pseudococcus comstocki
(Kuwana) on apple) [1 female]. KYRGYZSTAN, DZHALALABAD, Chandalash River, 41°44’19’’N 70°52’22’’E, 1630 m,
20-21.vi.1999, C.H. Dietrich [1 female, 2 males]. TALAS, 18
km WSW of Taldy Bulak, 42°26’31’’N 72°49’12’’E, 1930 m,
15.vi.1999, C.H. Dietrich [1 female]. Kyrgyzstan is a new country
record for this species.
Leptomastidea usta Prinsloo, 2001
KENYA, NAIROBI, Nairobi, v.1948, H. Compere [1 female].
SOUTH AFRICA, EASTERN CAPE, Ultenhage, Bobyon Point,
10-12.i.1937, H. Compere (from Pseudococcus longispinus
(Targioni Tozzetti) on oleander) [1 female, 1 male]. GAUTENG,
Pretoria, 18.iv.1937, H. Compere (“Comperes shipment No. 18
From Johannesburg Oleander material Import A205”) [1 female,
1 male]. KWAZULU-NATAL, Winklespruit, 1.iv.1926, E.W. Rust
(from Pseudococcus sp.) [1 female] (identified by H. Compere
under his manuscript name “Leptomastidea coccomes Compere”).
WESTERN CAPE, Cape Town, Signal Hill, 8-30.xi.1924, E.W.
Rust (from ?Pseudococcus sp.) [3 females, 4 males] (identified by
H. Compere under the same manuscript name as above). Kenya is
a new country record and Pseudococcus longispinus is a new host
record for this species.
11
Dugesiana
ACKNOWLEDGMENTS
I thank Michael W. Gates (USNM) for the loan of the syntype
of Paraleptomastix abnormis and also Vladimir V. Berezovskiy
(UCRC) for making excellent slide-mounts.
LITERATURE CITED
Gibson, G.A.P. 1997. Chapter 2. Morphology and terminology,
pp. 16-44. In: Gibson, G.A.P., J.T. Huber and J.B. Woolley
(eds), Annotated keys to the genera of Nearctic Chalcidoidea
(Hymenoptera). NRC Research Press, Ottawa, Ontario,
Canada.
Girault, A.A. 1915. Four new encyrtids from Sicily and the
Philippines. The Entomologist, 48 (627): 184-186.
Noyes, J.S. 2000. Encyrtidae of Costa Rica (Hymenoptera:
Chalcidoidea), 1. The subfamily Tetracneminae, parasitoids
of mealybugs (Homoptera: Pseudococcidae). Memoirs of the
American Entomological Institute, 62: plate 1 + 1-355.
Triapitsyn, S.V., M.B. Aguirre, G.A. Logarzo and A. Dal
Molin. 2014. Taxonomic notes on primary and secondary
parasitoids (Hymenoptera: Encyrtidae and Signiphoridae)
of Hypogeococcus spp. (Hemiptera: Pseudococcidae) in
Argentina. Acta Zoológica Lilloana, 58 (2): 171-186.
Trjapitzin, V.A. 2009. [Review of species of the genus
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and with separation of a new genus from Turkmenia].
Entomologicheskoe Obozrenie, 88 (1): 164-176. [In Russian.]
Trjapitzin, V.A., F.D. Bennett, E. Ruíz-Cancino and J.M. CoronadoBlanco. 2004. Annotated check-list of encyrtids (Hymenoptera:
Chalcidoidea: Encyrtidae) of Central America, the West Indies
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Trjapitzin, V.A., S.N. Myartseva, E. Ruíz-Cancino and J.M.
Coronado-Blanco. 2008. Clave de géneros de Encyrtidae
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No. 4. Universidad Autónoma de Tamualipas, Ciudad Victoria,
México.
Trjapitzin, V.A. and E. Ruíz Cancino. 2000. Encírtidos
(Hymenoptera: Encyrtidae) de importancia agrícola en México.
Serie Publicaciones Científicas, Centro de Investigación y
Desarrollo Agropecuario, Forestal y de la Fauna, Universidad
Autónoma de Tamaulipas (Ciudad Victoria, Tamaulipas,
México) No. 2.
Trjapitzin, V.A. and E. Ruíz Cancino. 2002 (2001). Leptomastidea
debachi (Hymenoptera: Encyrtidae), una nueva especie de
Baja California Sur, México. Biotam (nueva serie), 12 (3): 3136.
Recibido: 12 de enero de 2015
Figure 1. Leptomastidea debachi, female (holotype): habitus
(lateral view).
Figures 2, 3. Leptomastidea debachi, male (non-type specimen,
Las Barracas, Baja California Sur, Mexico): 2. Head (frontal
view). 3. Antenna.
12
Description of the male of Leptomastidea debachi from Baja California Sur, Mexico, with notes on L. abnormis
Figures 4-6. Leptomastidea debachi, male (non-type specimen,
Las Barracas, Baja California Sur, Mexico): 4. Mesosoma and
metasoma (dorsal view). 5. Fore and hind wings. 6. Genitalia.
Figures 7, 8. Leptomastidea abnormis, female (lectotype of
Paraleptomastix abnormis): 7. Slide, 8. Habitus. Figures 9-11.
California State Insectary notes for the year 1914 pertinent to the
type series of Leptomastidea abnormis: 9. No. 700. 10. No. 700
(XV). 11. No. 720 (C).
13
Dugesiana
Nuevo Libro
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14
Nuevos hospederos de Thasus gigas (Klug, 1835) (Hemiptera: Coreidae) en Jalisco, México
New hosts for Thasus gigas (Klug, 1835) (Hemiptera: Coreidae) from Jalisco, México
J. Jesús Ruiz Moreno
Departamento de Botánica y Zoología, Centro Universitario de Ciencias Biológicas y Agropecuarias. Camino Ing. Ramón
Padilla Sánchez No. 2100. La Venta del Astillero, Zapopan, 45110, Jalisco, México, [email protected]
Thasus gigas (Klug, 1835), la chinche gigante del mezquite, es
un insecto que presenta un comportamiento gregario, monófago y
univoltino (Aldrich y Blum, 1978; Brailovsky et al., 1995), cuya
presencia en México se ha reportado desde hace varias décadas,
principalmente por el daño que causan las ninfas al alimentarse de
los brotes tiernos y las vainas inmaduras del mezquite (Ward et al.,
1977; Brailovsky et al., 1995).
Van Duzee (1923) consideró a los mezquites (Prosopis spp.)
y huizaches (Acacia spp.), como únicos hospederos. Brailovsky
et al. (1994a), Escoto et al. (2000) y Dávila et al. (2002) hacen
mención de la especie de mezquite (Prosopis laevigata (Willd.) M.
C. Johnst.). Forbes y Schaefer (2003) Ramos (2006) de Prosopis
juliflora (Sw.) DC.; Acuña et al. (2011) de Prosopis velutina
Wooton. Además Brailovsky et al. (1994a), Dávila et al. (2002)
y Mendoza et al. (2009) especifícan la especie de huizache como
Acacia farnesiana (L.) Willd. Aunque de acuerdo con Schaefer y
O’Shea (1979) se alimenta de especies de fabáceas, sugiriendo que
su rango de hospederos puede ser mayor. Lo anterior es confirmado
por Woods (1992) quien mencionó a Parkinsonia aculeata L. otra
especie de la misma familia, como hospedera de T. gigas.
En junio de 2013 se observaron árboles de Bauhinia variegata
L. (20.445052 N, 103.304788 W) y Platymiscium trifoliolatum
Benth. (20.445249 N, 103.305093 W), así como de Calliandra
bijuga Rose (20.445147 N, 103.304896 W) a una altura de 1,586
msnm, con altas poblaciones del coréido T. gigas, en los jardines
del Departamento de Botánica y Zoología del Centro Universitario
de Ciencias Biológicas y Agropecuarias de la Universidad de
Guadalajara en Zapopan, Jalisco, México. Para la determinación
de la especie del insecto, se consideró el trabajo de Brailovsky et
al. (1994a). Los especímenes colectados fueron depositados en la
Colección Entomológica del Centro de Estudios en Zoología de la
Universidad de Guadalajara (CZUG).
Los daños provocados por las ninfas de T. gigas al alimentarse
de los brotes tiernos de las especies B. variegata, C. bijuga y
P. trifoliolatum, pueden ser importantes (Figs. 1-3), ya que los
brotes apicales que sirvieron de alimento a las colonias, murieron
y fue afectado el tejido de crecimiento de la planta (meristemos).
Estos efectos concuerdan con los reportados por Van Duzee
(1923) y Acuña et al. (2011), quienes mencionan que las chinches
provocaron severos daños a los retoños mientras que Ward et al.
(1977) y Brailovsky et al. (1994b), le atribuyen la reducción en la
producción de semillas al atacar los frutos en estado inmaduro.
La presencia de T. gigas en México se ha registrado
previamente en 20 estados de la República Mexicana, donde se
destacan Hidalgo (Ramos y Pino, 2001; Ramos, 2006; Mendoza
et al., 2009; Ramos, 2009; GBIF, 2013) y Puebla (Brailovsky et
al., 1995; Dávila et al., 2002; Acuña et al., 2011; GBIF, 2013) con
cuatro localidades registradas y Guanajuato (GBIF, 2013), Estado
de México (Ramos, 2009; GBIF, 2013) y Veracruz (Walker, 1871;
GBIF, 2013) con tres localidades cada uno.
La información presentada proporciona una nueva localidad
de distribución geográfica de T. gigas en Jalisco (Zapopan), ya que
solo se tenía registro de su presencia en el municipio de Chapala
(GBIF, 2013). Además, se reportan tres nuevos hospederos: P.
trifoliolatum, árbol endémico de México y C. bijuga, especie
nativa de América con distribución desde Nayarit (México) hasta
Costa Rica (GBIF, 2014). La especie B. variegata es introducida de
Asia y no se tiene información de la presencia de T. gigas en otros
países, lo que sugiere que B. variegata presenta las características
apropiadas para el desarrollo del coréido y que puede encontrarse
en la asociación vegetal del bosque espinoso, cuyos componentes
principales, por lo menos en gran proporción son árboles espinosos
(mezquites y huizaches), los hospederos naturales. Al parecer la
relación entre T. gigas y las especies hospederas no es fortuita,
debido a que tanto las especies reportadas con anterioridad como
las aquí mencionadas pertenecen a la misma familia (Fabaceae).
LITERATURA CITADA
Acuña, A. M., L. Caso, M. M. Aliphat and C. H. Vergara. 2011.
Edible insects as part of the traditional food system of the
Popoloca town of Los Reyes, Mezontla, Mexico. Journal of
Ethnobiology 31 (1): 150 -169.
Aldrich, J. R. and M. S. Blum. 1978. Aposematic aggregation of a
bug Hemiptera, Coreidae, the defensive display and formation
of aggregations. Biotropica 10(1): 58-61.
Brailovsky, H., C. W. Schaefer, E. Barrera and R. J. Packauskas.
1994a. A revision of the genus Thasus (Hemiptera: Coreidae:
Coreinae: Nematopodini). Journal of the New York
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Recibido: 21 de enero 2015
Aceptado: 24 de febrero 2015
3
Figura 1. a. Ninfa de T. gigas sobre B. variegata. b. Daño de los brotes. Figura 2. a Ninfa de T. gigas sobre C. bijuga. b. Daño en el brote. Figura 3. a.
Ninfas de T. gigas sobre P. trifoliolatum (nótese el carácter gregario) b. Daño en el brote.
16
Primer registro del género Palaemnema Selys, 1860 (Odonata: Platystictidae) para el estado de Durango,
México
First record of the genus Palaemnema Selys, 1860 (Odonata: Platystictidae) for the state of Durango, Mexico
Jareth Román-Heracleo, Leonardo González-Valencia, Guillermo Enrique López-Medina
CTA, Consultoría y Tecnología Ambiental México S.A. de C.V. Av. Insurgentes Sur 1763, piso 5. Col. Guadalupe Inn. C.P. 01020,
Delegación Álvaro Obregón, México. D.F. [email protected], [email protected], guillermolm@gmail.
com.
La diversidad de Odonata en México está representada por
355 especies, equivalente al 6.1% de la diversidad a nivel mundial
(González-Soriano y Novelo-Gutiérrez 2014). Para el estado de
Durango se tienen registradas 56 especies de 27 géneros y ocho
familias (Paulson y González-Soriano 2014). Los Platystictidae
(Zygoptera) son una de las 14 familias reportadas para México
(González-Soriano y Novelo-Gutiérrez 2014), y la integran
odonatos de tamaño pequeño a mediano (40 a 50mm) (Ramírez
2010), de la cual solo un género se encuentra registrado para el
continente americano: Palaemnema Selys, 1860, con ocho especies
para México (Novelo-Gutiérrez 2003). La familia Platystictidae
habita en cuerpos de agua que atraviesan áreas boscosas e incluso
por áreas con poca vegetación ribereña. Las larvas se caracterizan
por tener cuerpo alargado, delgado, de color café pardo y presenta
el prementón ensanchado hacia los costados y suelen habitar en
aguas someras, bajo las rocas en el fondo y en lugares de corriente
rápida (Ramírez 2010).
Durante un estudio realizado en el río Piaxtla (San Dimas,
Durango), se recolectaron macroinvertebrados acuáticos, entre los
cuales se encontraron ejemplares dePalaemnema. Este es el primer
registro de la familia Platystictidae y su género Palaemnema para
el estado de Durango.
Palaemnema Selys,1860
Material examinado: MÉXICO: Durango; municipio San
Dimas, río Piaxtla. Se muestrearon cuatro sitios. El primero se
localiza en las coordenadas 24°5’32.61”N y 105°56’31.44”O, el
segundo sitio en las coordenadas 24° 6’43.51”N y 105°54’23.66”O,
el tercero en los 24° 6’23.69”N y 105°55’15.94”O; y el cuatro
se localiza en los 24° 4’23.03”N y 106° 0’21.14”O, a una altura
de mar de 493m, 557m, 545m y 433msnm, respectivamente. Se
realizaron muestreos anuales, del 2012-2014.
Se recolectaron e identificaron 34 larvas de Palaemnema,
algunos detalles de la morfología de ejemplares colectados
se muestran en la figura 1. El material se encuentra depositado
en la colección de CTA, Consultoría y Tecnología Ambiental
México S.A. de C.V. Para México, Palaemnema está registrado
en los estados de Campeche, Chiapas, Chihuahua, Estado de
México, Hidalgo, Michoacán, Morelos, Nayarit, Nuevo León,
Oaxaca, Puebla, Tabasco, San Luis Potosí, Sonora y Veracruz
(Paulson y González-Soriano 2014). Con este registro se amplía la
distribución de la familia Platystictidae y el género Palaemnema
para el estado de Durango.
Diagnosis. Familia Platystictidae, Palaemnema sp. Las larvas
tienen el cuerpo alargado y generalmente de color castaño, con la
parte anterior de la cabeza de color pardo-rojiza (Fig. 1A). Los
ojos (Fig. 1B) son pequeños respecto al área total de la cabeza.
El prementón tiene los márgenes laterales notablemente convexos
(Fig. 1C), característica única de esta familia; branquias caudales
infladas y con filamento terminal (Fig. 1D), (Ramírez 2010).
AGRADECIMIENTOS
Los autores agradecen a los doctores Alonso Ramírez
(Universidad De Puerto Rico, Puerto Rico) y Rodolfo Novelo
Gutiérrez (Instituto de Ecología, A.C., México), por la
corroboración en la identificación de los especímenes y por su
valiosa ayuda en la revisión y sus acertadas observaciones para la
mejora del manuscrito.
LITERATURA CITADA
González-Soriano, E.& R. Novelo-Gutiérrez. 2014. Biodiversidad
de Odonata en México. Revista Mexicana de Biodiversidad,
Suplemento 85:S243-S251.
Novelo-Gutiérrez, R. 2003. The larva of Palaemnema domina
Calvert, 1903. (Odonata: Platystictidae). Transactions of
theAmerican Entomological Society, 129(1):71-75.
Paulson,D. & E. González Soriano. 2014. Mexican Odonata.http://
www.pugetsound.edu/academics/academic-resources/slatermuseum/biodiversity-resources/dragonflies/mexican-odonata/
Ramírez, A. 2010. Odonata. Revista de Biología
Tropical,Suplemento58:97-136.
Aceptado: 17 de febrero 2015
Dugesiana
B
A
C
D
Figura 1. Platystictidae, Palaemnema. A) Vista dorsal de una larva joven. B) Cabeza, las flechas indican los ojos pequeños. C) Vista
ventral del prementón (las flechas señalan los márgenes convexos) D) Branquias caudales.
18
Primer registro de la hormiga Nesomyrmex echinatinodis (Forel, 1886) (Hymenoptera: Formicidae:
Myrmicinae) para Tamaulipas, México asociada a Chamaedorea radicalis
First record of Nesomyrmex echinatinodis (Forel, 1886) (Hymenoptera: Formicidae: Myrmicinae) for Tamaulipas, México
associated with Chamaedorea radicalis
Madai Rosas-Mejía*, Manuel Lara-Villalón* y Miguel Vásquez-Bolaños**
Instituto de Ecología Aplicada, Universidad Autónoma de Tamaulipas, Avenida División del Golfo Nº 356, La Libertad, 87019
Cd. Victoria, Tamaulipas, México. [email protected], [email protected]; **Entomología, Centro de Estudios en
Zoología, Departamento de Botánica y Zoología, Centro Universitario de Ciencias Biológicas y Agropecuarias, Universidad de
Guadalajara. Apdo. Postal 134, Zapopan, Jalisco, México, C. P. 45100. [email protected].
*
El género Nesomyrmex Wheeler, 1910 pertenece a la subfamilia
Myrmicinae en la actual tribu Crematogastrini (Ward et al. 2015).
Hasta hace poco formaba parte de Leptothorax. Bolton (2003)
dividió a dicho género en tres distintos: Leptothorax, Nesomyrmex
y Temnothorax. La distribución de Nesomyrmex se encuentra
limitada a las zonas más cálidas de las Regiones Afrotropicales y
Neotropicales (Kempf 1959). Se han registrado diez especies en la
región Afrotropical (Bolton 1982, 2003; Snelling 1992), cuatro en
Madagascar (Bolton 2003) y 22 en la Región Neotropical (Kempf
1959; Diniz 1975; Bolton 2003; Longino 2006). En México el
género está representado por seis especies: N. brimodus (Bolton,
1995); N. echinatinodis (Forel, 1886); N. pittieri (Forel, 1899);
N. tonsuratus (Kempf, 1959); N. vicinus (Mayr, 1887) y N. wilda
(Smith, 1943) (Vásquez-Bolaños 2011). Con una distribución
marcadamente neotropical. Nesomyrmex echinatinodis se
caracteriza por presentar la cabeza brillante, con escultura
reticulada-rugosa restringida a las mejillas; lóbulos metasternales
redondeados; presenta un par de espinas propodeales, espinas en
el peciolo y pospeciolo; el cuarto tergito abdominal liso y brillante.
Se distribuye desde México hasta el sur y oeste de Brasil, en
ambientes de bosque húmedo tropical, bosque lluvioso de tierras
bajas, bosque húmedo montano y selva tropical (Longino 2004).
En México se conoce para los estados de Hidalgo, Quintana Roo y
Veracruz, siendo este último el reporte más al norte (Kemp, 1972;
Vásquez-Bolaños 2011).
El sitio de estudio se localiza en la Reserva de la Biosfera “El
Cielo” (RBC), en las estribaciones de la Sierra Madre Oriental
conocidas como Sierra de Cucharas y Sierra Chiquita. En los
municipios de Gómez Farías, Ocampo, Jaumave y Llera de Canales,
al suroeste del estado de Tamaulipas. Entre los paralelos 23º 03´2.9´´
latitud Norte y los meridianos 99º 08´55.2´´ longitud Oeste. El
tipo de vegetación predominante es bosque mesófilo de montaña;
con precipitaciones máximas de 2856 mm. La temperatura media
anual varía entre 39ºC y 4.4 ºC (Sosa 1987). Se realizaron colectas
en un cultivo de palma “Camedor” Chamaedorea radicalis en el
ejido “El Azteca” dentro de la Reserva de la Biosfera “El Cielo”,
éste se encuentra bajo el dosel arbóreo compuesto principalmente
por elementos de bosque tropical subcaducifolio utilizados como
sombra o nodriza, como son: Guazuma ulmifolia Lam., Cedrela
odorata L., Lysiloma microphyllum Benth, Bursera simaruba (L.)
Sarg., Enterolobium cyclocarpum Griseb., Brosimum alicastrum
Sw (Mora-Olivo et al. 1997). El muestreo se realizó utilizando
red entomológica de golpeo durante la época lluviosa del 2013
(abril-octubre), colectándose cuatro individuos, etiquetados con la
siguiente información: México, Tamaulipas, Reserva de la Biosfera
“El Cielo”, Ejido “El Azteca”, col. sobre Chamaedorea radicalis,
Alt. 350 msnm, red entomológica. De acuerdo a los resultados,
se reporta el primer registro de Nesomyrmex echinatinodis para
Tamaulipas, México. Los individuos se encuentran depositados en
la Colección Entomológica del Instituto de Ecología Aplicada de la
Universidad Autónoma de Tamaulipas. Esta especie se reporta en
agroecosistemas como depredador del minador del café Leucoptera
coffeella (Lomeli-Flores et al. 2009). Es el registro más al norte
que se tiene de la especie en América ampliando su distribución en
aproximadamente 500 km. También es el primer registro de esta
especie asociada a Chamaedorea radicalis en México, siendo esta
información importante en el Manejo Integrado de Plagas como
especie potencial depredadora de plagas en agroecosistemas.
AGRADECIMIENTOS
Al Proyecto: Capacitación en técnicas de cultivo para palma
camedor (Chamaedorea radicalis Mart.) como estrategia para
la conservación y aprovechamiento sustentable en la Reserva de
la Biosfera El Cielo. World Wildlife Found-Uat-Asociación de
Palmilleros del Sur de Tamaulipas. 2011-2012.
LITERATURA CITADA
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Aceptado: 4 de marzo 2015
Primer registro de ácaros acuáticos (Acari: Hydrachnidia) del estado de Querétaro, México
First records of water mites (Acari: Hydrachnidia) from Queretaro, Mexico
1
2
3
4
Tom Goldschmidt , Marcia M. Ramírez-Sánchez , Adriana Pedroza-Ramos , Axel E. Rico-Sánchez , Margarita
5
6
7
5
P. Ojeda , Ricardo Miguel Pérez-Munguia , Mabel Pimiento-Ortega , Ana L. Carlos-Delgado , Salvador Durán6
Suárez
1
2
Zoologische Staatssammlung, Munich, Alemania [email protected]; Laboratorio de Acarología “Anita Hoffmann”,
3
Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de México [email protected]; Unidad de Ecología
en Sistemas Acuáticos (UDESA), Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia (UPTC) [email protected];
4
Laboratorio de Bioconservación y manejo, Escuela Nacional de Ciencias Biológicas del IPN. Prol. de Carpio y Plan de Ayala
5
S/N, Col. Santo Tomás, México 11340. México, D.F. [email protected]; Colección Nacional de Ácaros (CNAC), Instituto de
6
Biología, Universidad Nacional Autónoma de México [email protected]; [email protected]; Laboratorio
de Entomología “Sócrates Cisneros Paz”. Universidad Michoacana de San Nicolás de Hidalgo [email protected],
7
[email protected]; Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia UPTC [email protected].
RESUMEN
La fauna de ácaros acuáticos (Acari: Hydrachnidia) de México con 258 especies registradas, es una de las mejor conocidas respecto al resto de
Latinoamérica. Sin embargo, dicho conocimiento es heterogéneo: dada la complejidad geológica, climática y biogeográfica del país, algunas regiones
han sido mejor exploradas que otras, tal es el caso del sureste de México y la Costa del Golfo, a diferencia de la región Centro-Norte, para la cual
prácticamente no existen datos. Durante el curso de ácaros acuáticos, impartido como actividad previa al Segundo Congreso Latinoamericano de
Macroinvertebrados de Agua Dulce, celebrado en la ciudad de Querétaro, se muestreó en el Río Arroyo La Barranca (conocido como Río Escanela),
en la Reserva de la Biósfera Sierra Gorda de Querétaro. En total se obtuvieron 112 individuos pertenecientes a los géneros Hydrodroma, Protzia,
Sperchon, Torrenticola, Atractides, Corticacarus, Mideopsis, Aturus, Woolastookia y Axonopsis, representando a siete familias de ácaros acuáticos.
Los ejemplares recolectados constituyen los primeros registros de Hydrachnidia para el estado de Querétaro y el primer registro del género Protzia
para México. Nuestros resultados, a pesar de que la recolecta tenía únicamente fines docentes, indican una clara separación de la fauna de los diferentes
microambientes y exponen la diversidad potencial de ácaros acuáticos que aún no se describe o registra en ésta y otras regiones de México.
PALABRAS CLAVE: Hydrachnidia, ácaros acuáticos, México, Sierra Gorda, diversidad, microhábitats.
ABSTRACT
With 258 reported species, the Mexican water mite fauna is one of the better known within Latin America. With respect to the geological, climatic
and biogeographic complexity of the Country, this knowledge is not homogeneous – some regions, especially at South-East, including the Gulf coast, are
much better investigated than others, like the central-north, where nearly no data are available. During a water mite course (taking place as pre-congress
activity of the Second Latin-American Congress on Freshwater Invertebrates in Querétaro) we sampled in the Río Arroyo La Barranca (known as Río
Escanela) in the Reserva de la Biósfera Sierra Gorda de Querétaro. In total we collected 112 water mite specimens of ten genera – Hydrodroma, Protzia,
Sperchon, Torrenticola, Atractides, Corticacarus, Mideopsis, Aturus, Woolastookia and Axonopsis – in seven families. These specimens represent the
first records of Hydrachnidia for the Querétaro State. The finding of Protzia is the first record of this genus in Mexico. In spite of the rather small number
of water mites collected, a clear separation of the fauna in different microhabitats was found and these findings are indicative for the potential and so
far undescribed diversity of this, as well as other regions in Mexico.
KEY WORDS: Hydrachnidia, water mites, Mexico, Sierra Gorda, diversity, microhabitats.
El rápido deterioro de los cuerpos de agua dulce en América
Latina, aunado al conocimiento parcial de algunos grupos de
invertebrados como los ácaros acuáticos (Acari: Hydrachnidia),
constituyen un problema serio. En el Neotrópico conocemos un
poco más de 1300 especies de ácaros acuáticos en 164 géneros en
total, pero se calcula que pueden existir aproximadamente 5500
especies en esta región (Di Sabatino et al. 2008, Goldschmidt
2002). La fauna de ácaros acuáticos de México es una de las
mejor conocidas de Latinoamérica con un total de 258 especies
registradas hasta el momento, y considerando que en países como
Nicaragua y Jamaica no se conoce nada (Goldschmidt 2002, G.
Rivas & C. Cramer com. pers.). Sin embargo, el conocimiento
de los ácaros acuáticos de México es heterogéneo, es decir, hay
algunas regiones del país mejor estudiadas que otras. Por ejemplo,
para el Estado de México y los estados de la Costa del Golfo se
tienen numerosos registros de ácaros acuáticos, mientras que para
gran parte del Centro-Norte del país no existen datos, tal es el caso
del estado de Querétaro (G. Rivas & C. Cramer com. pers.).
La biogeografía de México es muy compleja, dado que es
resultado de diferentes factores como ser una zona de transición
entre las regiones biogeográficas Neártica y Neotropical, la gran
diversidad geológica y climática en las diferentes cuencas del
país, así como la ocurrencia de diferentes eventos de dispersión
y vicarianza (Morrone 2005). Esta variedad genera una enorme
riqueza de taxa y un número no determinado de endemismos,
y hace que México sea considerado el segundo en el mundo
Dugesiana
respecto al número de ecosistemas y el cuarto en el número total
de especies descritas, con alrededor de 200 mil, lo que constituye
del 10 a 12% de la biodiversidad mundial (SEMARNAT 2005).
Esta biodiversidad y complejidad incluye también a los ambientes
acuáticos, de lo que se que hasta ahora se conoce solamente una
fracción pequeña.
MATERIAL Y MÉTODOS
Durante el Curso Pre-congreso de ácaros acuáticos, del
Segundo Congreso Latinoamericano de Macroinvertebrados
de Agua Dulce, celebrado en la ciudad de Querétaro en Abril
de 2014, se realizaron recolectas en el Río Arroyo La Barranca
(21°13’17.3’’N, 99°34’58.5’’W), también conocido como Río
Escanela, en la Reserva de la Biósfera Sierra Gorda de Querétaro.
El sitio se encuentra unos quinientos metros arriba de la localidad
de Escanelilla, Municipio de Pinal de Amoles, a 1215 m snm, (Fig.
1). Para la recolecta se siguió la técnica descrita por Goldschmidt
(2007b). Las recolectas se realizaron separando los microhábitats
principales: poza, rápidos, cobertura de musgos en las piedras en
la corriente y la zona higropétrica.
Este sitio está ubicado en la zona limítrofe entre la región
Neártica y la Neotropical (Goldschmidt 2007a); el área puede
considerarse dentro de la zona de transición mexicana y está
rodeada por la Sierra Madre Oriental y la Faja Volcánica
Transmexicana (Morrone 2014). La geología de la zona del río
Escanela se caracteriza por la presencia de caliza, debido a lo
que el sedimento (piedras de diferentes tamaños en los rápidos,
especialmente rocas y hojarasca en la poza, y rocas cubiertas
de musgo en el pequeño afluente muestreado) está saturado por
el depósito de cal. Probablemente dicha colmatación reduce la
diversidad y abundancia de ácaros acuáticos, ya que la presencia
de sedimento accesible y bien oxigenado es esencial para el
desarrollo de los huevos y las ninfas de varias especies (Cicolani
& Di Sabatino 1990, Di Sabatino et al. 2000). No se obtuvieron
los datos fisicoquímicos durante la recolecta, pero dado que en
el mismo sitio de muestreo se realizan recolectas con fines de
biomonitoreo, se obtuvieron datos que pueden ser extrapolados al
momento del muestreo (Cuadro 1). Estos datos fueron tomados
por el grupo de monitoreo participativo formado por personas de la
comunidad, miembros de la Universidad Autónoma de Querétaro y
la Comisión Nacional de Áreas Naturales Protegidas (CONANP).
Aunque existen solamente datos de una medida única, pueden
servir para una caracterización general del sitio.
En la siguiente sección, se presenta la distribución de los
géneros de ácaros acuáticos encontrados en este estudio, tanto para
América Latina en general por país, como por estado para México.
También se incluyen algunos datos ecológicos y comentarios
sobre el estado actual de su conocimiento. Se presenta los géneros
en el orden filogenético segun K.O. Viets (1987).
Cuadro 1. Datos fisicoquímicos del Río Arroyo La Barranca
(conocido como Río Escanela), tomados río arriba de la
localidad de Escanelilla el 12 de mayo 2014.
temperatura conductividad
pH
TDS
salinidad
20.7 °C
8.7
137
0.13
273 µS/cm
oxígeno disuelto
102 %
7.95 mg/l
RESULTADOS
Considerando que el muestreo se realizó en primer lugar con
fines docentes, para explicar la metodología de recolecta y obtener
algunos especímenes para practicar los métodos de montaje
y identificación, la diversidad de ácaros acuáticos encontrada
resultó considerable. En total se recolectaron 112 individuos
pertenecientes a siete familias y diez géneros (Fig. 2; Cuadro 2).
Figura 1. A) Ubicación del sitio de estudio dentro de la subcuenca Río
Santa María Bajo en el municipio de Pinal de Amoles del estado de
Querétaro de Arteaga, México. B) Río Escanela, pocos metros corriente
abajo del sitio de recolecta, 3.IV.2014.
22
Cuadro 2. Lista de géneros por familia y número de ejemplares
por género encontrados en los microhábitats definidos en el sitio
de recolecta.
Microhábitat /
Taxa
Hydrodromidae
Hydrodroma
Poza
Musgo
Sperchontidae
Sperchon
Hygrobatidae
Atractides
Corticacarus
Mideopsidae
Mideopsis
Aturidae
Aturinae
Aturus
Axonopsinae
Woolastookia
Axonopsis
Abundancia Relativa (%)
Zona
higropétrica
2
3
1
Hydryphantidae
Protzia
Torrenticolidae
Torrenticola
Rápidos
31
31
1
8
14
1
4
1
1
10
1
2
1
14.3
40.2
42.9
2.7
Caracterización ecológica y biogeográfica de los géneros
Hydrodroma Koch, 1837
Distribución: cosmopolita, excepto Antártida; seis especies
(más cinco subespecies) registradas en América del Sur (Cook
1980, Fernández et al. 2009, Rosso de Ferradás & Fernández
2005, Viets, K.O. 1987) y cuatro especies en Mesoamérica (Cook
1980, Lundblad 1935, Marshall 1927a, b, Wiles 2005), incluyendo
tres especies en México: H. clavipes (Chiapas, Oaxaca, San
Luis Potosí, Veracruz), H. despiciens (Yucatán), y H. peregrina
(Campeche, Guanajuato, Tabasco) (Cook 1980, Marshall 1936).
Ecología: en general, las especies que presentan sedas
natatorias en las patas se encuentran en hábitats lénticos o en
tramos remansados de hábitats lóticos; las especies sin sedas
natatorias (especialmente de distribución tropical) se encuentran
en zonas de corriente (Di Sabatino et al. 2010).
Comentarios: Las especies neotropicales del género
Hydrodroma requieren una revisión taxonómica a profundidad,
dado que la mayoría se encuentran clasificadas como “H.
despiciens” que, en consecuencia, se considera una especie
cosmopolita (Cook 1980).
Protzia Piersig, 1896
Distribución: predominante en el hemisferio norte
(“laurasiano”) (Smith et al. 2001), una especie Sudamericana
(Ecuador), dos especies de Costa Rica (Goldschmidt & Gerecke
2003), y cinco de América del Norte (Viets, K.O. 1987). Constituye
el primer registro del género para México.
Ecología: hábitats lóticos, las especies neotropicales se
encuentran especialmente en arroyos y ríos montañosos con
corriente fuerte; un individuo fue recolectado en un manantial
(reocreno) (Goldschmidt & Gerecke 2003).
Sperchon Kramer, 1877
Distribución: cosmopolita excepto Australia y Antártida,
predominantemente laurasiano (Smith et al. 2001); hasta ahora se
conocen nueve especies en América Latina, de las cuales seis se
encuentran en México (Cook 1980, Cramer 1988, Otero-Colina
1987); tres de éstas últimas también se distribuyen en otros países
latinoamericanos: S. neotropicus (Coahuila, Oaxaca, Veracruz y
Argentina), S. gledhilli (Guerrero, Estado de México, Oaxaca,
Veracruz y Guatemala), y S. mexicanus (Estado de México
y Honduras). S. glandulosus (Estado de México) tiene una
distribución Holártica y S. oaxacensis y S. pontifex (Oaxaca) hasta
ahora se conocen exclusivamente de México.
Ecología: ambientes lóticos de América del Norte y Europa,
también se ha registrado en manatiales y ambientes lénticos (Di
Sabatino et al. 2010, Smith et al. 2001).
Torrenticola Piersig, 1896
Distribución: cosmopolita excepto Australia y Antártida; con
mayor diversidad y abundancia en los trópicos y las zonas templadas
del norte (el patrón de diversidad conocido hasta el momento en
el Nuevo Mundo, indica un origen septentrional (Goldschmidt
2007b)). Hay 57 especies registradas para América Latina (Cook
1980, Fernández 1991, Fernández et al. 2009, Goldschmidt
2007b, Lundblad 1953, Wiles 2005), de las cuales siete se
encuentran en México, aunque se puede esperar una diversidad
mucho más alta (Cook 1980, Cramer 1988, Otero-Colina 1988):
T. rala (Chiapas, Guerrero, Oaxaca), T. obliquipalpis (Estado de
México), T. keesdavidsi (Estado de México), T. carlbaderi (Estado
de México), T. esbelta (Estado de México), T. kurtvietsi (Estado de
México) y T. gennada (Tabasco). Se han registrado doce especies
de Guatemala (Böttger 1980, 1984, Viets, K.O. 1977a, c), y 42 de
Costa Rica (Cook 1980, Goldschmidt 2007b).
Ecología: hábitats lóticos, con una dominancia muy alta
en arroyos y manantiales de montaña en América Central
(Goldschmidt 2007b).
Atractides Koch, 1837
Distribución: cosmopolita excepto Australia y Antártida;
laurasiano (Smith et al. 2001); 33 especies registradas en América
Latina (Böttger 1980, Cook 1980, Fernández et al. 2009, Lundblad
1930, 1941c, 1953, Orghidan et al. 1977, 1981, Orghidan &
Gruia 1980, 1983, Viets, K.O. 1977a, c, Wiles 2005), 15 de ellas
en México (Cook 1980, Cramer 1988, Otero-Colina 1987): A.
bassolsae (Oaxaca), A. blazonus (Oaxaca y Estado de México),
A. crassitarsis (Guerrero), A. guatemaltecus (Chiapas, Oaxaca,
Guerrero y Estado de México), A. imitatus (Oaxaca), A. mexicanus
(Chiapas y Oaxaca), A. neolongitarsus (Coahuila), A. prasadi
(Chiapas), A. tanutus (Estado de México), A. tolas (Chiapas), A.
toldomus (Coahuila), A. travanus (Chiapas, Oaxaca, Guerrero y
Veracruz), A. tucabus (Chiapas, Moleros y Veracruz), A. wevamus
(Nayarit), y A. zempoalus (Estado de México).
Ecología: hábitats lóticos y lénticos (incluso manantiales , y
ambientes intersticiales) (Smith et al. 2001).
23
Dugesiana
Corticacarus Lundblad, 1936
Distribución: Neotropicos y Australia, con la mayoría de
especies en América del Sur, unas pocas especies llegando hasta
los Estados Unidos, origen en Gondwana (Smith et al. 2001); 60
especies en América Latina (Besch 1964, 1965, Böttger 1980,
Cook 1980, 1988, Dejoux 1992, Fernández et al. 2009, Lundblad
1941a, b, c, 1953, Motas & Tanasachi 1960, Pesiç et al. 2010,
Rosso de Ferradás 1984, 1990, Schwoerbel 1986, Viets, K. 1955,
Viets, K.O. 1967, 1976, 1977a, b, c, Wiles 2005), cinco de ellas
en México (Cook 1980, Cramer 1988, Cramer & Cook 1998):
C. kurtvietsi (Veracruz), C. memobus (Chiapas y Veracruz), C.
mexicanus (Chiapas, Guerrero y Oaxaca), C. novum (Veracruz) y
C. similis (Guerrero).
Ecología: hábitats lóticos (Smith et al. 2001).
Comentarios: por el número de acetábulos, el espécimen que
hemos encontrado seguramente pertenece a una especie nueva del
subgénero Polycorticacarellus Lundblad, 1953. Este subgénero es
exclusivamente Neotropical y está representado por seis especies:
una de Argentina (Cook 1980), una de Colombia (Lundblad 1953),
una de San Vicente y las Granadinas (Antillas) (Viets, K.O. 1976),
y tres de México (Cook 1980).
Mideopsis Neumann, 1880
Distribución: Principialmente holártica aunque llega hasta
América del Sur; laurasiano (Smith et al. 2001); 39 especies en
América Latina (Besseling 1949, Böttger 1980, Camacho et
al. 1997, Cook 1980, 1988, Lundblad 1941a, c, 1944, Marshall
1927a, b, Nordenskiöld 1904, Rosso de Ferradás 1987, Rosso
de Ferradás & Böttger 1997, Viets, K. 1935, 1954, 1959, Viets,
K.O. 1977a, c, Wiles 2005), ocho registradas para México (Cook
1980, Marshall 1936, Otero-Collina 1988): M. beta (Chiapas), M.
canzolla (Guerrero), M. cartesa (Nayarit, Veracruz y Estado de
México), M. gennada (Chiapas), M. magna (Morelos y Puebla),
M. mexicana (Estado de México), M. nobilis (Tabasco y Quintana
Roo) y M. orbicularis (Yucatán).
Ecología: hábitats lóticos, también de manantiales, ambientes
intersticiales y pozas (Smith et al. 2001).
Aturus Kramer, 1875
Distribución: laurasiano (con una amplia distribución
holártica), llegando al sur hasta Chile (Cook 1988), pero con
una diversidad muy reducida, de las diez especies neotropicales
una se encuentra en Chile (Cook 1988), una en Brasil (Lundblad
1941c), otra en Colombia (Lundblad 1953) y Guatemala (Böttger
1980, Viets, K.O. 1977a, c), y las siete restantes en México: todas
descritas del Estado de México (Cook 1980, Cramer 1991, 1992):
A. mexicanus, A. matlazinca, A. catoantoni, A. primitivus, A.
guillecrameri, A. celiahemkesae, A. oxtotilpanensis.
Ecología: hábitats lóticos, manantiales, ambientes intersticiales
y pozas (Smith et al. 2001).
Comentarios: el individuo que hemos encontrado muy probable
pertenece a una especie nueva, similar a A. celiahemkesae Cramer,
1992 pero sedas más largas y en mayor número en la pata IV y el
dorso.
24
Woolastookia Habeeb, 1954
Distribución: laurasiano (América del Norte y México, Europa,
Asia) (Cook 1974, Smith et al. 2001); una especie en Guatemala
(Böttger 1980, Viets, K.O. 1977a) y México (Cook 1980): W.
gretae (Nayarit).
Ecología: hábitats lóticos y lénticos.
Comentario: los individuos que hemos encontrado cf.
pertenecen a la especie W. gretae K.O. Viets, 1978, ya registrada
en México y Guatemala (Cook 1980, Viets, K.O. 1977a).
Axonopsis Piersig, 1893
Distribución: laurasiano (América del Norte y América
Central en los Andes llegando al sur hasta Argentina, Europa,
Asia, Oeste de África) (Cook 1974, 1980, Smith et al. 2001);
17 especies neotropicales en total (Böttger 1980, Camacho et al.
1997, Cook 1980, Lundblad 1953, Orghidan et al. 1977, 1981,
Viets, K.O. 1977a, c), cinco de ellas en México (Cook 1980):
A. cemoba (Veracruz), A. cerucha (Nayarit, San Luis Potosí y
Veracruz), A. columbicola (Chiapas, Nayarit, Oaxaca y Puebla),
A. mesoamericana (Chiapas y Veracruz) y A. trocala (Chiapas y
Nayarit).
Ecología: hábitats lóticos y lénticos
DISCUSIÓN
Encontramos una clara separación de la fauna de los diferentes
microhábitats a pesar de que el esfuerzo de colecta fue mínimo y de
que el material estudiado no es abundante. Algunos géneros (aunque
unos representados solamente por un individuo) se encontraron
exclusivamente en la poza, y precisamente son los géneros
especializados en hábitats lénticos: Hydrodroma, Mideopsis,
Woolastookia y Axonopsis. Por el contrario, recolectamos varios
géneros (representados por un mayor número de individuos)
típicos de hábitats lóticos: Sperchon, Torrenticola, Corticacarus
y Aturus. También es notable, que en los dos microhábitats lóticos
(rápidos con rocas de varios tamaños y cobertura de musgo sobre
rocas grandes) encontramos faunas muy similares (Cuadro 2).
El hábitat más particular muestreado en este estudio fue la zona
higropétrica o la zona de salpicadura, donde encontramos al género
Protzia, que también apareció en las muestras de los rápidos y que
representa un registro nuevo para México.
La fauna de ácaros acuáticos recolectada es una mezcla de
elementos de influencia predominantemente Neártica (representada
por géneros como Protzia, Mideopsis y Woolastookia) y
Neotropical, aunque menos representado (el elemento Neotropical
más característico está dado por Corticacarus, principalmente
con el subgénero Polycorticacarellus). Esto refleja muy bien la
posición biogeográfica del área. Los géneros Axonopsis y Aturus
también muestran una distribución predominante laurasiana,
pero algunas especies llegan hasta América del Sur. Los géneros
Sperchon, el más abundante en este muestreo, y Atractides, tienen
una distribución mundial, pero con afinidad laurasiana. Por otra
parte el género Torrenticola, el segundo más abundante en nuestros
resultados, se distribuye tanto en zonas templadas del norte como
en los trópicos.
Con este primer registro de diez géneros Querétaro ya queda
en una posición delantera en cuanto a la diversidad – a nivel de
géneros – de ácaros acuáticos: segun los datos publicados, de siete
estados se conoce mas géneros: Estado de México (34 genera),
Chiapas (33), Veracruz (28), Oaxaca (27), Guerrero (18), Tabasco
(18), Nayarit (17). Sin embargo de once estados se conce menos:
Yucatan (9 genera), San Luis Potosí (8), Campeche (7), Puebla (7),
Moleros (6), Quintana Roo (5), Guanajuanto (5), Tamaulipas (3),
Coahuila (2), Colima (2), Distrito Federal (2).
AGRADECIMIENTOS
Los autores agradecemos a las organizadores del Segundo
Congreso Latinoamericano de Macroinvertebrados de Agua Dulce,
especialmente al Prof. Raúl Pineda López (Universidad Autónoma
de Querétaro), Ricardo Pérez Munguía (Universidad Michoacana
de San Nicolás de Hidalgo), Perla Edith Alonso (Instituto
Mexicano de Tecnología del Agua), Alonso Ramírez (Universidad
de Puerto Rico) y Monika Springer (Universidad de Costa Rica)
por facilitar la realización del curso de ácaros acuáticos enmarcado
en el Congreso e invitar a Tom Goldschmidt. Agradecemos
también a Claudia Saray Ramos (Maestría en Gestión Integrada
de Cuencas) del Comité Organizador Local por su gran ayuda
en la organización del curso y la excursión al Río Escanela y por
facilitarnos los datos fisicoquímicos. Y damos muchas gracias a la
Dra. Gabriela Castaño-Meneses y Dr. José Luis Navarrete-Heredia
por su gran paciencia y su ayuda en el acabado de esta publicación.
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Recibido: 2 de diciembre 2014
Aceptado: 16 de abril 2015
Figura 2. Ejemplares de algunos de los géneros obtenidos durante la recolecta. A) Protzia sp., vista dorsal; B) Protzia sp., vista ventral; C) Neoaturus sp., vista ventral; D) Sperchon sp., vista dorsal; E) Sperchon sp., vista ventral; F) Axonopsis sp., vista ventral; G)
Woolastookia sp., vista ventral; H) Mideopsis sp., vista dorsal; I) Torrenticola sp., J) Atractides sp., vista dorsal.
27
XVII Simposio
de Zoología
Dugesiana
Dr. Miguel Ángel Morón
19-23 Octubre 2015
CUCBA, Universidad de Guadalajara
28
The ant community and their accompanying arthropods in cacao dry pods: an unexplored diverse habitat
La comunidad de hormigas y sus artrópodos acompañantes en frutos secos de cacao: un hábitat diverso no explorado
Gabriela Castaño-Meneses1*, Cléa S. F. Mariano2,3, Patrícia Rocha4, Tércio Melo4, Brisa Tavares4, Eduardo
Almeida4, Leonny Da Silva3, Thalles Platiny L. Pereira3, Jacques H. C. Delabie3
Ecología de Artrópodos en Ambientes Extremos, Unidad Multidisciplinaria de Docencia e Investigación, Facultad de
Ciencias, UNAM, Campus Juriquilla, Boulevard Juriquilla 3001, 76230, Querétaro, México. E-mail: gabycast99@hotmail.
com*.2Departamentos de Ciências Biológicas e de Ciências Agrárias e Ambientais, Universidade Estadual de Santa Cruz, 45650000 Ilhéus, Bahia, Brasil. E-mail: [email protected]. 3Laboratório de Mirmecologia, Centro de Pesquisas do Cacau,
Convênio UESC/CEPLAC, Caixa Postal 7, 45600-970, Itabuna, Bahia, Brasil. E-mail: [email protected]; thallesplp@
gmail.com; [email protected]. 4Field course “As formigas poneromorfas do Brasil: Comportamento, Ecologia e
Taxonomia”, CEPLAC, Caixa Postal 7, 45600-970, Itabuna, Bahia, Brasil. E-mail: [email protected]; terciosilvamelo@
hotmail.com; [email protected]; [email protected]
1
ABSTRACT
Dry pods of cacao are an important habitat exploit by different ant species to establish their nest, and by their conditions, diverse organisms
associated to them also occupied such nests. We studied the composition of ant assemblage and their accompanying arthropods in fall and hanging cacao
pods from experimental areas in Ilhéus, Bahia, Brazil. A total of 34 dry cacao fruits were reviewed. The hanging fruits were occupied by six species of
ants, with Neoponera villosa as the commonest, while in fallen fruits eight species nested, with Camponotus cingulatus occupying most of the 50% of
them. A total of 42 taxa were founded accompanying the ants in the nest, 37 in the fallen fruits (15 exclusive) and 26 in the hanging (seven exclusive).
Groups as Mollusca, Myriapoda (Diplopoda, Chilopoda and Symphyla) and Opilionida, were found only in the fallen fruits. Some groups of predators,
as Reduviidae and Schizomidae, were found only in nests from hanging fruits. The community composition in both types of fruits was different, more
detritivorous groups were found in the fallen fruits, while in the hanging fruits were found more predators. The complexity of interactions established
between nest suggests the importance of this environment to ecosystem function and conservation diversity in the cacao plantations.
Key words: Ants nests, diversity, interactions, trophic guilds.
RESUMEN
Los frutos de cacao secos o en descomposición constituyen un hábitat explotado por distintas especies de hormigas para establecer sus nidos,
generando un ambiente particular que a su vez es explotado por una diversidad de organismos que se establecen en asociación con tales nidos. Se
estudió la composición de la comunidad de hormigas y artrópodos acompañantes en nidos de cacao en áreas experimentales en Ilhéus, Bahía, Brasil,
comparando tanto frutos caídos como frutos retenidos en la planta. Un total de 34 frutos secos de cacao fueron revisados. Los frutos colgados estuvieron
ocupados por seis especies de hormigas, con Neoponera villosa como la más común, mientras que en los frutos caídos habitaron ocho especies, con
Camponotus cingulatus ocupando más del 50% de ellos. Un total de 42 taxa fueron encontrados acompañando a las hormigas en los nidos, 37 en los
caídos (15 exclusivos) y 26 en los colgados (siete exclusivos). Grupos como Mollusca, Myriapoda (Diplopoda, Chilopoda y Symphyla) y Opilionida,
fueron encontrados sólo en los nidos de frutos caídos. Algunos grupos de depredadores como Reduviidae y Schizomidae, sólo se encontraron en los
nidos de frutos colgados. La composición de la comunidad en ámbos tipos de frutos fue diferente, con más detrítívoros encontrados en los frutos caídos
y más depredadores en los colgados. Las complejas interacciones que se establecen en los nidos en los frutos sugieren la importancia de este ambiente
para el funcionamiento del ecosistema y el mantenimiento de la biodiversidad en los cultivos de cacao.
Palabras clave: Nidos de hormigas, diversidad, interacciones, gremios tróficos.
Cacao culture together with coffee plantations are the most
extended cultures in tropical areas, cover more than 20 million of
ha in the World according with data from 2007 (FAOSTAT 2011).
Due the climatic and environmental conditions needed to growth
of cacao trees, this shaded culture is considered as having a low
impact for the natural environment and is an important ecosystem
for maintaining biodiversity for numerous groups of vertebrates
and invertebrates (Rice and Greenberg 2000, Faria et al. 2006,
Delabie et al. 2007, Moço et al. 2010, Castaño-Meneses et al.
2014).
The cacao farms with shadow management, offer conditions
and resources that can be used for maintaining a great diversity
of organisms, representing a biological corridor favorable to the
species which live in, both the original vegetation and the modified
agroecosystem. The fauna associated to that culture can occupy
different habitats including the canopy of shaded trees, soils, litter
as well the living and dried cacao pods. For many organisms, fruits
represent an ephemeral resource similar to dung or carrion, since
they represent organic matter at different stages of decomposition
associated with a characteristic fauna (Van Klinken and Walter
1996, Lukasik and Johnson 2007). Changes in the composition
of their associated communities have been recognized as
corresponding to a heterotrophic succession (Hanski 1987).
Invertebrates involved into this process in different fruits include
groups withn an especially great diversity, such as Coleoptera,
Hymenoptera and Diptera which dominate (Souza-Silva and
Lopes, 2004), but are also very common arachnids such mites,
spiders and harvestmen (Oliveira et al. 1995, Machado and Pizo
2000), snails and few other organisms (Mason 1970, Van Klinken
and Walter 1996). Nevertheless, there are few studies focused into
Dugesiana
the dried cocoa pods on the tree or on the floor, that can be used
by many organisms for sheltering or nesting, as has been found for
many ant species (Fowler, 1993). Due the nest ants are in general
stable environment diverse organisms are associated to them and
can used these resources. Ants are a very important element in
the ecosystems and in cocoa farms have been well studied by
their ecology, diversity and functional role (Fowler and Delabie
1995, Delabie et al. 2007, Wielgoss et al. 2010). Moreover, the
nests of ants are stable microhabitats in time and space, containing
many resources available to fauna that can live into them, which
included parasites and symbionts with different association
degree, show a great abundance and diversity, including almost
all invertebrate groups as well vertebrates as reptiles (Vaz-Ferreira
et al. 1970, Kistner 1982, Kronauer and Pierce 2011). Mites and
Staphylinoidea beetles are the most frequently recognized groups
inhabiting in ant nest due to their abundance and species richness
(Eickwort 1990, Lapeva-Gjonova 2013).
Thus, nests of ants are an important element in the maintaining
of the global biodiversity and in many cases the interactions
between the groups of associated fauna are poorly known (PérezLachaud and Lachaud 2014).
The cacao pods are affected by different factors and pathogenic
agents that can produce their lost and abortion (Bos et al. 2007),
and that pods can be retained on the tree or well fall to the soil
and drying. These pods are a resource for many species of ants
and are available to them to install their nests, foraging or shelter
(Fowler 1993, Fernandes et al. 2013), as well are a biotope
attractive to many organisms that can establish and explore the
resources available into the nests of ants. Nevertheless, there are
few information about that fauna, their relationships and diversity.
There are important differences in the microenvironment along
the tree height, with high values of humidity and temperature near
of soil, and into the crown, nevertheless in the crow the evaporation
rates are highest (Castellanos et al. 1999, Almeida and Valle 2007,
Parra et al. 2009).
Studies about the vertical distribution of ants and other
arthropods shows important differences in community
composition, with species that can be present along the vertical
gradient, while others are found on the floor or only in the higher
strata on the trunk of cocoa trees. In most of cases, the soil and
litter had the high diversity (Brühl et al. 1998, Basset et al. 2003,
Cutz-Pool et al. 2010).
The southern of Bahia State is the main cacao production
region of Brazil, and the dominant production system is the named
cabruca (Araujo et al. 1998), which is shaded with native trees
and promotes the conservation of many species of the tropical
forest (Delabie et al. 2007, Schroth et al. 2011).
The Cocoa Reserch Center (CEPLAC) in Ilhéus, Bahia, Brazil
possesses experimental areas with shaded plantations. There the
ant fauna has been studied for the last 30 years, and shows a great
diversity and complexity (Delabie et al. 2007). We review fallen
and hanged dried cacao pods in plantation areas of CEPLAC
in order to verify the presence of ant nests as well as their
accompanying fauna, and to infer about the probable relationships
between them, according with the trophic guilds to which belong
30
the recorded groups. We expected that fallen pods were used by a
upper number of ant species for nesting, as well as the cohort of
their accompanying fauna, because the litter fauna is available to
colonized this habitat.
MATERIAL AND METHODS
The CEPLAC experimental areas (14° 45’S – 39° 13’W) are
located in relict fragments of the South American Coastal Atlantic
Forest at Ilhéus, Bahia, Brazil. The climate is characteristic of the
humid tropics, classified as AF by Köppen (1936), with annual
average temperatures ranged between 20° and 25°C and annual
precipitation between 2000 and 2400 mm, soils are mainly sandy
clay and altitude about 60 m asl (Santana et al. 2003).
Two areas were selected into the experimental plots of the
CEPLAC, the named E’ and F’, in order to have a repetition. In
each one, a team of four persons reviewed during two hours dry
pods of cacao, hanging and fall, in order to found nest ants in them.
Pods were carefully open, in order to confirm the presence of ants
nesting in them. The presence of ant queens and brood was used
as evidence of ants nesting. When the ant nesting was confirmed,
pod was put in a plastic bag and carried to laboratory, where was
reviewed on a tray, and the larger specimens were caught with
forceps and preserved in 70% ethanol. Then the nests were put
during 28 h in Berlesse funnels. The obtained fauna was sorted
under stereoscopic microscope.
The abundance and composition (at upper taxonomic levels)
of the accompanying fauna, was recorded in each nest. The effect
of the localization of fruit (hanged or fallen) on the accompanying
fauna abundance was tested by one way ANOVA test, using
STATISTICA software ver. 6.0 (Statsoft 1995).
RESULTS
A total of 34 dry cacao fruits were obtained with nests of ants
in the two areas. Fifteen of them were collected hanging in the
cacao tree and the 19 remaining were collected fallen on the floor.
In most of the pods, a single ant species, between nine species,
has established its nest, as reproductives and brood were located
into the fruits. Nevertheless in some nests second ant species was
nesting or foraging (Table 1). The hanging fruits were occupied
by six species of ants (a single species per pod), with Neoponera
villosa as the commonest, while in fallen fruits eight species
nested, with Camponotus cingulatus occupying most of the 50% of
them (Fig. 1). In the hanged fruits were found an average (±SE) of
25±4.9 individual/nest of accompanying fauna, while in the fallen
fruits the average was 108±3. The ANOVA one way test show a
significant effect of the localization of fruit (hanging or fallen) on
the abundance of accompanying fauna (F1,31= 6.01; p=0.02).
There were found 42 taxa accompanying to the nest, 37 in
the fallen pods (15 exclusive) and 26 in the hanging ones (seven
exclusive). Groups such as Mollusca, Myriapoda (Diplopoda,
Chilopoda and Symphyla) and Opilionida, were found only in the
fallen pods, maybe because these can be colonized also by litter
fauna which depends to the ants and the nest environment. Some
groups of predators, such as Reduviidae and Schizomida, were
found only in nests from hanging fruits.
Figure 1. Composition of species of ants nesting in hanged and fallen dry pods of cacao, Ilhéus, Bahia, Brazil.
DISCUSSION
The composition of arthropod community in both type of
pods were different, more detritivorous groups were found in the
fallen fruits, as expected, while in the hanging fruits were found
predators that were not recorded in the fallen pods, as Schizomida
(Fig. 2).
The studied dried cacao pods show that they are a very
important resource and habitat used for a diversity of organisms,
also when these fruits remain retained hanged to the tree trunk. The
diversity of groups and their trophic guilds, suggest the complexity
of interactions that can be establish into the nests environment.
Most abundant groups were detritivorous as springtails, oribatid
and uropodid mites, nevertheless other groups of predator mites,
mainly mesostigmatid and prostigmatid, were also abundant.
The presence of predator of second level as pseudoscorpions,
staphylinid beetles and centipeds, show that nests or the immediate
environment provided by the decomposing pod offer the necessary
resources to maintain complex interactions and the stability of the
system (Thébault and Loreau 2005).
Fowler (1993) studied the use of the fallen pods of cacao by
ants looking for nesting in Caraguatatuba, São Paulo, Brazil. He
found 17 species, with Gnamptogenys striatula Mayr and Carebara
sp. as dominant, but no information about their accompanying
fauna was provided. We found nine ant species nesting in pods,
plus other eleven companion species nesting or foraging also in
the same nest, for a total of 20 species of ants using dry fruits
for nesting or other activities. In the nest of omnivorous ants
nesting in the soil, as Camponotus, were found more ant species
accompanying, with some species whit specific feeding habits,
such those of Strumigenys genus, with many species specialist
springtail predator (Hölldobler and Wilson 1990). The occurrence
of these ants in the pods is certainly more related with the soil
environment that with the pod conditions.
There are important and significant differences between the
nesting ants assemblage established in fallen or hanged dry pod,
due the conditions into both types of pods are different too, due
the humidity, decomposition process and resources availability.
In fallen pods, the ephemeral nature of this kind of resource is
especially evident, due to the conditions of humidity that accelerate
the decomposition process, promoted the presence of more
detritivorous groups, release some resources that can be exploded
for other groups, increasing also the biodiversity (Wardle 2006).
More ant species occupied the fallen cacao pods than the
hanged ones, and were dominated by omnivorous groups such
as species of Camponotus genus. In other hand, also were found
more ant species in the accompanying fauna from the fallen fruits,
where were recorded 10 species, with Solenopsis sp. and Wasmania
auropunctata as dominant, while in hanged pods five species were
found only, with Monomorium floricola and Pheidole sp. as the
commonest nesting species.
31
Dugesiana
Figure 2. Composition and relative abundance of accompanying fauna at ant nests in hanging and fallen dry pods of cacao,
Ilhéus, Bahia, Brazil.
The accompanying fauna in hanged pods results to be less
diverse than in fallen pods, probably due to the less rich resources
and environment since hanged pods are less accessible and offer
restriction to be colonized by groups with low dispersion or
vertical movements. Comparative studies made in hanged and
fallen fruits in the tree Alibertia edulis (Rubiaceae), have shown
that there is also more diversity of associated fauna in the fallen
fruits than on the tree, because the edaphic fauna is available
to colonizing the fallen fruits (Souza-Silva and Lopes 2004).
Nevertheless, we found a particular fauna, with groups normally
considered as uncommon in such environment, as schizomids, that
are frequently found in tropical soils, but has been recorded also
associated with ant nest (Reddell and Cokendolpher 1995) and in
abandoned arboreal termite nest in cocoa plantations also in Brazil
(Santos et al. 2008).
The ant nest are recognized by supporting a great diversity of
fauna (Kistner 1982, Rettenmeyer et al. 2011). Nevertheless has
been put few attentions on their relationships and the importance
of that environment in global biodiversity and ecosystem function.
A recent study on three nest of arboricolous Neotropical weaver
Camponotus senex show the presence the different groups,
including new species of parasitoids and new records of spiders
associated to ants, and suggest that due to the importance of that
habitat in conservation they would be considered as “hot-points”
of biodiversity (Pérez-Lachaud and Lachaud 2014). The particular
32
conditions of the nests in cacao pods, which can be considered
less stable than nest in other biotopes, due their relative ephemeral
nature, may facilitate the colonization of certain groups of
organisms than can support and use this habitat, and constitute
particular assamblages specialized not only in promoting
decomposition processes and make more efficient the energy
flux in the systems, also positively participate to the biodiversity
conservation in the ecosystem.
ACKNOWLDEGEMENTS
This work was development into the field course “As formigas
poneromorfas do Brasil: Comportamento, Ecologia e Taxonomia”
supported by PRONEX Project PNX11/2009. Programa de Apoyos
para la Superación del Personal Académico, DGAPA, UNAM,
gave support to sabbatical stance to GCM. Juliana Martins and
Roberta Santos helped in the samples process. An anonymous
reviewer gave very useful suggestions to improve the paper.
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Wielgoss, A., T. Tscharntke, D. Buchori, B. Fiala and Y. Clough.
2010. Temperature and a dominant dolichoderine ant species
affect ant diversity in Indonesian cacao plantations. Agriculture,
Ecosystems and Environment, 135 (4): 253-259.
Table 1. Associated fauna to ant nest in dried cacao fruits fallen and hanging in cacao CEPLAC experimental areas, Ilhéus, Bahia, Brazil. Numbers in
brackets indicate the number of nest reviewed.
Species ant
Associated fauna
Fallen
Hanging
Camponotus atriceps
(Smith)
(1)
Acari: Mesostigmata (Uropodidae, Laelapidae,
Ascidae); Cryptostigmata (Galumnidae)
Collembola: Cyphoderidae (Cyphoderus sp.)
Insecta: Psocoptera, Coleoptera (Staphylinidae),
Diptera
(3)
Acari: Mesostigmata (Uropodidae); Cryptostigmata (Oppidae)
Pseudoscorpionida
Insecta: Hemiptera, Dermaptera, Hymenoptera (Brachonidae;
Formicidae: Braychymyrmex sp., Solenopsis sp.); Coleoptera
(Staphylinidae)
Camponotus cingulatus
Mayr
(10)
Acari: Mesostigmata (Uropodidae, Ascidae,
Laelapidae, Undeteminated); Prostigmata
(Cunaxidae, Undeterminated); Cryptostigmata
(Oppidae, Galumnidae, Undeterminated);
Pseudoscorpionida, Opilionidae (Laniatores):
Araneae
Myriapoda: Chilopoda, Diplopoda
Collembola: Brachystomellidae, Isotomidae
(Folsomides sp., Isotomodes sp.), Cyphoderidae
(Cyphoderus sp.)
Insecta: Blattodea, Hemiptera, Dermpatera,
Hymenoptera (Undeterminated; Formicidae:
Crematogaster sp., Monomorium floricola
(Jerdon), Carebara sp., Solenopsis sp.,
Strumigenys sp., Wasmannia auropunctata
(Roger), Pheidole sp.); Diptera, Coleoptera
(Scarabaeidae, Staphylinidae, Undeterminated)
(3)
Acari: Prostigmata, Cryptostigmata (Oppidae, Galumnidae)
Insecta: Psocoptera, Dermpatera, Hymenoptera: Formicidae
(Crematogaster sp., Monomorium floricola, Solenopsis sp.);
Diptera, Coleoptera (Staphylinidae)
Camponotus
novogranadensis Mayr
Camponotus senex
(Smith)
34
(1)
Insecta: Hemiptera (Reduvidae); Hymenoptera: Undetermined;
Formicidae (Pheidole sp., Solenopsis sp.)
(2)
Acari: Mesostigmata (Uropodidae, Laelapidae,
Undeterminated); Prostigmata, Cryptostigmata
Myriapoda: Diplopoda
Collembola: Brachystomellidae, Isotomidae,
Cyphoderidae (Cyphoderus sp.)
Insecta: Dermpatera, Hymenoptera: Formicidae
(Nylanderia sp., Solenopsis sp.); Coleoptera,
Diptera
(2)
Acari: Mesostigmata (Ascidae), Prostigmata (Cunaxidae);
Cryptostigmata (Oppidae, Galumnidae, Undetermined)
Insecta: Psocoptera, Hymenoptera: Undeterminated, Formicidae
(Crematogaster sp.); Coleoptera
Odontomachus
haematodus (L.)
(2)
Acari: Mesostigmata (Laelapidae, Ascidae,
Undeterminated); Cryptostigmata
Myriapoda: Symphyla
Entomobryidae, Cyphoderidae (Cyphoderus sp.)
Insecta: Hemiptera, Dermaptera, Hymenoptera:
Formicidae (Nylanderia sp., Solenopsis sp.,
Strumigenys sp., Pheidole sp.); Diptera
(1)
Acari: Astigmata, Mesostigmata (Laelapidae)
Insecta: Hymenoptera: Formicidae (Pheidole sp.)
Neoponera villosa
(Fabricius)
(1)
Mollusca: Gastropoda
Acari: Mesostigmata (Uropodidae, Ascidae,
Laelapidae, Undeterminated); Prostigmata
(Bdellidae, Cunaxidae, Undeterminated);
Cryptostigmata (Galumnidae, Undeterminated)
Opilionida (Laniatores)
Collembola:Isotomidae, Cyphoderidae
Insecta: Dermaptera, Hymenoptera:
Undeterminted, Formicidae (Pheidole sp.);
Coleoptera (Staphylinidae, Undeterminated)
(5)
Acari: Mesostigmata (Uropodidae, Ascidae); Prostigmata
(Anystidae, Bdellidae); Cryptostigmata Schizomida
Araneae
Pseudoscorpionida
Collembola: Isotomidae, Cyphoderidae
Insecta: Blattodea, Hemiptera, Psocoptera, Hymenoptera:
Undeterminated, Formicidae (Crematogaster sp., Pheidole sp.,
Solenopsis sp.); Coleoptera (Staphylinidae, Undeterminated);
Diptera
Neoponera crenata
(Roger)
(1)
Acari: Mesostigmata
Araneae
Collembola: Brachystomellidae, Isotomidae
(Folsomides sp.); Cyphoderidae
Insecta: Hemiptera, Hymenoptera: Formicidae
(Solenopsis sp., Strumigenys sp.); Coleoptera
Gnamptogenys moelleri
(Forel)
(1)
Acari: Mesostigmata, Prostigmata,
Cryptostigmata
Insecta: Hymenoptera: Formicidae (Pheidole
sp., Solenopsis sp.); Coleoptera (Staphylinidae,
Undeterminated); Diptera
Gnamptogenys sulcata
(Smith)
(1)
Mollusca: Gastropoda
Acari: Mesostigmata (Uropodina);
Cryptostigmata (Galumnidae)
Entomobryidae
Insecta: Hemiptera, Hymenoptera: Formicidae
(Hypoponera sp.); Diptera, Coleoptera
(Staphylinidae, Undeterminated)
35
Dugesiana
Disponible en: http://cezug.org.mx/czug/Ciencia_y_Arte.html
36
Tricorythopsis rondoniensis (Dias, Salles y Fereira) (Insecta: Ephemeroptera: Leptohyphidae): Nuevo
registro de distribución para Colombia y la cuenca del río Orinoco
Tricorythopsis rondoniensis (Dias, Salles and Fereira) (Insecta: Ephemeroptera: Leptohyphidae): New
distributional record for Colombia and the basin of the Orinoco river
María del Carmen Zúñiga1 y Nestor Ned Torres-Zambrano2
Universidad del Valle, Departamento de Biología, Grupo de Investigaciones Entomológicas, Ciudad Universitaria de Meléndez,
Apartado Aéreo 25360, Santiago de Cali. e-mail: [email protected]; 2 Biólogo. M.Sc. Universidad Nacional de Colombia.
Sede de Leticia. e-mail: [email protected].
1
Tricorythopsis es un género de distribución neotropical
establecido por Traver (1958) a partir de imagos, cuyas ninfas
fueron asociadas y descritas por Molineri (1999, 2001). En esta
región es uno de los géneros de Leptohyphidae más diversos y
se encuentra en casi todos los países sudamericanos. Se han
registrado 18 especies, la mayor parte de ellas conocidas de Brasil
(Molineri 1999, 2001, Dias y Salles 2005, Domínguez et al. 2006,
Molineri y Zúñiga 2006, Dias et al. 2008, 2009, Belmont et al.
2011, 2012, Lima et al. 2011). En Colombia el género está citado
únicamente para tierras bajas de la cuenca del río Amazonas y se
conoce una especie a partir de imagos machos (T. ticuna Molineri
y Zúñiga 2006), recolectados en los ríos Amacayacu y Loreto
Yacú, ubicados en el Parque Nacional Natural de Amacayacu y en
Puerto Nariño, respectivamente (departamento del Amazonas).
Tricorythopsis rondoniensis (Dias, Salles y Ferreira) fue descrita
a partir de ninfas recolectadas en cuerpos de agua del noreste
brasilero (Porto Velho-estado de Rondônia) y la especie se
conoce adicionalmente en varias localidades de los estados de
Roraima (Boa Vista y Amajari) y Amazonas (Manaos y Presidente
Figeiredo) (Dias et al. 2009, Belmont et al. 2012). La combinación
de caracteres taxonómicos que permiten la identificación de la
especie se encuentran detallados en Dias et al. (2009) y Belmont
et al. (2012) (Fig. 1).
Material examinado: COLOMBIA. 1 ninfa madura ♂. Meta.
Municipio de Mapiripán. Río Iteviare. Cuenca del río GuaviareOrinoco. N 03° 29ʹ 1.4ʺ, W 71°38ʹ 40.3ʺ. 200 m. Febrero 27-2010.
Col: N. Torres
El ejemplar de T. rondoniensis se encuentra depositado en el
Museo de Entomología de la Universidad del Valle (MUSENUV).
En él se observa la ausencia de la línea débilmente esclerotizada
en la branquia opercular, carácter taxonómico registrado por
Belmont et al. (2012) para esta especie y por Lima et al. (2011)
para T. spongicola, aspecto que podría generar alguna confusión
por la similitud que se presenta entre ninfas de Tricorythopsis con
algunas especies de Tricorythodes.
Este nuevo registro de T. rondoniensis amplía su distribución
para la parte oriental de Colombia en tierras bajas de la cuenca
del río Orinoco (departamento del Meta-Mapiripán) (Fig. 2). La
localidad del registro presenta una temperatura ambiental de 28
°C (promedio anual). Esta corriente tiene predominio de remansos
y pocas zonas de rápidos, ocho a diez metros de ancho del lecho
húmedo y una profundidad máxima inferior a dos metros para la
época del muestreo, que se realizó en período de aguas bajas. El
lecho está conformado de manera predominante por limo, pero
se observaron troncos sumergidos, hojarasca y material vegetal
en descomposición. Presenta corredor de ribera con bosques
secundarios avanzados en buen estado de conservación. La
temperatura del agua en el período de muestreo fue de 27.2°C,
con un pH débilmente ácido (5.7 unidades), niveles bajos de
oxígeno disuelto (4.8 a 4.9 mg/l O2) y contenido mineral soluble,
expresado en términos de residuo total soluble (33.3 a 33.7 mg/l)
y conductividad (56.7 a 60.0 µS/cm).
AGRADECIMIENTOS
A Pluspetrol Colombia Corporation, por facilitar la información.
A Gaia S.A.S., Consultores Ambientales, por el apoyo logístico
en la recolección de muestras. A Carlos Molineri (Instituto de
Biodiversidad Neotropical-Conicet, Tucumán, Argentina) por
confirmar la identificación de la especie y facilitar bibliografía.
A los Laboratorios de Investigaciones Entomológicas de la
Universidad del Valle por la infraestructura para la identificación
taxonómica. A Cristian Salas por el registro fotográfico y a Cristian
Román por la elaboración del mapa. A todos los revisores por sus
oportunas sugerencias para mejorar el manuscrito.
LITERATURA CITADA
Belmont, E.L.L., F.F. Salles y N. Hamada. 2011. Three new
species of Leptohyphidae (Insecta: Ephemeroptera) from
Central Amazon, Brazil. Zootaxa, (3047): 43-53.
Belmont, E.L.L., F.F. Salles y N. Hamada. 2012. Leptohyphidae
(Insecta, Ephemeroptera) do Estado do Amazonas, Brasil:
novos registros, nova combinação, nova espécie e chave
de identificação para estágios ninfais. Revista Brasileira de
Entomologia, 56(3): 289-296.
Dias, L.G. and F.F. Salles. 2005. Three new species of Tricorythopsis
(Ephemeroptera: Leptohyphidae) from southeastern Brazil.
Aquatic Insects, 27(4): 235-241.
Dias, L.G., F.F. Salles and P.F.S. Ferreira. 2008. New species
of Tricorythopsis Traver (Ephemeroptera: Leptohyphidae)
from northern Brazil. Studies on Neotropical Fauna and
Environment, 43(3): 237-241.
Dugesiana
Dias, L.G., P.V. Cruz and P.S.F. Ferreira. 2009. A new species of
Tricorythodes Ulmer (Ephemeroptera: Leptohyphidae) from
Northern Brazil. Annales de Limnologie, 45(2): 127-129.
Domínguez, E., C. Molineri, M.L. Pescador, M. Hubbard and C.
Nieto. 2006. Ephemeroptera of South America. In: Adis, J.R.,
Rueda-Delgado, G.y K.M. Wanzen (Eds.): Aquatic Biodiversity
in Latin America (ABLA). Vol. 2. Pensoft, Sofia-Moscow.
Lima, L. R. C., F.F. Salles and U.S. Pinheiro. 2011. New species
of Leptohyphidae (Ephemeroptera) from northeastern Brazil.
Zootaxa, (3050): 63-68.
Molineri, C. 1999. Revision of the genus Tricorythopsis
(Ephemeroptera: Leptohyphidae) with the description of four
new species. Aquatic Insects, 21(4):285-300.
Molineri, C. 2001. El género Tricorythopsis (Ephemeroptera:
Leptohyphidae): nuevas combinaciones y descripción de
nuevas especies y estadios. Revista de la Sociedad Argentina
de Entomología, 60(1-4):217-238.
Molineri, C. and M.delC. Zúñiga. 2006. New species of
Leptohyphidae (Insecta: Ephemeroptera) from Colombia
with evidence of reproductive time segregation. Studies on
Neotropical Fauna and Environment, 41(2): 139-151.
Traver, J.R. 1958. The subfamily Leptohyphinae (Ephemeroptera:
Tricorythidae). Part I: Annals of the Entomological Society of
America, 51(5): 491-503.
Recibido: 1 de septiembre 2014
Figura 2. Distribución en el Neotrópico de Tricorythopsis
rondoniensis.
Figura 1. Tricorythopsis rondoniensis. Habitus
de la ninfa. Foto: Cristian Salas y Diana Torres.
38
Phyllophaga (s. str.) villardoi, nueva especie del Eje Neovolcánico Transmexicano (Coleoptera: Melolonthidae:
Melolonthinae)
Phyllophaga (s. str.) villardoi, a new species from the Transmexican Volcanic Belt (Coleoptera:
Melolonthidae: Melolonthinae)
Miguel Ángel Morón1 y María Magdalena Ordóñez-Reséndiz2
Red de Biodiversidad y Sistemática, Instituto de Ecología, A. C. Carretera Antigua a Coatepec 351, El Haya, Xalapa, Veracruz
91070, México. [email protected]; 2Facultad de Estudios Superiores Zaragoza, UNAM. Av. Guelatao 66, Ejército de
Oriente, Iztapalapa, México, D. F. 09230, México. [email protected]
1
RESUMEN
Se describe Phyllophaga (s.str.) villardoi n. sp. procedente de los bosques de encino y pino establecidos en Taxco, Guerrero y Temascaltepec,
Estado de México. Se incluyen ilustraciones de los caracteres diagnósticos, habitus dorsal y lateral, así como comentarios sobre sus diferencias con otras
especies mexicanas de Phyllophaga.
Palabras clave: escarabajos de junio, Taxonomía, bosque encino-pino, Guerrero, Estado de México.
ABSTRACT
Phyllophaga (s.str.) villardoi n. sp. is described with specimens collected in oak and pine forests located in Taxco, Guerrero and Temascaltepec,
State of Mexico. Figures of diagnostic characters, dorsal and lateral habitus, and comments about differences of the new species with other Mexican
species of Phyllophaga are included.
Key words: June beetles, Taxonomy, oak-pine forest, Guerrero, State of Mexico.
El Eje Neovolcánico Transmexicano reúne numerosas e
importantes características orográficas que, cuando menos durante
los últimos cinco millones de años, han favorecido los procesos
de diversificación de los escarabajos adaptados a los bosques y
praderas establecidos por arriba de los 1500 m de altitud (Morón
2013). Para algunos grupos de especies el Eje ha representado una
barrera o un filtro, a la vez que otros grupos lo han aprovechado
como un corredor, o han encontrado refugio en alguna de sus
numerosas montañas. Por ello, a pesar de que grandes extensiones
del Eje Neovolcánico han sido transformadas intensamente por
la explotación forestal, la agricultura extensiva, la ganadería y
la urbanización con fines habitacionales o industriales (Luna et
al. 2007), muchas especies de escarabajos con adultos fitófagos
y larvas edafícolas se han adaptado a los agroecosistemas,
parques y jardines o se mantienen en los escasos ambientes
menos perturbados de las cimas o en las numerosas cañadas que
perfilan o atraviesan las mesetas. En tales condiciones prosperan
comunidades de melolontinos aún poco conocidas, que incluyen
especies endémicas, raras o inéditas, como la que a continuación
se describe.
MATERIAL Y MÉTODOS
Los caracteres taxonómicos, términos y criterios empleados
para la descripción son los propuestos por Saylor (1940),
Sanderson (1958) y Morón (1986, 2003a, 2013). Las ilustraciones
se realizaron con el apoyo de un equipo de video-fotografía digital
acoplado a un estereomicroscopio Celestron 44206 empleando
aumentos de 10,5 a 67,5X. Las medidas se obtuvieron con ayuda
de un vernier electrónico y un micrómetro ocular acoplado al
estereomicroscopio. Las fotografías se obtuvieron con un equipo
Nikon D5200 provisto con un lente Micro Nikkor 40 mm.
Los ejemplares estudiados se depositaron en las colecciones
entomológicas del Instituto de Ecología, A.C. Xalapa, Veracruz
(IEXA), Facultad de Estudios Superiores de Zaragoza, UNAM,
ciudad de México (CCFES-Z) y en la colección M. A. Morón
(MXAL) Xalapa, Veracruz.
Phyllophaga (Phyllophaga) villardoi sp. nov.
(Figs. 1-11)
Descripción. Holotipo macho: Longitud total del cuerpo:
13.8 mm. Anchura humeral: 5.9 mm. Relación longitud/anchura
cuerpo: 2.33:1.00. Cabeza, pronoto y patas de color pardo oscuro
rojizo brillante, élitros y abdomen con color pardo rojizo más claro
(Figs. 1-2). Clípeo corto, redondeado, 4 veces más ancho que
largo, borde anterior con un seno amplio moderadamente profundo
y los márgenes poco levantados; el disco clipeal poco excavado
hacia el borde anterior, ligeramente convexo hacia la sutura
frontoclipeal, con escasos puntos someros dispersos y algunas
sedas delgadas erectas. Sutura fronto-clipeal estrecha, casi recta
(Fig. 5). Frente moderadamente convexa, 3.4 veces más ancha que
larga, punteado-rugosa en su mitad anterior, con numerosas sedas
delgadas erectas, y casi lisa y glabra en su mitad posterior. Carina
transversal del vértice difusa. Superficie occipital lisa. Antenas con
diez artejos; los artejos tercero a quinto semicilíndricos, alargados,
con anchura y longitud similares; el sexto más corto que el 5°
con una breve proyección anterior redondeada; el séptimo artejo
con una proyección redondeada más acentuada. Maza antenal tan
larga como los cuatro artejos precedentes (Fig. 5), formada por
tres lamelas cubiertas con sensilas muy finas y sedas erectas cortas
esparcidas. La anchura dorsal de cada ojo es equivalente al 18%
Dugesiana
de la distancia interocular. Canthus ocular corto y estrecho, con
11 sedas erectas. Labro reniforme, poco prominente, ancho, con
el borde anterior redondeado, excavado, con sedas finas erectas
en los bordes. Disco del labio ampliamente cóncavo, brillante,
con sedas finas largas a los lados; el borde anterior claramente
escotado.
Pronoto 2.2 veces más ancho que largo; la relación anchura
máxima de la cabeza-anchura máxima del pronoto es de 0.65:1.00
y la relación distancia interocular-anchura máxima del pronoto
es de 0.50:1.00, disco pronotal glabro, con escasos puntos poco
profundos irregularmente distribuidos, ángulos anteriores obtusos,
poco prominentes; ángulos posteriores obtusos, ampliamente
redondeados; bordes laterales claramente angulados en su porción
central; márgenes laterales estrechos, ligeramente crenulados, con
sedas finas recurvadas, largas (0.9-1.0 mm); el margen anterior
estrecho, regularmente marcado por un reborde, con sedas erectas
largas (0.9-1.0 mm); el margen basal apenas marcado cerca de
ángulos laterales, ausente en la mayor parte de su extensión.
Escutelo más ancho que largo (1.5:1.0) con 24 puntos pequeños
esparcidos. Élitros 2.9 veces más largos que anchos, glabros, con
puntuación poco profunda regularmente distribuida; el reborde de
la epipleura estrecho, se diluye poco hacia el propigidio y presenta
sedas finas, erectas regularmente separadas; callos humerales
prominentes y redondeados, callos apicales amplios, redondeados,
poco prominentes. Alas metatorácicas completamente
desarrolladas. Vestidura del pterosternón larga, abundante, de
color amarillento.
Protibias poco más cortas que el tarso respectivo (1.0:1.1), tienen
tres procesos dentiformes en el borde externo, casi equidistantes,
el distal alargado, el intermedio semitriangular y el proximal corto.
Espolón protibial casi recto, estrecho poco aguzado, mucho más
corto que el segundo protarsómero. En la mitad de la cara externa
de las mesotibias tiene una quilla setífera transversal oblicua
completa y otra quilla setífera más corta en la mitad proximal.
Espolones mesotibiales articulados, el superior casi recto, más
corto y estrecho; el inferior ligeramente recurvado y ensanchado.
Las metatibias tan largas como los tarsos respectivos, tienen una
quilla setífera transversal oblicua en la mitad de la cara externa, y
un tubérculo setífero en la mitad proximal. Espolones metatibiales
articulados, ligeramente curvos, poco ensanchados, con los ápices
redondeados, el espolón superior más largo que el inferior (Fig. 7),
y más largo que el primer metatarsómero. Artejos de cada tarso con
una hilera longitudinal de sedas rígidas espaciadas en sus regiones
ventrales (más notable en los metatarsos) y varias sedas largas
alrededor del ápice; los primeros cuatro protarsómeros tienen
una prominencia poco acentuada en el borde ventroapical con un
agrupamiento de sedas cortas. Todas las uñas tarsales dentadas,
con el dentículo ventral ancho, largo, poco separado del dentículo
apical y de la base unguinal redondeada (Fig. 6).
Prepigidio poco brillante, con puntuación setífera corta y
densa. Placa pigidial poco convexa, brillante, con abundantes
sedas cortas, disco con rugosidades transversales muy definidas
y puntos irregulares densos cerca de la base; los márgenes
laterales estrechos; el margen basal interrumpido en su parte
media; el margen apical poco engrosado y levantado, con 26 sedas
medianas. El tegumento de los extremos laterales de los segmentos
40
abdominales es brillante, con puntos setíferos moderadamente
densos. Los esternitos 3º y 4º con un surco longitudinal medio,
somero y amplio, con escasos puntos setíferos y las suturas
intersegmentales indefinidas al centro; 5º esternito con un declive
acentuado hacia el borde posterior constreñido, parte central
convexa, poco prominente, brillante, con un surco longitudinal
medio poco marcado y escasas sedas delgadas. Placa anal amplia,
excavada, con el disco finamente granuloso, reborde basal
acentuado a los lados, el borde caudal delgado, poco levantado y
con pocas sedas erectas.
Cápsula genital masculina con los parámeros simétricos,
fusionados basalmente, estrechos, poco alargados, ápices
convergentes provistos con proyecciones erectas dirigidas
caudalmente (Figs. 8-10), porción ventral membranosa; el tectum
uniformemente convexo; el edeago muestra un soporte esclerosado
ancho, semitubular, con el ápice en forma de gancho; la porción
expuesta del saco interno es membranosa con microespinas.
Longitud de la cápsula genital desde el ápice de los parámeros al
extremo de la pieza basal: 5,3 mm.
Hembra. Similar al macho, excepto: longitud corporal 14.6
mm, anchura humeral 5.8 mm (Figs. 3-4). Maza antenal un
poco más corta que los cuatro artejos precedentes; espolones
metatibiales poco más anchos con ápices redondeados. Región
preapical de la placa pigidial prominente, brillante, acentuada
por la concavidad del disco pigidial (Figs. 3-4); el disco pigidial
con rugosidades transversales y abundantes sedas erectas. Los
esternitos 2º a 4º convexos con un surco longitudinal medio poco
profundo; placa anal amplia, convexa, reborde distal acentuado y
con algunas sedas delgadas. Placas genitales inferiores ligeramente
asimétricas, glabras, poco convexas, redondeadas con proyecciones
laterodistales; placas genitales superiores no fusionadas entre sí,
poco alargadas, con los bordes apicales redondeados y con algunas
sedas (Fig. 11).
Variación. La longitud corporal varía entre 11.2 y 14.0 mm,
la anchura humeral entre 5.0 y 6.0 mm. La coloración varía entre
pardo oscuro, pardo rojizo y pardo amarillento. La longitud y
profundidad del surco medio de los esternitos es un poco mayor en
los ejemplares del estado de México, los cuales también tienen las
rugosidades transversales del pigidio más acentuadas y con muy
pocas sedas.
Material estudiado. 15 machos, 4 hembras. Holotipo macho:
MÉXICO: Guerrero, Taxco de Alarcón, Parque El Huixteco,
16-VIII-2012, trampa luz, 2280 m, M. Ordóñez. Depositado en
MXAL. Paratipos: mismos datos que el holotipo (7 CCFES-Z, 1
IEXA, 2 MXAL). Mismos datos excepto: telaraña, L. Hernández
(1 IEXA); 17-VIII-2012, Y. Rojas (1 CCFES-Z); Taxco de
Alarcón, Chichila, 2079 m, 12-X-2012, Y. Martínez (1 CCFES-Z).
MÉXICO: Estado de México: Temascaltepec, 7-VIII-1999, 2000
m, G. Nogueira (3 MXAL); 12-VIII-1999, 2120 m (1 MXAL).
Nanchititla, VII-1993, S. Pokorny (1 IEXA).
Localidad típica. Parque El Huixteco, municipio de Taxco de
Alarcón, estado de Guerrero, México (18º35’15” N, 99º36’48” O).
Datos biológicos. Los ejemplares estudiados fueron atraídos
por trampas con luz fluorescente blanca o de vapor de mercurio
durante julio (1), agosto (8) y octubre (1) en bosques de encino
y pino ubicados entre los 2000 y 2280 m de altitud. Phyllophaga
Phyllophaga (s. str.) villardoi, nueva especie del Eje Neovolcánico Transmexicano (Coleoptera: Melolonthidae: Melolonthinae)
vallendensis Morón y P. reyescastilloi Morón se han capturado
simultáneamente con P. villardoi.
Etimología. Como un respetuoso recuerdo, con un anagrama
de su apellido y nombre, se dedica esta especie al finado doctor
Bernardo Villa Ramírez, guerrerense, profesor e investigador
de la Universidad Nacional Autónoma de México, reconocido
mastozoólogo, especialista en Chiroptera, promotor de la
conservación de los recursos naturales en México, editor de
publicaciones científicas nacionales y maestro de numerosas
generaciones de biólogos.
Comentarios. La mayor parte de los caracteres de esta
especie corresponden con los del grupo “blanchardi”, complejo
“pubicauda” (sensu Morón 1986, 2003b), aunque los accesorios
del edeago son muy sencillos y las proyecciones apicales de
los parámeros son cortas y redondeadas. La corta longitud,
proporciones y orientación de las proyecciones apicales de los
parámeros la distinguen de las especies asignadas al complejo
“pubicauda”, y solo P. manantleca (Morón et al. 2001) tiene tales
proyecciones con longitud parecida, aunque el soporte esclerosado
del edeago de dicha especie es muy robusto y muestra ornamentos
esclerosados complicados. Los caracteres genitales, el surco mesial
de los esternitos, la rugosidad del pigidio y la escasez de vestidura
setifera dorsal pueden completar la diagnosis de P. villardoi. Pero
aún se requiere completar el estudio del grupo “blanchardi” antes
de disponer de una clave para la identificación de las numerosas
especies que reúne.
AGRADECIMIENTOS
Guillermo Nogueira (Universidad Autónoma de Guadalajara)
donó las muestras del estado de México descritas en esta
publicación. Roberto Arce Pérez y César Vicente Rojas Gómez
(INECOL, Xalapa) apoyaron varios aspectos técnicos requeridos
por este trabajo que representa una contribución a la línea de
investigación sobre Sistemática, biología e importancia de los
Coleópteros Lamelicornios de América Latina, apoyada por el
INECOL (cuenta 2003010011).
LITERATURA CITADA
Luna, I., J. J. Morrone y D. Espinosa (eds.) 2007. Biodiversidad
de la Faja Volcánica Transmexicana. Universidad Nacional
Autónoma de México. México, D. F.
Morón, M. A. 1986. El género Phyllophaga en México.
Morfología, distribución y sistemática supraespecífica
(Insecta: Coleoptera). Instituto de Ecología, A. C. México.
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Recibido: 7 de abril 2015
Aceptado: 5 de mayo 2015
41
Dugesiana
Figuras 1-11. Phyllophaga villardoi, macho: 1) aspecto dorsal, 2) aspecto lateral. Hembra: 3) aspecto lateral, 4) aspecto dorsal. 5) Cabeza
y pronoto. 6) Uña protarsal externa. 7) Aspecto distal del ápice de la metatibia. 8) Aspecto distal de los parámeros. 9) Aspecto dorsal de
los parámeros y el edeago extendido. 10) Aspecto lateral de la cápsula genital. 11) Placas genitales de la hembra, vista ventral. Líneas de
escala: Figs. 1-4 = 2 mm; fig. 6 = 0.5 mm; figs. 5, 7-11 = 1 mm.
42
Revision of Moorella Cameron, 1913 (Hymenoptera: Encyrtidae)
Revisión de Moorella Cameron, 1913 (Hymenoptera: Encyrtidae)
Serguei Vladimirovich Triapitsyn1 and Vladimir Alexandrovich Trjapitzin2
Entomology Research Museum, Department of Entomology, University of California, Riverside, California, 92521, USA. 2Do
vostrebovania, Post Office 129344 (ulitsa Letchika Babushkina, 7), Moscow, Russia.
1
ABSTRACT
A diagnosis of the New World encyrtid wasp genus Moorella Cameron, 1913, a key to females of its six species, their synopsis, and descriptions
and illustrations of M. alini Trjapitzin and Triapitsyn sp. n. (Brazil), M. irwini Triapitsyn and Trjapitzin sp. n. (Brazil), and M. zuparkoi Triapitsyn and
Trjapitzin sp. n. (Arizona, USA), are given. A new combination, Moorella latipes (Girault, 1913), comb. n., is established (from Homalotylus Mayr,
1876, originally described from Paraguay).
Key words: Hymenoptera, Encyrtidae, Moorella, taxonomy, key, parasitoid, Chrysopidae.
RESUMEN
Se elaboró un diagnóstico del género de las avispas Encyrtidae Moorella Cameron, 1913 del Nuevo Mundo, una clave de las hembras de sus seis
especies, su sinopsis y las descripciones e ilustraciones de M. alini Trjapitzin y Triapitsyn sp. n. (Brasil), M. irwini Triapitsyn y Trjapitzin sp. n. (Brasil)
y M. zuparkoi Triapitsyn y Trjapitzin sp. n. (Arizona, EE.UU.). Se establece una combinación nueva, Moorella latipes (Girault, 1913), comb. n. (de
Homalotylus Mayr, 1876, descrita originalmente de Paraguay).
Palabras clave: Hymenoptera, Encyrtidae, Moorella, taxonomía, clave, parasitoide, Chrysopidae.
The little known New World (mostly Neotropical) encyrtid
(Hymenoptera: Encyrtidae) wasp genus Moorella Cameron, 1913
has never been revised taxonomically. Its species are very rare in
the scientific collections; reviewing Moorella has been therefore
a challenge. Except for M. compressiventris (Timberlake, 1925),
known from several specimens and which was nicely described
and illustrated by Timberlake (1925), the remaining species, both
described and undescribed ones, are represented exclusively by
singletons. Moreover, the holotypes of M. fulviceps Cameron,
1913 (the type species of the genus) and M. latipes (Girault, 1913),
comb. n. (from Homalotylus Mayr, 1876) are incomplete, lacking
some body parts which are critical for their recognition, and their
original descriptions are very poor, lack any illustrations, and
contain obvious mistakes regarding the number of female antennal
segments.
This contribution was prompted by the discovery of a female
specimen of an undescribed species of Moorella from Brazil in the
collection of the Zoological Museum of Moscow State University,
Russia [ZMUM]. Other specimens examined are deposited in the
following collections: The Natural History Museum, London,
England, UK [BMNH], The Bernice Pauahi Bishop Museum,
Honolulu, Hawaii, USA [BPBM], California Academy of
Sciences, San Francisco, California, USA [CAS], Essig Museum
of Entomology, University of California, Berkeley, California,
USA [EMEC], Museo de La Plata, La Plata, Buenos Aires,
Argentina [MLPA], Entomology Research Museum, University
of California, Riverside, California, USA [UCRC], and Museum
für Naturkunde, Leibniz-Institut für Evolutionsforschung, Berlin,
Germany [ZMHB].
Terms used for morphological features are those of Gibson
(1997). Abbreviations used in the text are: F = an antennal
funicular segment; mps = multiporous plate sensillum or sensilla
on the antennal flagellar segments (= longitudinal sensillum or
sensilla or sensory ridge(s) of authors).
Noyes (1980) mentioned a probably undetermined Moorella
sp. from Panama but that specimen could not be located during the
first author’s visit to the BMNH in August 2014.
TAXONOMY
Genus Moorella Cameron, 1913
(Figs 1-18)
Moorella Cameron 1913: 124-125. Type species: Moorella
fulviceps Cameron, 1913, by monotypy.
Chrysopophilus Timberlake 1925: 178-179. Type species:
Chrysopophilus compressiventris Timberlake, 1925, by
original designation. Synonymized under Moorella by Noyes
1980: 213.
Moorella Cameron: Heqvist 1961: 109 (not a Cleonyminae but
an “Eupelmidae near Metapelma Westw.[ood]”); Noyes 1980:
213 (distribution, host association, comments).
Diagnosis. FEMALE. Body rather slender, length 1.5-2.2 mm.
Head hemispherical or convex lentiform (Figs 1, 7, 9). Occipital
margin sharp. Frontovertex broad. Ocelli in an equilateral or
obtuse triangle. Scrobes either absent or short, not meeting above.
Antenna inserted near mouth margin; scape very long, linear
(Figs 3, 14, 17); pedicel considerably longer than wide; funicle
6-segmented, with F1 either small, transverse and notably shorter
than F2, or more or less cylindrical (at least slightly longer than
wide) and a little longer than F2; clava with a strong oblique dorsal
truncation, either entire (Fig. 3) or apparently (that, however,
needs confirmation) 3-segmented in M. alini sp. n. and also in
M. latipes, as specified for the latter by Girault (1913) who slidemounted the appendages of its holotype. Mandible 3-dentate, with
one tooth blunt in M. compressiventris (Fig. 2). Palpal formula
Dugesiana
3-3 in M. compressiventris (Timberlake 1925). Mesoscutum either
with notaular lines complete but often rather evanescent, meeting
near posterior margin of mesoscutum, or not at all evident. Axillae
large, more or less broadly meeting. Wings not abbreviated. Fore
wing long and narrow, with infuscate area(s) (always with a central
oval infuscate spot or band) and a hyaline pattern (Figs 4, 10, 15,
18); marginal vein from only a little longer than wide to about 5x
as long as wide; stigmal vein almost straight, oblique, enlarged
apically; linea calva either interrupted posteriorly by several setae
or not interrupted. Metatibia laminately expanded (distinctly
flattened) (Figs 1, 6, 7, 9, 13, 16). Tarsi 5-segmented. Gaster short,
strongly compressed laterally (Fig. 7). Ovipositor sheaths usually
not exserted (but ovipositor markedly exserted in M. irwini sp. n.).
MALE. Unknown.
Distribution. Neotropical region: confirmed records from
Brazil, Guyana, Panama, and Paraguay, and also southern Nearctic
(a new record for the region): USA (Arizona).
Host associations. Moorella compressiventris was reared
in Panama from a cocoon of a Chrysopa sp. (Neuroptera:
Chrysopidae) (Timberlake 1925). We believe it is probably a
primary endoparasitoid, according to the systematic position of
the genus.
Systematic position. Cameron (1913) hesitated concerning
the systematic position of Moorella and tentatively attributed it to
the family Cleonymidae, now treated as subfamily Cleonyminae
of Pteromalidae (Hymenoptera: Chalcidoidea). Timberlake (1925)
wrote that his genus Chrysopophilus (now a synonym of Moorella)
is closely related to the encyrtid genus Isodromus Howard,
1887 and noted that it differs from the latter by the head being
hemispherically convex, the metatibia laminately expanded, and
the gaster small and very strongly compressed laterally. Species of
Isodromus are also parasitoids of Chrysopidae. Trjapitzin (1973)
placed Moorella (as Chrysopophilus) in the tribe Homalotylini of
the subfamily Encyrtinae; Noyes (1980) was of the same opinion.
We consider Moorella to be rather closer to Homalotylus
than to Isodromus, based on several common features but
primarily on the complete notaular lines on the mesoscutum
(when evident), from which it differs mainly by two more or less
reliable morphological characters of yet questionable generic
value: the head being characteristically hemispherically convex
and the gaster being very short, strongly compressed laterally.
All species of Moorella have a strongly flattened (laminately
expanded) metatibia, but as we know from other encyrtid genera
with a similar feature, such as Neocladia Perkins, 1906, the degree
of flatness may not be always considered a good generic-level
character (Trjapitzin and Triapitsyn 2010), although it is indeed
very useful for the recognition of Moorella species. Indeed, in
Homalotylus shuvakhinae Trjapitzin and Triapitsyn, 2004 from
Mexico (Trjapitzin and Triapitsyn 2004), the metatibia is rather
wide yet not as flattened and laminately expanded as in Moorella.
However, at this point we would prefer to abstain from making
any nomenclatural decisions about a possible congeneric status
for Moorella and Homalotylus, of which the former could
very well be just a mere derived species group, at least until a
rigorous phylogenetic study of the Homalotylini and supporting
molecular data become available. For the time being at least,
44
after all, Moorella is easily recognizable and thus is better to be
considered a valid genus. Because female antennae (which are of
diagnostic importance in Moorella) of the two out of three earlier
described taxa are lost, and their original descriptions are poor and
contain mistakes (Cameron 1913; Girault 1913), color of body and
appendages is very useful for separation of species in this genus.
Key to species of Moorella (females)
1 General body color black (Fig. 1); fore wing with marginal
vein long, about 5x as long as wide. [Body length 2.2 mm]
………....................... M. alini Trjapitzin and Triapitsyn, sp. n.
– General body color not black; fore wing with marginal vein
short, at most 3x as long as wide …………………………. 2
2(1) General body color very dark metallic purple, mesoscutum
and gaster with a bluish luster. [Body length 1.5 mm]
…………………...……... M. latipes (Girault, 1913), comb. n.
– General body color not as above ………………………...… 3
– 3 (2) Metabasitarsus almost entirely dark brown (except
whitish apically, Figs 6-9) ………......................................… 4
– Metabasitarsus almost entirely white (except brownish basally,
Figs 13, 16) …........................................................………… 5
4(3) Head yellowish-brown; fore wing (Fig. 10) 2.75x as long
as wide. [Body length 1.5 mm] .. M. fulviceps Cameron, 1913
– Head greyish-brownish (in the paratype) or brownish (Fig. 7);
fore wing (Fig. 4) 3.05x as long as wide. [Body length 2.032.06 mm] …….. M. compressiventris (Timberlake, 1925)
5(3) Head orange, base of gaster whitish-yellowish (Fig. 16).
[Body length 1.98 mm] .............................................................
............................ M. zuparkoi Triapitsyn and Trjapitzin, sp. n.
– Head mostly brown with lower part of frontovertex light
brown, base of gaster brown (Fig. 13). [Body length 1.82 mm]
…………................. M. irwini Triapitsyn and Trjapitzin, sp. n.
Alphabetical synopsis of the species
Moorella alini Trjapitzin and Triapitsyn, sp. n.
(Fig. 1)
Type material. Holotype female [ZMUM], on point (labeled
in Russian): BRAZIL, São Paulo, Parelcheiros, 7.ii.1977, V. Alin.
Description. FEMALE (Fig. 1). Body length 2.2 mm. Head (in
lateral view) convex, lentiform, 1.8x as high as long and 1.4x as
wide as high. Occipital margin slightly convex, posterior margin
of eye reaching or almost reaching it. Frontovertex gradually
narrowing anteriorly, about 0.4x maximum head width at the
level of anterior ocellus. Ocelli small, forming an obtuse triangle;
distance between posterior ocelli about 1.5x more than distance
from posterior to anterior ocelli; distance from posterior ocellus to
eye margin 1.5x and to occipital margin 4x more than diameter of
an ocellus. Scrobes present but very short, not meeting above, their
inner margin almost parallel. Interantennal prominence almost flat
in its upper part, but moderately convex in its lower part, reaching
mouth margin. Toruli immediately under the level of lower eye
margin and rather close to mouth margin; distance between toruli
more than distance from them to eye margin (11:7) and than that to
mouth margin (11:4). Gena with sharp margin. Greatest diameter
of eye 2.3x more than malar space length. Subocular suture
absent. Width of oral orifice about 0.5x head width; mouth margin
concave. Scape about 8x as long as wide and approximately 2.7x
longer than pedicel, the latter 3x as long as wide at apex and 4x
longer than a small, transverse F1; F2 about 2x as long as F1 and
1.5x as long as wide; F3 a little shorter (5:6) and wider than F2;
F4 quadrate, as long as F3; F5 slightly longer than F4 and its own
width; F6 slightly transverse and somewhat shorter than F5; clava
apparently 3-segmented (it is difficult to be sure without having
an antenna cleared and slide-mounted), as long as 3 preceding
funicular segments combined, truncation of clava as long as 2/3
of clava length and 3x longer than its ventral side. Pronotum a
little narrower than head (4:5), transverse, about 4x as wide as
long, with a concave posterior margin. Mesoscutum a little wider
than long (4:3) and 3x as long as dorsal part of pronotum. Axilla
large, with convex posterior margin. Tegula large, its length only
somewhat less than that of mesoscutum. Scutellum convex, a little
longer than wide. Mesopleuron approximately 2x as long as high.
Metapleura as two rather large, separated triangular sclerites. Fore
wing long and narrow, 3.4x as long as wide, strongly surpassing
apex of gaster; costal cell about 10x as long as wide, with slightly
convex anterior margin; submarginal vein thin, mostly straight
but slightly curved and broadened in its apical third on infuscate
part of the wing, extending to about half wing length; marginal
vein about 5x as long as wide and longer than stigmal vein (3:2),
the latter thin, straight, with a broadened apex and an uncus; the
angle between stigmal vein and anterior margin of wing about 30°;
postmarginal vein not longer than stigmal vein. Metanotum as two
divided large sclerites, these and sides of propodeum separate
mesopleura from the base of gaster. Mesobasitarsus very long, as
long as all other mesotarsomeres combined; mesotibial spur only
a little shorter. Metatibia about 5x as long as its greatest width
at apex; metatarsus very long, as long as 2/3 of metatibia length;
metabasitarsus broad and long, 2.7x as long as wide. Propodeum
inclined posteriorly in the middle, its central part separated from
lateral parts by distinct submedian sulci. Gaster about 2x as short
as mesosoma; first gastral (=third abdominal) tergite about 4/9
of entire length of gaster; apical part of gaster, beyond the first
tergite, conical (in dorsal view), with straight or almost straight
lateral margins converging posteriorly under a somewhat less than
90°angle; apex of ninth syntergite transversally truncate, slightly
concave; distance from pygostyles to apex of gaster about half of
its length. Hypopygium (=seventh gastral sternite) not extending
to apex of gaster.
Body black, including antennae, palpi, and legs, but 2/5 of
profemur apically, protibia and protarsus more or less brownish;
apices of mesotibia, mesotibial spur and mesotarsus blackish
brown; apical segment of pro- and mesotarsi dark. Mesoscutum
and scutellum with a greenish blue or bluish-green luster. Basal
3/8 of fore wing hyaline, followed by broad transverse fuscous
band occupying about 1/3 of wing length and extending to its
posterior margin; infuscate apical part of wing occupies about
1/4 wing length and separated from the fuscous central part by a
transverse hyaline band (approximately 1/8 length of wing).
Frontovertex, axillae, tegulae, and triangular sclerites of
metanotum with minute cellular sculpture; mesopleura with
somewhat larger sculpture cells; sculpture of mesoscutum and
scutellum with larger cells.
Dorsum of mesosoma with sparse black hairs. Linea calva on
fore wing disc narrow, about 10x as long as wide in the middle,
its margins without filum spinosum and linea bifida, as defined
by Hoffer (1970) (also see Trjapitzin 1989; Trjapitzin and Ruíz
Cancino 2000; Trjapitzin et al. 2008); linea calva closed posteriorly
only by 2 or 3 setae; fuscous or infuscate areas of fore wing disc
with black setae. Metacoxa with rather long white hairs. Sides of
pronotum with dense silvery pubescence.
MALE. Unknown.
Diagnosis. Besides the distinctive body color, M. alini has a
very short, transverse F1 of the female antenna. It differs from M.
latipes, which also may have this feature (that, however, needs to
be confirmed), in having a much longer marginal vein of the fore
wing, as indicated in the key.
Etymology. The new species is named after its collector, an
amateur expatriate Russian entomologist Vasiliy Nikolayevich
Alin, who donated to ZMUM many interesting insect specimens
he had collected in Brazil.
Host(s). Unknown.
Moorella compressiventris (Timberlake, 1925)
(Figs 2-7)
Chrysopophilus compressiventris Timberlake 1925: 179-180, Plate
IX. Holotype female [BPBM] (not examined). Type locality:
an unknown locality in the former Canal Zone, Panama.
Moorella compressiventris (Timberlake): Noyes 1980: 213.
Type material examined. Paratype female [UCRC], on point
labeled (in P.H. Timberlake’s handwriting): 1. “Ex chrysopid
cocoon”; 2. “Canal Zone Panama”; 3. “Fullaway Coll. Mar.
1924”; 4. [yellow, printed] “Paratype”; 5. “Chrysopophilus
compressiventris Timb. Paratype”. Mouthparts with a mandible
dissected (Fig. 2), an antenna (Fig. 3), a fore wing (Fig. 4), a hind
wing (Fig. 5), and a hind leg (Fig. 6) from this paratype specimen
are mounted under separate coverslip fragments on two slides
[UCRC], labeled: 1. “Chrysopophilus compressiventris Timb. ♀
antenna, wings [on one slide or “♀ mouthparts and hind leg.” on the
other slide], Ex Chrysopa cocoon Canal Zone, Panama Mar. 1924
Fullaway, Coll.”; 2. “Moorella compressiventris (Timberlake)
Det. S.V. Triapitsyn Oct. 1998 from PARATYPE ♀”.
Material examined. BRAZIL, Minas Gerais, Lavras,
3.iv.1974, J.C. Souza [2 females, MLPA].
Distribution. Brazil (De Santis 1989) and Panama (Timberlake
1925).
Host. Reared in Panama by D.T. Fullaway from a cocoon of
Chrysopa sp. (Neuroptera: Chrysopidae) (Timberlake 1925).
Comment. The specimens from Brazil, of which one female is
illustrated (Fig. 7), were undoubtedly correctly identified as such
by L. De Santis.
According to the original description, the holotype of
Chrysopophilus compressiventris had been deposited in the
collection of the Hawaiian Sugar Planters’ Experiment Station
(Timberlake 1925) but currently it is in the BPBM, databased there
under BPBM-entTyp5721.
45
Dugesiana
Moorella fulviceps Cameron, 1913
(Figs 8-10)
Moorella fulviceps Cameron 1913: 125. Type locality: an
unspecified locality in Guyana.
Moorella fulviceps Cameron: Noyes 1980: 131 (illustration of
metatibia and metatarsus), 213 (list).
Type material examined. Holotype female [BMNH] on point
labeled: 1. [red circle] “Type”, 2. “P. Cameron Coll B. M. 1914110”, 3. [on the bottom of label] “3291”; 4. “Moorella fulviceps
Cam. Type on [?Gicicmaco – illegible]”, 5. “B. M. TYPE Hym.
5.1,119”. The holotype (Figs 8, 9) is incomplete: lacking are
flagellum of one antenna and flagellum plus pedicel of the other
antenna, all the wings [except for one fore wing (Fig. 10) that
is glued separately on the same point], and some legs and leg
segments.
Distribution. Guyana (Cameron 1913). The record of this
species from Minas Gerais, Brazil, by De Santis (1983) is incorrect
(De Santis 1989).
Host(s). Unknown.
Comments. The head and pronotum are yellowish-brown, rest
of the body is brown except for the base of gaster, which is whitishyellowish. The scape and pedicel are yellowish. The metafemur
and metatibia are dark brown; the metabasitarsus is almost entirely
dark brown (except whitish apically), other metatarsomeres are
whitish except the apical one. The occipital margin is very sharp.
The fore wing of M. fulviceps (Fig. 10) has a filum spinosum,
apparently made up of around 5 pegs. It is really difficult to be
sure of the number, or even if there is more than one row. The
hypopygium extends about to the apex of the gaster. It is difficult
though to know if it extends exactly to the apex or not quite or
just past it because of the distortion of the gaster – there is quite
a (vertical) distance between the apex of the hypopygium and the
apex of the last tergite (John S. Noyes, personal communication).
Cameron (1913) incorrectly indicated in the generic diagnosis that
the female antenna of Moorella is 13-segmented. Unfortunately, no
other details about the antenna of the holotype of M. fulviceps were
provided in the original description, and that has made recognition
of this species and its inclusion in the key quite challenging.
Moorella irwini Triapitsyn and Trjapitzin, sp. n.
(Figs 13-15)
Type material. Holotype female [CAS], on point labeled: 1.
“BRAZIL, São Paulo, Estacão Biologica de Boracéia, 850 meters,
II-27-1967, M.E. Irwin”; 2. “Moorella Det. R.L. Zuparko 1995”;
3. [database label] “CASENT 2212475”. An antenna (Fig. 14) and
a pair of wings (Fig. 15) from the holotype were detached and
mounted at UCRC on a slide in Canada balsam (under different
coverslips) and labeled with the same data. The type locality
(in Salesópolis Municipality) is Estação Biológica de Boracéia,
administrated by Museu de Zoologia of Universidade de São
Paulo.
Description. FEMALE (Fig. 13). Body length 1.82 mm. Head
(in lateral view) hemispherical, about 1.8x as high as long and
about 1.6x as high as wide. Occipital margin sharp, posterior
margin of eye almost reaching it. Frontovertex with almost
parallel margins, 0.36x maximum head width at the level of
46
anterior ocellus. Ocelli small, forming a slightly obtuse triangle;
distance between posterior ocelli about 1.5x more than distance
from posterior to anterior ocelli; distance from posterior ocellus
to eye margin at most 0.5x and to occipital margin almost 4x
more than diameter of an ocellus. Scrobes present but very short,
not meeting above. Interantennal prominence small, reaching
mouth margin. Toruli below the level of lower eye margin and
very close to mouth margin; distance between toruli slightly more
than distance from them to eye margin. Gena with sharp margin.
Subocular suture absent. Width of oral orifice a little less than 0.5x
head width; mouth margin concave. Antenna (Fig. 14) with radicle
2.5x as long as wide, rest of scape 7.1x as long as wide and 3.1x
longer than pedicel, the latter 2.4x as long as wide at apex and 1.9x
longer than a cylindrical (1.6x as long as wide) F1; F2 about as
long as F3, both subquadrate and shorter than F1; F4-F6 slightly
wider than long (F5 slightly longer than F3 or F4) and a little wider
than preceding segments; F6 transverse and shorter than F5; clava
entire, 2.5x as long as wide, as long as combined length of F3F6 plus half length of F2, truncation as long as 0.57x of clava
length; very short mps on F4 (1), F5 (4), F6 (4) and clava (at least
14). Pronotum about as wide as head, transverse, about 2.8x as
wide as long, with a concave posterior margin. Mesoscutum a little
wider than long, with notaular lines complete, meeting near but at
some distance from posterior margin of mesoscutum, somewhat
evanescent yet clearly visible at high magnification. Axilla large,
with a slightly convex posterior margin. Tegula large but its length
notably less than that of mesoscutum. Scutellum convex, a little
longer than wide. Mesopleuron approximately 2x as long as high.
Fore wing (Fig. 15) 1.44 mm long and narrow, about 2.9x as long
as wide; costal cell almost 10x as long as wide, with a slightly
convex anterior margin; submarginal vein thin, mostly straight but
slightly curved and broadened in its apical third on infuscate part
of the wing, extending to about 0.4x wing length; marginal vein
about 3x as long as wide and shorter than stigmal vein (5:11), the
latter thin, almost straight, with a broadened apex and an uncus;
postmarginal vein a little shorter than stigmal vein; marginal setae
short, the longest seta about 0.09x greatest wing width. Hind wing
(Fig. 15) 4.2x as long as wide, the longest seta about 0.27x greatest
wing width. Metanotum as two divided sclerites. Mesobasitarsus
very long, about as long as all other mesotarsomeres combined;
mesotibial spur only a little longer. Metatibia 4.2x as long as
its greatest width; metatarsus a little more than 1/2 of metatibia
length; metabasitarsus rather small and narrow, about 4x as long
as wide. Propodeum with distinct submedian sulci. Gaster about
1.7x as short as mesosoma. Hypopygium extending to about apex
of gaster. Ovipositor notably exserted beyond apex of gaster (by
about the length of mesotibial spur).
Body and appendages mostly brown except lower part
of frontovertex light brown, protibia and mesotibia apically,
mesotibial spur, and pro- and mesotarsi light brown, metacoxa
white except brownish apically, metafemur and metatibia dark
brown, metabasitarsus mostly white except basally, and remainder
of metatarsomeres white except the apical segment. Fore wing
(Fig. 15) almost entirely infuscate, with more or less hyaline (yet
at least slightly infumate) areas and a distinct, broad transverse
fuscous band. Hind wing disc mostly hyaline except its apex
(beyond venation) with a faint infumation.
Frontovertex with punctate-reticulate sculpture, scape with
a faint reticulate sculpture, metanotum and mesopleuron with
minute punctate sculpture.
Dorsum of mesosoma with sparse fair hairs. Linea calva on
fore wing disc broad, not interrupted posteriorly; filum spinosum
present and consisting of 11 pegs arranged in 2 rows; fuscous
or infuscate areas of fore wing disc with black setae. Metacoxa
with dense white hairs. Sides of propodeum with dense silvery
pubescence.
MALE. Unknown.
Diagnosis. Moorella irwini is somewhat similar to both M.
compressiventris and M. zuparkoi sp. n. from which it differs in
having a brown general body color (Fig. 13).
Etymology. The new species is named after its collector,
Michael E. Irwin, currently of Vail, Arizona, USA.
Host(s). Unknown.
Moorella latipes (Girault, 1913), comb. n.
(Figs 11, 12)
Homalotylus latipes Girault 1913: 69. Holotype female [ZMHB]
(not examined). Type locality: San Bernardino, Paraguay.
Homalotylus latipes Girault: Noyes 1980: 203 (list).
Distribution. Paraguay (Girault 1913).
Host(s). Unknown.
Comments. This species has a foliaceously expanded
metatibia and a very short, depressed gaster (Girault 1913) and
thus almost certainly rather belongs to Moorella. According to
Viola Richter (personal communication), who kindly provided
us with photographs of the labels (Fig. 11) and the remains (Fig.
12) of its holotype female (only a white metacoxa glued to a
card, probably remounted from a minuten pin mentioned in the
original description). The ZMHB slide No. 1021 “with head and
appendages, including several legs and a fore wing”, as specified
by Girault (1913, p. 69), is unfortunately lost (V. Richter, personal
communication). Girault (1913) apparently miscounted the
number of antennal segments in this species (the antenna should
be 11-segmented if the clava is indeed 3-segmented, as specified
in the original description), indicating that the female antenna is
“12-jointed” – he likely mentioned a very short, transverse F1 as
“a very short ring-joint” and also probably erroneously counted
the radicle as an antennal segment. The “23.6. -” on the blue (data)
label is most likely the collecting date (23 June, without indicating
a year) of K. Fiebrig (code S is for collector, and V for seller); Karl
August Gustav Fiebrig was a botanist and zoologist who collected
in South America (particularly in Bolivia and Paraguay) and sold
a lot of insects to the ZMHB in the early 20th Century.
To confirm the true identity of M. latipes, it needs to be recollected in or near its type locality and then thoroughly redescribed
and illustrated.
Moorella zuparkoi Triapitsyn and Trjapitzin, sp. n.
(Figs 16-18)
Type material. Holotype female [EMEC], on point labeled:
1. “Mt. Lemon [sic], Ar. Alt. 9000 ft. 9-5-1939 R. H. Crandall”; 2.
“Moorella? R.L. Zuparko 1995”; 3. “?Moorella compressiventris
Det. R.L. Zuparko 2003”; 4. “Homalotylus Det. R.L. Zuparko
2004”; 5. [database label] “U.C. Berkeley EMEC 83,253”. The
holotype lacks flagellum of one antenna. The other, complete
antenna (Fig. 17) and a pair of wings were detached from the
holotype and mounted at UCRC on a slide in Canada balsam
(under different coverslips) and labeled with the same but
corrected locality data. The holotype was collected on 5.ix.1939;
the type locality is at a high elevation on Mount Lemmon (in
Coronado National Forest, Santa Catalina Mountains, Pima Co.,
Arizona, USA), one of southern Arizona’s “sky islands” which
have elements of the Neotropical fauna.
Description. FEMALE (Fig. 16). Body length 1.98 mm.
Head (in lateral view) hemispherical, 1.85x as high as long and
about 1.2x as high as wide. Posterior margin of eye not reaching
occipital margin. Frontovertex with almost parallel margins, 0.36x
maximum head width at the level of anterior ocellus. Ocelli small,
forming a slightly obtuse triangle; distance between posterior ocelli
about 1.3x more than distance from posterior to anterior ocelli;
distance from posterior ocellus to eye margin about 0.5x and to
occipital margin about 3x more than diameter of an ocellus. Scrobes
hardly evident. Interantennal prominence small, reaching mouth
margin. Toruli significantly below the level of lower eye margin
(at mouth margin); distance between toruli less than distance from
them to eye margin. Gena with sharp margin. Subocular suture
absent. Width of oral orifice about 0.5x head width; mouth margin
concave. Antenna (Fig. 17) with scape (minus short radicle) 7.0x
as long as wide and 3.3x longer than pedicel, the latter 2.3x as long
as wide at apex and 2.2x longer than F1; F1 1.2x as long as wide;
F2 about as long as F3, both subquadrate and a little shorter than
F1; F4-F6 wider than long and wider than preceding segments;
clava entire, 2.5x as long as wide, as long as combined length of
F3-F6 plus half length of F2, truncation as long as 0.6x of clava
length; very short mps on F4 (2), F5 (4), F6 (5) and clava (at least
13). Pronotum a little narrower than head, transverse, about 1.8x as
wide as long, with a concave posterior margin. Mesoscutum wider
than long, with notaular lines evanescent but complete, meeting
near but at some distance from posterior margin of mesoscutum.
Axilla large, with an almost straight posterior margin. Tegula large
but its length notably less than that of mesoscutum. Scutellum
convex, a little wider than long. Mesopleuron approximately 2x
as long as high. Fore wing (Fig. 18) long (2.12 mm) and narrow,
about 2.7x as long as wide; costal cell 11.6x as long as wide, with
slightly convex anterior margin; submarginal vein thin, mostly
straight but slightly curved and broadened in its apical third or
so, extending to about 0.4x wing length; marginal vein about 2x
as long as wide and shorter than stigmal vein (2:5), the latter thin,
slightly curved, with a broadened apex and an uncus; postmarginal
vein a little shorter than stigmal vein; marginal setae short, the
longest seta about 0.06x greatest wing width. Metanotum as two
divided large sclerites. Mesobasitarsus very long, just slightly
shorter than all other mesotarsomeres combined; mesotibial spur
only a little longer. Metatibia about 4.7x as long as its greatest
width; metatarsus about 1/2 of metatibia length; metabasitarsus
3.5x as long as wide. Propodeum with distinct submedian sulci.
Gaster about 1.4x as short as mesosoma. Ovipositor not exserted
beyond apex of gaster.
47
Dugesiana
Head and mesosoma mostly orange except mesoscutum,
axillae, tegulae, most of scutellum, and mesopleura orangebrown, posterior part of pronotum, apex of scutellum, metanotum
and propodeum brown; gaster mostly dark brown except its base
whitish-yellowish; legs mostly orange-brown except metafemur
and metatibia partially brown, metabasitarsus mostly white except
basally, and remainder of metatarsomeres whitish except the
apical segment. Fore wing (Fig. 18) almost entirely, at least faintly
infuscate, with more or less hyaline areas (particularly at base) and
a distinct, broad transverse fuscous band. Hind wing disc hyaline.
Frontovertex with punctate-reticulate sculpture, scape with
a faint reticulate sculpture, metanotum and mesopleuron with
minute punctate sculpture.
Dorsum of mesosoma with sparse fair hairs but some of those
on mesoscutum and scutellum black. Linea calva on fore wing
disc rather narrow than broad, not interrupted posteriorly; filum
spinosum present and consisting of 11 pegs arranged in 2 rows;
fuscous or infuscate areas of fore wing disc with black setae.
Metacoxa with dense white hairs. Sides of propodeum with dense
silvery pubescence.
MALE. Unknown.
Diagnosis. This new species fits the above generic diagnosis
of Moorella quite well. Moorella zuparkoi is somewhat similar to
M. compressiventris, yet clearly different from the latter, which
has a greyish-brownish or brownish frontovertex and an almost
dark brown mesobasitarsus, in having an orange frontovertex
and an almost entirely whitish metabasitarsus. In addition to the
distinguishing characters indicated in the key, M. zuparkoi differs
from M. irwini sp. n. by F1 being 1.2x as long as wide whereas it
is 1.6x as long as wide in the latter species.
Etymology. The new species is named after Robert L. Zuparko
(CAS and EMEC) who first recognized it as being probably a
Moorella sp.
Host(s). Unknown.
ACKNOWLEDGMENTS
We thank Robert L. Zuparko (CAS and EMEC) for hospitality,
kind assistance with the collections under his care, and for the
loans of specimens, Gordon Gordh (Raleigh, North Carolina,
USA) for permission granted to the second author to work with
his private library while visiting him in Weslaco, Texas, USA,
Andrew Polaszek (BMNH) for taking the photographs of the
holotype of M. fulviceps, John S. Noyes (BMNH) for the valuable
information on the latter, Askar Kambarovich Akhatov (Moscow,
Russia) for the photograph of M. alini, Daniel A. Aquino (MLPA)
for the photograph of M. compressiventris from Brazil, Viola
Richter (ZMHB) for providing images of the labels and remains of
the holotype of M. latipes and also important information about it,
and Vladimir V. Berezovskiy (UCRC) for technical assistance.
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48
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De Santis, L. 1989. Catálogo de los himenópteros calcidoideos
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Coccinellidae). Entomological News, 114 (4): 192-196.
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Perkins, 1906 (Hymenoptera: Encyrtidae), with description of
two new species. Russian Entomological Journal, 19 (2): 123135.
Recibido: 2 de marzo 2015
Figure 1. Moorella alini, female (holotype): habitus (lateral view). Figures 2-6. Moorella compressiventris, female (paratype): 2. Mandible. 3. Antenna. 4.
Fore wing. 5. Hind wing. 6. Metatibia and metatarsus. Figure 7. Moorella compressiventris, female (Lavras, Minas Gerais, Brazil): habitus (dorsolateral
view). Figures 8-10. Moorella fulviceps, female (holotype): 8. Habitus (dorsal view). 9. Habitus (lateral view). 10. Fore wing. Figures 11, 12. Moorella
latipes, female (holotype): 11. Labels. 12. Metacoxa.
49
Dugesiana
Figures 13-15. Moorella irwini, female (holotype): 13. Habitus (dorsal view). 14. Antenna. 15. A pair of wings (a part of the second hind wing is stuck
to the fore wing).Figures 16-18. Moorella zuparkoi, female (holotype): 16. Habitus (dorsal view). 17. Antenna. 18. Fore wing (apex of a hind wing is
stuck to it).
50
Odonatos (Insecta: Odonata) de Puerto Vallarta, Jalisco, México
Dragonflies and damselflies (Insecta: Odonata) from Puerto Vallarta, Jalisco, Mexico
Viridiana Adame-Marino* y Fabio Germán Cupul-Magaña*
*Centro Universitario de la Costa, Universidad de Guadalajara. Av. Universidad 203, Delegación Ixtapa, C.P. 48280, Puerto
Vallarta, Jalisco, México. [email protected], [email protected]
Para Jalisco, González-Soriano y Novelo-Gutiérrez (2014)
contabilizaron 128 especies de odonatos, cifra que lo ubica en
el séptimo sitio (junto con Sonora) de mayor diversidad para
México. Recientemente, tanto Smith-Gómez (2013) como NoveloGutiérrez et al. (2014), incrementaron la diversidad del estado al
registrar por primera vez tres y una especie, respectivamente.
En esta nota se presenta una lista de las especies observadas
en el Área Natural Protegida estero El Salado (20° 40’ 18.4” N
y 105° 14’ 0.8” O) y en las instalaciones del campus del Centro
Universitario de la Costa (CUC) de la Universidad de Guadalajara
(20° 42’ 18.6” N y 105° 13’ 17.4” O), en el municipio de Puerto
Vallarta, Jalisco.
Los ejemplares se recolectaron, a partir de búsquedas visuales
no sistematizadas, entre septiembre y diciembre de 2013 y febrero
a junio de 2014 con la ayuda de una red entomológica de 38 cm
de diámetro. Los ejemplares se determinaron con el apoyo de los
trabajos de Needham et al. (2000), Ellenrieder y Garrison (2003),
Trapero-Quintana y Naranjo-López (2004), González-Soriano et
al. (2004) y Heckman (2008). La identificación de las especies fue
validada por el M. en C. Enrique González-Soriano del Instituto
de Biología, Universidad Nacional Autónoma de México. Los
especímenes se depositaron en el Departamento de Ciencias
Biológicas del CUC de la Universidad de Guadalajara en Puerto
Vallarta, Jalisco.
Se recolectaron 109 ejemplares y se identificaron 30 especies
dentro de cinco familias y 17 géneros. En el estero El Salado se
registraron 17 especies de tres familias y en el Centro Universitario
de la Costa 29 especies de cinco familias. Coryphaeschna viriditas
Calvert, 1952 sólo se registró para el estero El Salado, mientras
que Gynacantha mexicana Selys, 1868, G. nervosa Rambur, 1842,
Triacanthagyna septima Selys in Sagra, 1857, Argia pulla Hagen in
Selys, 1865, Leptobasis vacillans Hagen in Selys, 1877, Telebasis
filiola (Perty, 1834), Hetaerina occisa Hagen in Selys, 1853,
Erythrodiplax basifusca (Calvert, 1895), Micrathryria marcella
(Selys, 1857), M. ocellata Martin, 1897, Perithemis domitia
(Drury, 1773), Tholymis citrina Hagen, 1867 y Protoneura cara
Calvert, 1903 únicamente se observaron en el Centro Universitario
de la Costa (Cuadro 1). Además, se registraron tres especies por
primera vez para el estado de Jalisco: G. mexicana, L. vacillans y
T. septima.
Gynacantha mexicana Selys, 1868
(Fig. 1)
Material examinado: MÉXICO: Jalisco; Puerto Vallarta, Centro
Universitario de la Costa, 26-septiembre-2013, V. Adame col.,
2♀; 28-septiembre-2013, V. Adame col., 1♂; 10-octubre-2013,
V. Adame col., 1♀; 5-noviembre-2013, V. Adame col., 2♀, 1♂;
10-abril-2014, V. Adame col., 1♀; 6-mayo-2014, V. Adame col.,
1♀. Con distribución desde el sur de Texas hasta Brasil (Paulson
y Dunkle, 2012). González-Soriano y Novelo-Gutiérrez (1996) la
ubican en Quintana Roo, San Luis Potosí, Veracruz y Yucatán.
Leptobasis vacillans Hagen in Selys, 1877
(Fig. 2)
Universitario de la Costa, 21-mayo-2014, V. Adame col., 1♂.
Con distribución al sur de Texas y Sinaloa al sur hasta Perú y las
Guyanas y el Caribe (Paulson y Dunkle, 2012). González-Soriano
y Novelo-Gutiérrez (1996) la citan para Chiapas, Colima, Morelos,
Nayarit, Puebla, Quintana Roo, San Luis Potosí, Sinaloa, Tabasco,
Veracruz y Yucatán; mientras que Novelo-Gutiérrez y GómezAnaya (2013) la incluyen en Guanajuato.
Triacanthagyna septima Selys in Sagra, 1857
(Fig. 3)
Universitario de la Costa, 17-octubre-2013, V. Adame col., 2♀;
5-noviembre-2013, V. Adame col., 1♂. Con distribución desde el
centro de México, el Caribe y hasta Brasil (Ellenrieder y Garrison,
2003). González-Soriano y Novelo-Gutiérrez (1996) la registran
en Campeche, Chiapas, Quintana Roo, Tabasco y Veracruz. Por su
parte, Ellenrieder y Garrison (2003) la citan para Nayarit.
AGRADECIMIENTOS
A las autoridades del Área Natural Protegida estero El Salado
por las facilidades otorgadas para realizar el estudio, en especial al
Biol. Víctor E. Hernández Santos, Coordinador de Investigación,
Monitoreo y Cooperación Científica. A los dos revisores anónimos
por sus comentarios.
LITERATURA CITADA
Ellenrieder, N. & R.W. Garrison. 2003. A synopsis of the genus
Triacanthagyna (Odonata: Aeshnidae). International Journal
of Odonatology 6(2): 147-184.
González-Soriano, E. & R. Novelo-Gutiérrez. 1996. Odonata.
(pp. 147-167). In: J. Llorente-Bousquets, A.N. García-Aldrete
& E. González-Soriano (Eds.). Biodiversidad, taxonomía y
biogeografía de artrópodos de México: Hacia una síntesis de
su conocimiento. CONABIO-UNAM, México.
Dugesiana
González-Soriano, E. & R. Novelo-Gutiérrez. 2014. Biodiversidad
de Odonata en México. Revista Mexicana de Biodiversidad,
Supl. 85: S243-S251.
González-Soriano, E., O. Delgado-Hernández & G.L. Harp.
2004. Libélulas de la Estación de Biología Chamela (Insecta:
Odonata). (pp.37-61). In: A.N. García-Aldrete & R. AyalaBarajas (Eds.). Artrópodos de Chamela. Instituto de BilogíaUNAM, México.
Heckman, C.W. 2008. Encyclopedia of South American aquatic
insects: Odonata-Zygoptera. Springer. Países Bajos.
Needham, J.M., M.J. Westfall & M.L. May. 2000. Dragonflies of
North America. Scientific Publishers, Gainesville, Florida.
Novelo-Gutiérrez, R. & J.A. Gómez-Anaya. 2013. Listado
preliminar de los odonatos (Insecta: Odonata) del estado de
Guanajuato, México. Dugesiana 20(2): 85-88.
Novelo-Gutiérrez, R., J.A. Gómez-Anaya & S.A. Smith-Gómez.
2014. Primer registro del género Epigomphus Hagen in
Selys, 1854 para el estado de Jalisco (Odonata: Gomphidae).
Dugesiana 21(2): 101.
Paulson, D.R. & S.W. Dunkle. 2012. A checklist of North
American Odonata: including english name, etymology, type
locality, and distribution. http://www.odonatacentral.org/docs/
NA_Odonata_Checklist_2012.pdf
Smith-Gómez, S.A. 2013. Primeros registros de tres especies
de Zygoptera (Insecta: Odonata) para el estado de Jalisco,
México. Dugesiana 20(2): 83-84.
Trapero-Quintana, A.D. & J. C. Naranjo-López. 2004. Clave de
identificación para los adultos de las especies del orden Odonata
presentes en Cuba. Boletín de la Sociedad Entomológica
Aragonesa 35: 171-180.
Recibido: 17 de abril 2015
Cuadro 1. Lista de especies y número de ejemplares de odonatos registrados en el Centro Universitario de la
Costa (CUC) y Área Natural Protegida estero El Salado, municipio de Puerto Vallarta, Jalisco.
Familias
Aeshnidae
Coenagrionidae
Colopterygidae
Libellulidae
Protoneuridae
52
Especies
Coryphaeschna viriditas Calvert, 1952
Gynacantha mexicana Selys,1868
Gynacantha nervosa Rambur,1842
Triacanthagyna septima Selys in Sagra,1857
Argia pulla Hagen in Selys, 1865
Ischnura hastata (Say, 1839)
Ischnura ramburii (Selys, 1850)
Leptobasis vacillans Hagen in Selys, 1877
Telebasis filiola (Perty, 1834)
Telebasis salva (Hagen, 1861)
Hetaerina occisa Hagen in Selys, 1853
Erythemis plebeja (Burmeister, 1839)
Erythemis vesiculosa (Fabricius, 1775)
Erythrodiplax basifusca (Calvert, 1895)
Erythrodiplax fervida (Erichson, 1848)
Erythrodiplax funerea (Hagen, 1861)
Micrathyria aequalis (Hagen, 1861)
Micrathyria didyma (Selys, 1857)
Miathyria marcella (Selys, 1857)
Micrathyria ocellata Martin, 1897
Orthemis discolor (Burmeister,1839)
Orthemis ferruginea (Fabricius,1775)
Orthemis levis Calvert, 1906
Pantala flavescens Fabricius, 1798
Perithemis domitia (Drury, 1773)
Perithemis intensa Kirby, 1889
Perithemis mooma Kirby, 1889
Tholymis citrina Hagen, 1867
Tramea onusta Hagen, 1861
Protoneura cara Calvert, 1903
CUC
9
1
3
2
3
3
1
1
5
1
1
1
1
4
3
3
1
1
1
3
2
1
4
10
1
3
3
2
1
El Salado
1
1
6
1
1
1
1
1
2
5
5
1
3
1
1
2
1
Odonatos (Insecta: Odonata) de Puerto Vallarta, Jalisco, México
Figuras 1-3. 1) Gynacantha mexicana (macho). 2) Leptobasis vacillans (macho). 3) Triacanthagyna septima
(hembra). Marca de escala 1 cm. Imágenes: Roberto Valencia.
53
Dugesiana
54
Primer registro de Cryptocephalus downiei Riley & Gilbert, 1999 (Coleoptera: Chrysomelidae,
Cryptocephalinae) en México
First record of Cryptocephalus downiei Riley & Gilbert, 1999 (Coleoptera: Chrysomelidae, Cryptocephalinae) from
México
Uriel Jeshua Sánchez-Reyes*, Santiago Niño-Maldonado**, Edmar Meléndez-Jaramillo*, Vannia del Carmen GómezMoreno**, Brenda Villanueva-Alanís** y Nabil Yessenia Martínez-Ruíz**
*
Instituto Tecnológico de Ciudad Victoria, Boulevard Emilio Portes Gil No.1301, C.P. 87010. Ciudad Victoria, Tamaulipas,
México. Email: [email protected]; **Universidad Autónoma de Tamaulipas, Facultad de Ingeniería y Ciencias, Centro
Universitario Victoria, C.P. 87149. Ciudad Victoria, Tamaulipas, México. Email: [email protected]
El conocimiento de la biodiversidad a través de listados
faunísticos constituye un aspecto de mayor importancia para la
conservación, ya que representa una base para estudios de tipo
ecológico y aplicado (Andrews y Gilbert 2005; Niño-Maldonado et
al. 2005; Ordóñez-Reséndiz y López-Pérez 2009; Sánchez-Reyes
2012); sin embargo, aún se carece de información para muchos
grupos biológicos en México. Chrysomelidae (Coleoptera) es un
taxón poco estudiado en el país; la gran riqueza de especies que
presenta la familia, en conjunto con la escasa literatura de referencia
así como la ausencia de las características de los genitales tanto
masculinos como femeninos en muchas de las descripciones
originales de las especies dificultan la correcta determinación
de numerosos ejemplares depositados en colecciones científicas.
Por otro lado, la falta de estudios sistemáticos impide conocer los
patrones reales de distribución, así como los factores ecológicos
que afectan dicha distribución de las especies. De acuerdo con
Ordóñez-Reséndiz et al. (2014) se conocen 2,174 especies de
Chrysomelidae en México, de las cuales 93 se registran para el
estado de Tamaulipas; dentro de esta familia, Cryptocephalinae
(incluye Clytrinae y Chlamisinae, de acuerdo con Riley et al. 2002)
constituye una subfamilia con aproximadamente 348 especies en
el país y solamente siete en el estado (Ordoñez-Reséndiz et al.
2014).
La Sierra de San Carlos, ubicada en la porción centro-norte de
Tamaulipas, es una región en donde existen puntos con prioridad
alta y extrema de conservación. Además se le considera una isla
biogeográfica y/o ecológica, por tratarse de una zona aislada en la
Llanura Costera del Golfo (Briones-Villarreal 1991, Arriaga et al.
2000, CONABIO 2007). Como parte de un inventario faunístico
y análisis ecológico de Chrysomelidae a largo plazo en la zona,
se llevó a cabo un muestreo en la Sierra de San Carlos, en el
cual se colectó un ejemplar hembra de Cryptocephalus downiei
Riley y Gilbert, 1999. El sitio en donde se registró la especie
se ubica al este del municipio de San Carlos (24°32’20.4’’N,
98°46’53.7’’O), a una altitud de 500 msnm (Figura 1); el ejemplar
fue colectado con la ayuda de una red entomológica de golpeo
directamente sobre Acacia berlandieri Benth (guajillo), el 21
de abril de 2013. La vegetación dominante del área de colecta
es matorral submontano (Briones-Villarreal 1991), con algunos
elementos florísticos que también se incluyen dentro del matorral
espinoso tamaulipeco. El ejemplar se colectó a las 11:00 horas,
registrándose una temperatura de 23.9° a 25.3°C y una humedad
relativa de 50.8 a 56.5%, con una velocidad máxima del viento
de 7.6 km/h y una presión barométrica de 30.22 inHg; dichos
datos se tomaron con una estación meteorológica portátil Kestrel
3500, y en conjunto contribuyen al conocimiento de la biología y
ecología de la especie. En relación a ello, la fecha de colecta de
C. downiei en la Sierra de San Carlos está asociada con el período
(abril-mayo) en el cual han sido registrados otros ejemplares de la
misma especie en Estados Unidos (Riley y Gilbert 1999).
Las características morfológicas del ejemplar encontrado
coinciden con las mencionadas en la descripción original
de la especie. De manera general, C. downiei se caracteriza
principalmente por la forma corporal robusta así como el patrón
característico en su coloración (Figura 2): dorso anaranjado
brillante, con dos manchas de color negro en el pronoto y cuatro
manchas negras en cada uno de los élitros; escutelo, región ventral
abdominal y pigidio de color negro; tibias y tarsos negros, fémures
anaranjados; antenómeros de color negro (Riley y Gilbert 1999).
Las imágenes fueron obtenidas con una cámara digital Panasonic
DMC-F55 montada sobre un microscopio estereoscópico Carl
Zeiss Stemi DV4; la edición se realizó en los programas Combine
ZP y Corel Draw X3.
Cryptocephalus es un género distribuido en todo el mundo; en
su mayoría las larvas son saprofitófagas, mientras que los adultos
se alimentan de hojas, flores o frutos (White 1968) de algunos
géneros de Asteraceae, Ericaceae, Fabaceae y Rosaceae, entre otras
(Riley et al. 2002). Al norte de México se registran 77 especies de
Cryptocephalus (Riley et al. 2002), mientras que en México se
reconocen 60 especies (Ordóñez-Reséndiz 2008). De acuerdo a
Riley y Gilbert (1999), C. downiei se distribuye solamente en el
extremo sur de Texas (Condados de Kenedy y San patricio) en
Estados Unidos, y no existe en la literatura un reporte previo sobre
su presencia en México (Wilcox 1975, Ordóñez-Reséndiz 2008).
Por lo tanto, el hallazgo de C. downiei en la Sierra de San Carlos
es el primer registro para México, representando una ampliación
hacia el sur en su distribución. De esta manera se incrementa a 61
el número de especies de Cryptocephalus reportadas en el país.
Es imposible asegurar que C. downiei presenta la capacidad
para desplazarse hacia el sur del continente ya que no se conoce
Dugesiana
ningún aspecto sobre la biología de dicha especie; no obstante,
se ha demostrado mediante técnicas de captura-recaptura, marcaje
de plantas hospederas, observación directa y estudios genéticos,
que el potencial de dispersión geográfica es muy limitado en
algunas especies de Cryptocephalus (Piper y Compton 2010). Por
lo tanto, la falta de estudios previos en la zona constituye un factor
que puede influir directamente en la ausencia de otros registros
geográficos de la especie. Además, es posible que C. downiei
presente una distribución continua, extendiéndose del extremo
sur de Texas hasta el sureste de la Sierra de San Carlos, siendo
este su rango de distribución real, y lo cual podría atribuirse al
tipo de vegetación predominante en la región. Para confirmarlo, es
necesario determinar las especies vegetales asociadas a C. downiei
ya que esta información se desconoce (Riley y Gilbert 1999), y
la presencia del insecto sobre A. berlandieri no es suficiente para
confirmar a dicha planta como hospedera.
Por otra parte, los listados faunísticos realizados en algunas
zonas del centro (Sánchez-Reyes 2012) y sur de Tamaulipas
(Niño-Maldonado et al. 2005), así como en otras áreas de
México (Andrews y Gilbert 2005) sugieren que C. downiei
constituye un posible endemismo para la región centro-norte
de Tamaulipas y sur de Texas en Estados Unidos. Sin embargo,
la falta de información sobre la hospedera del insecto, aspectos
reproductivos, y carencia de inventarios faunísticos en otras
regiones, dificultan la confirmación del endemismo, por lo que no
se descarta que el rango geográfico de la especie sea más amplio.
Para corroborar lo anterior es necesario incrementar el número
de estudios sistemáticos en otras regiones del país, con lo cual se
pueda ampliar el conocimiento de la distribución de esta y otras
especies de Chrysomelidae.
LITERATURA CITADA
Andrews, F. G. y A. J. Gilbert. 2005. A preliminary annotated
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Primer registro de Cryptocephalus downiei (Coleoptera: Chrysomelidae, Cryptocephalinae) en México
1
2
Figura 1. Sitio de recolecta de Cryptocephalus downiei en México. A) Tamaulipas; B) Ubicación del
municipio de San Carlos en el estado; C) Municipio y sitio de colecta; D) Localización del nuevo
registro en la Sierra de San Carlos. Elaboración con base en el Conjunto de Datos Vectoriales de la Serie
Topográfica de INEGI, Escala 1: 50,000. Figura 2. Hembra de Cryptocephalus downiei colectada en San
Carlos, Tamaulipas. A) Aspecto lateral, B) Aspecto dorsal. Escala equivalente a un milímetro.
57
Dugesiana
58
Nuevos datos en la distribución de tres especies del género Marietta Motschulsky (Hymenoptera:
Chalcidoidea: Aphelinidae) en México
New records for three species of the genus Marietta Motschulsky (Hymenoptera: Chalcidoidea: Aphelinidae)
from Mexico
Svetlana Nikolaevna Myartseva, *Enrique Ruíz-Cancino y Juana María Coronado-Blanco
Cuerpo Académico Entomología Aplicada, Facultad de Ingeniería y Ciencias, Universidad Autónoma de Tamaulipas, 87149 Cd.
Victoria, Tamaulipas, México. *Autor de correspondencia: [email protected]
RESUMEN
Se presentan nuevos datos de la distribución de las especies mexicanas del género Marietta (Aphelinidae). Se determinaron tres especies, M.
graminicola Timberlake, 1925, M. mexicana (Howard, 1895) y M. pulchella (Howard, 1881), depositadas en el Museo de Investigación Entomológica
de la Universidad de California – Riverside, Estados Unidos, que fueron colectadas en Baja California Sur, Chihuahua, Nuevo León, Puebla y Sinaloa,
estados donde son nuevos registros. En las colecciones de instituciones mexicanas se encuentra material de estas especies de Marietta de los estados
de Morelos, San Luis Potosí y Tamaulipas.
Palabras clave: Marietta, Aphelinidae, México.
ABSTRACT
New data on the distribution of the Mexican species of the genus Marietta (fam. Aphelinidae) are presented. Three species were identified, M.
graminicola Timberlake, 1925, M. mexicana (Howard, 1895) and M. pulchella (Howard, 1881), deposited at the Entomological Research Museum of
the University of California –Riverside, USA, that were collected in Baja California Sur, Chihuahua, Nuevo León, Puebla and Sinaloa, states in which
they are new records. In collections of Mexican institutions are preserved material of these three species of Marietta from the states of Morelos, San
Luis Potosí and Tamaulipas.
Key words: Marietta, Aphelinidae, Mexico.
El género Marietta fue establecido por Motschulsky en
1863. La descripción fue publicada en la revista rusa Byulleten’
Moskowskogo Obshchestva Ispytateley Prirody, Otdel
Biologicheskiy (Boletín de la Sociedad Imperial de Naturalistas de
Moscú, Sección Biológica) y no fue empleado por los entomólogos.
Howard (1895) describió el género Perissopterus, el cual se utilizó
ampliamente. Girault (1916) sinonimizó Perissopterus Howard,
1895 con Marietta Motschulsky, 1863, lo cual fue reconocido y
aceptado por otros especialistas como Hayat (1998). Años más
tarde se describieron los géneros Pseudaphelinus Brèthes, 1918
y Paraphycus Compere, 1925, que también fueron sinonimizados
con Marietta (Compere, 1936).
Marietta incluye 21 especies (Noyes, 2013) y tiene distribución
mundial. Hayat (1998) separó las especies de Marietta en tres
grupos de especies, basados principalmente en los patrones de
ahumado y setas del ala anterior: leopardina, marchali y nebulosa.
En el grupo leopardina, el ala anterior tiene áreas hialinas bien
definidas y setas hialinas, en contraste con áreas ahumadas, las
cuales tienen setas oscuras o sólo con setas oscuras; el cuerpo es
básicamente amarillo con áreas ahumadas y plateadas; todas las
tibias con las bandas oscuras más angostas que en las áreas claras.
Este grupo incluye 11 especies. Las seis especies encontradas en
México pertenecen a este grupo de especies, así como las especies
que se estudiaron para este trabajo. Las especies de Marietta son
hiperparasitoides de otros parasitoides que atacan varias familias
de Hemiptera – Diaspididae, Coccidae, Pseudococcidae, Psyllidae,
Aphididae y otras.
Como muchos Aphelinidae, las especies de Marietta son
raramente encontradas en ambientes naturales. Se conocen ocho
especies de Sudáfrica y ocho especies de Centro y Sudamérica. En
Australia sólo se ha registrado una especie, en la Región Paleártica
cuatro especies y en India tres especies; en Estados Unidos y
México se reportan siete y seis especies, respectivamente (Noyes,
2013). De México se describió una nueva especie, M. montana
Myartseva, obtenida de Melanaspis sp. en Pinus spp. y de una
escama armada no identificada en Agave sp. (Myartseva & RuízCancino, 2001).
La primera clave de especies de Marietta (hembras) fue
publicada por Compere (1936). Hayat (1986) publicó la revisión
de especies a nivel mundial e incluyó la clave. Annecke e Insley
(1972) publicaron la clave de ocho especies sudafricanas,
incluyendo cinco nuevas. Myartseva & Ruíz-Cancino (2001)
y Myartseva et al. (2012) elaboraron la clave de seis especies
mexicanas de Marietta, incluyendo una nueva.
El objetivo de este trabajo es presentar nuevos datos sobre
la distribución de las especies de Marietta para incrementar el
conocimiento de la biodiversidad de Aphelinidae de México.
MATERIAL Y MÉTODOS
Del Museo de Investigación Entomológica (UCRC) de la
Universidad de California en Riverside, Estados Unidos, se
obtuvieron especímenes de Marietta, los cuales estaban montados
en “puntas” de papel. Este material fue colectado en 1954, 1956,
1983, 1985 y 2000 por P. DeBach, J.T. Huber, A. González-
Dugesiana
Hernández y S.V. Triapitsyn. Para su identificación, el material
fue montado en laminillas en bálsamo de Canadá, según lo
indicado por Noyes (1982). La morfología fue estudiada bajo un
microscopio compuesto Leica CME con magnificación de 400x.
Se utilizaron las claves de hembras de Compere (1936), Annecke
e Insley (1972), Hayat (1986) y las de Myartseva y Ruíz-Cancino
(2001). Los especímenes tienen en el texto los números asignados
en el UCRC. El material quedará depositado en el UCRC, en
Riverside, California.
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
En la fauna mundial, los hospederos primarios de Marietta
son varias familias de Hemiptera, predominantemente Coccidae
y Diaspididae. Las colectas de Marietta spp. en México son muy
raras y de un solo especimen, emergiendo de Saissetia oleae
(Olivier), Melanaspis sp., Ceroplastes sp., un Eriococcidae no
determinado en ébano - Ebenopsis ebano (Berland.), Fabaceae
y de Diaspididae no determinado en Agave sp., incluyendo los
materiales del Museo de Insectos (MIFA) de la UAT.
La mayoría de las especies de Marietta han sido descritas
inadecuadamente, usando sólo el color y los patrones de las alas,
por lo que enseguida se anotan las principales características del
género.
Caracteres estructurales de la hembra de Marietta (Fig. 1)
Cabeza con la parte dorsal algo aplanada, cabeza subtriangular
en perfil. Antena con seis segmentos; escapo delgado o aplanado,
segmentos funiculares I y II transversales, aneliformes, maza
antenal de uno o dos segmentos. Ojos aparentemente glabros.
Mandíbula con dos dientes y una parte truncada corta. Palpos
maxilares y labiales con dos y un segmentos, respectivamente.
Pronoto completo. Axilas no proyectadas hacia adelante o
poco proyectadas. Lóbulo medio del mesoescudo con pocas o
muchas setas, lóbulo lateral con dos a tres setas, axila con una
seta, escutelo con cuatro setas y un par de sensilas placoideas.
Propodeo no más largo que el metanoto o sólo ligeramente más
largo. Mesopleura grande, sin surco. Ala anterior con un patrón
ahumado con setas oscuras, áreas hialinas con setas incoloras;
raramente uniformemente ahumado con setas de un color; vena
submarginal con 2-4 setas; parastigma bien desarrollado; vena
estigmal corta, casi sésil; línea calva distinguible. Fórmula tarsal
5-5-5; espuela de la tibia media, gruesa. Gáster con siete terguitos.
Ovipositor largo, expuesto en el ápice. Cuerpo y patas con manchas
y bandas variables. Macho similar a la hembra. Antena con cinco
a seis segmentos. Genitalia con una falobase larga y tubular, con
parámeras reducidas y con escleritos digitales desarrollados. Las
especies de Marietta usualmente se reconocen por las manchas en
las alas y el cuerpo, y por la escultura en forma de diamante en
el metanoto, justo detrás del ápice del escutelo. Este género está
relacionado morfológicamente con Aphytis Howard, en el cual el
cuerpo es generalmente amarillo, sin manchas definidas en las alas
y el cuerpo, y con el metanoto liso a través del centro (Myartseva
et al., 2012).
60
Figura 1. Marietta carnesi (Howard), hembra (según Compere,
1936, con modificaciones).
Especies mexicanas de Marietta en el Museo de Investigación
Entomológica (UCRC)
Marietta graminicola Timberlake, 1925
Diagnosis. M. graminicola difiere de las otras especies por
tener el escapo antenal subtrapezoidal, 1.50-1.66 veces tan largo
como ancho y con una área triangular oscura, el basitarso medio
es claro y el propodeo con una área triangular media fuertemente
elevada (Myartseva et al., 2012).
Hospederos primarios. Aphididae – Schizaphis graminum
(Rondani); Pseudococcidae – Antonina graminis (Maskell),
Trionymus insularis Ehrhorn (Noyes, 2013).
Material examinado. UCRC, México: Nuevo León, 5 km
W Bustamante, 1♂, 13.VII.1983, A. González H., N54491, 1♀,
14.VII.1983, A. González H., N54494. Sinaloa, 11 mi. N La
Concha, nr. microondas sta. La Muralla, 2, 1♀, 25.X.1982, J.T.
Huber, N54513.
Comentarios. Nuevo registro para los estados de Nuevo León
y Sinaloa. En el MIFA-UAT hay material del Estado de Tamaulipas
(Myartseva & Ruíz-Cancino, 2001).
Distribución en México: Nuevo León, Sinaloa, Tamaulipas.
Distribución: EU (Florida, Texas, Maryland), México, Brasil,
Hawai (Noyes, 2013).
Marietta mexicana (Howard, 1895)
Diagnosis. M. mexicana difiere de las otras especies por tener
el escapo antenal delgado con dos bandas longitudinales negras,
mesoescudo y escutelo con manchas parduzcas alrededor de las
bases de las setas, ápice del ala anterior sin banda ahumada en
la mitad y con una celda hialina más o menos triangular, cuerpo
extensamente marcado con pardo (Myartseva et al., 2012).
Hospederos primarios. Coccidae – Ceroplastes rubens
Maskell, Coccus hesperidum Linnaeus, C. pseudomagnoliarum
(Kuwana), C. viridis (Green), Lecanium nigrofasciatum,
Mesolecanium nigrofasciatum (Pergande), Parasaissetia nigra
(Nietner) y Saissetia oleae (Olivier); Diaspididae – Aonidiella
citrina (Coquillett), Chionaspis americana Johnson, Ch. furfura
Distribución de tres especies del género Marietta Motschulsky (Hymenoptera: Chalcidoidea: Aphelinidae) en
(Fitch), Ch. heterophyllae Cooley, Ch. longiloba Cooley, Ch.
pinifoliae (Fitch), Hemiberlesia lataniae (Signoret), H. rapax
(Comstock), Lepidosaphes ulmi (Linnaeus), Pseudaulacaspis
pentagona (Targioni Tozzetti), Quadraspidiotus juglansregiae
(Comstock) y Q. perniciosus (Comstock); Lecanodiaspididae –
Lecanodiaspis rufescens (Cockerell); Pseudococcidae – Ceroputo
yuccae (Cockerell), Pseudococcus agavis MacGregor y Puto
yuccae (Coquillett) (Noyes, 2013).
Material examinado. UCRC, México: Puebla, ex Saissetia oleae
en oleander, P. 55, 1♀, 7.III.1954, P. DeBach, N54495, todos ex
Saissetia oleae y en laminillas, colectados por P. DeBach: 1♂,
3.VII.1954, N54496, 1♂, N54501, 1♂, N54498, 1♀, N54505,
1♀, N54500, 1♂, N54503; en puntos: 1♀, N54497, 1♀, N54502,
1♂, N54499, 1♂, N54504. Chihuahua, Parral, ex Saissetia oleae,
24.I.1956, P. DeBach, 1♂, N54509, 1♂, N54511, 1♂, N54512,
1♀, N54508, 1♀, N54510. Tamaulipas, Gómez Farías, red de
golpeo, 1♀, 11.IV.2000, S. Triapitsyn, N54490.
Comentarios. Nuevo registro para los estados de Puebla,
Chihuahua y Tamaulipas. En el MIFA-UAT existe material de los
estados de Morelos y San Luis Potosí (Myartseva & Ruíz-Cancino,
2001). También se conoce de los estados de Jalisco, Michoacán y
del Distrito Federal (Myartseva et al. 2012).
Distribución en México: Chihuahua, Distrito Federal, Jalisco,
Michoacán, Morelos, Puebla, San Luis Potosí y Tamaulipas.
Distribución: Canadá, EU (California, Indiana, New York,
North Carolina, Pennsylvania y Virginia), México, Cuba, Japón
(Noyes, 2013).
Marietta pulchella (Howard, 1881)
Diagnosis. M. pulchella difiere de las otras especies por tener
el escapo antenal delgado con una banda negra larga a lo largo de
la mitad, mesoescudo y escutelo sin manchas parduzcas alrededor
de las bases de las setas, ala anterior después de la línea calva con
cuatro celdas hialinas en la mitad, en una hilera transversal y con
una banda ahumada que toca el ápice alar (Myartseva et al., 2012).
Hospederos primarios. Asterolecaniidae – Asterolecanium
sp. y Prosopophora sp.; Coccidae – Ceroplastes cirripediformis
Comstock, Eulecanium tiliae (Linnaeus) (como coryli),
Parasaissetia nigra (Nietner), Saissetia miranda (Cockerell &
Parrott), S. nigra y S. oleae (Olivier); Conchaspididae – Conchaspis
angraeci Cockerell; Diaspididae – Aspidiotus sp., Aspidiotus
perniciosus (Comstock), Chionaspis americana Johnson, Ch.
pinifoliae (Fitch), Furcaspis biformis (Cockerell), Melanaspis
obscura (Comstock), Pseudaulacaspis pentagona (Targioni
Tozzetti), Quadraspidiotus forbesi (Johnson), Q. juglansregiae
(Comstock), Q. ostreaeformis (Curtis), Q. perniciosus (Comstock),
y Targonia biformis; Lecanodiaspididae – Lecanodiaspis rugosa
Hempel.
Material examinado: UCRC, México: Baja California Sur, Las
Barracas, pan trap, 13.V.1985. P. DeBach, 1♀, N54507, 1♀,
11.V.1985, N54506, 1♀, 1.VI.1985, N54493.
Comentarios. Nuevo registro para el estado de Baja California
Sur. En el MIFA-UAT hay material del Estado de Tamaulipas.
Distribución en México: Baja California Sur, Tamaulipas.
Distribución: Canadá, EU (California, Colorado, Distrito
de Columbia, Illinois, Iowa, Kentucky, Louisiana, Maryland,
México
Missouri, Montana, Nebraska, New Jersey, New York, Rhode
Island y Texas), México, Puerto Rico, Brasil, Hawai (Noyes,
2013).
CONCLUSIONES
El género Marietta está representado en México por seis
especies, incluyendo las tres especies depositadas en el Museo
de Investigación Entomológica de la Universidad de California
– Riverside: M. graminicola, M. mexicana y M. pulchella.
Estas especies están ampliamente distribuidas en el Continente
Americano. Es necesario colectar más material de Marietta en el
norte, noroeste y sureste de México para conocer la identidad y
distribución de las especies de este vistoso género.
AGRADECIMIENTOS
Al Dr. Serguei V. Triapitsyn, Director del Museo de
Investigación Entomológica (Universidad de California Riverside), por el préstamo de material de Aphelinidae colectado
en México. Al proyecto PROMEP “Taxonomía y ecología de
fauna y micobiota en comunidades forestales y cultivos” y a
la Universidad Autónoma de Tamaulipas, por su apoyo. A los
revisores del artículo y al Editor de la revista, por sus atinados
comentarios.
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Panama and Hawaii (Hymenoptera). Proceedings of the
Hawaiian Entomological Society, 6(1): 173-192.
Camponotus senex (Smith, 1858) (Hymenoptera: Formicidae): nuevo registro para Tamaulipas
Camponotus senex (Smith, 1858) (Hymenoptera: Formicidae): new record for Tamaulipas
Flor Evelyn Rios-Cruz, 1Juana María Coronado-Blanco*, 2Miguel Vásquez-Bolaños y 1Jacinto Treviño-Carreón
1
Facultad de Ingeniería y Ciencias, Universidad Autónoma de Tamaulipas, Centro Universitario Adolfo López Mateos, C. P.
87149, Cd. Victoria, Tamaulipas, 2Centro de Estudios en Zoología, Departamento de Botánica y Zoología, Centro Universitario
de Ciencias Biológicas y Agropecuarias, Universidad de Guadalajara, Zapopan, Jalisco, Apdo. Postal 134. *Autora de
correspondencia: [email protected]
1
En México se han registrado 973 especies de hormigas (RíosCasanova, 2014), para el estado de Tamaulipas se conocen 155, lo
que lo ubica entre los primeros cinco lugares por su diversidad; de
tales especies, diez pertenecen al género Camponotus (CoronadoBlanco et al., 2013), el segundo género a nivel mundial y en
México, en cuanto a riqueza de especies.
La especie fue originalmente descrita de Brasil, su coloración
es completamente negra en todo el cuerpo, cubierta de vellosidades
suberectas blancas, con puntuaciones densas en el mesosoma, se
distribuye desde México hasta Brasil; prefiere bosque maduros
aunque aprovecha los nidos abandonados de otras especies o lo
hueco de las plantas (Longino, 2006). Es considerada una especie
de hormiga tejedora, construye nidos utilizando la seda que
producen sus larvas; a los nidos de esta especie se les conoce como
nidos de cartón (Farías-Ruíz y Rico-Gray, 2013).
La subespecie Camponotus senex senex ha sido registrada para
los estados de Guerrero y Veracruz (Rojas, 1996) mientras que
Camponotus senex textor fue encontrada en Chiapas (Philpott,
2005) y recientemente en Tabasco (González-Valdivia et al., 2013).
En el presente trabajo se registra por primera vez a C. senex para el
estado de Tamaulipas, asociada a Hechtia sp. (Bromeliaceae), con
lo que se actualiza la información de la mirmecofauna del Estado.
El material fue colectado en una localidad con matorral
submontado del municipio de Jaumave, Tamaulipas, a 923
msnm, los datos de las coordenadas fueron obtenidos de una
cámara Sony Cybershot DSC-HX20V. El material se revisó en la
Colección Entomológica del Centro de Estudios en Zoología de
la Universidad de Guadalajara (CZUG), utilizando las claves de
Mackay (2004), y siendo determinado como Camponotus senex.
El material se encuentra depositado en la Colección Entomológica
del CZUG, Zapopan, Jalisco.
Material examinado: una obrera, etiquetada de la siguiente
manera: México: Tamaulipas, Jaumave, 23º 19’ 20.85” N, 99º 26’
34.02” O, 16-V-2014, en matorral submontano, col. Evelyn Rios
Cruz. En Hechtia sp. (Bromeliaceae).
La distribución conocida para esta especie en México es hacia
la vertiente del Golfo: Chiapas, Guerrero, Tabasco, Veracruz
(Rojas, 1996; Philpott, 2005; Vásquez-Bolaños, 2011; González
et al., 2013) y Tamaulipas (primer registro), con un gradiente
altitudinal que va desde los 0 hasta los 1,000 msnm. La vegetación
es desde matorral submontano, bosque tropical perenifolio,
bosque mesófilo de montaña hasta cafetales con diferente grado
de manejo. Ésta especie, debido a su abundancia o asociación a
agroecosistemas, puede ser utilizada como indicador de ambientes
alterados.
Respecto a la actualización de las especies de Formicidae en
el estado de Tamaulipas, posterior a la lista de Coronado-Blanco
et al. (2013) existen nuevos registros (Rosas-Mejía et al., 2013;
Escalante-Jiménez y Vásquez-Bolaños, 2014; Guzmán-Díaz, 2014;
Rodríguez-de León et al., 2014), para un total de 178 especies de
Formicidae para Tamaulipas, incluyendo 15 de Camponotus (ver
Cuadro 1). Además, la especie Pachycondyla villosa (Fabricius)
fue transferida al género Neoponera en 2014 (Ruíz-Cancino et al.,
2015) y la especie Pseudomyrmex gracilis (Fabricius) se registra
para 15 municipios, incluyendo el reporte por primera vez para 13
municipios (Coronado-Blanco et al., 2015).
Con el presente trabajo, se incrementa a 179 el número de especies
de hormigas, y se llega a 16 especies de Camponotus para el
Estado. Esta cifra seguramente aumentará conforme se revise
mayor cantidad de especímenes de las colecciones del país y el
extranjero y se realice un mayor número de colectas en diferentes
hábitats y con diferentes técnicas de muestreo.
LITERATURA CITADA
Coronado-Blanco, J. M., D. A. Dubovikoff, E. Ruíz-Cancino, M.
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Aceptado: 12 de marzo 2015
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Cuadro 1. Adenda a Formicidae de Tamaulipas*.
No.
Especie
Fuente
1
2
3
4
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22
23
Brachymyrmex admotus Mayr
Brachymyrmex minutus Forel
Brachymyrmex obscurior Forel
Camponotus abditus Fore
Camponotus giganteus Mackay
Camponotus mina Forel
Camponotus mus Roger
Camponotus vicinus Mayr
Cephalotes bimaculatus (Smith)
Cephalotes maculatus (Smith)
Crematogaster curvispinosa Mayr
Crematogaster jardinero Longino
Crematogaster opaca Mayr
Leptothorax obturator Wheeler
Leptothorax furunculus Wheeler
Leptothorax rugulatus Wheeler
Nylanderia flavipes (Smith)
Nylanderia trageri Kallal y LaPolla
Pheidole euryscopa Wilson
Pheidole psilogaster Wilson
Rogeria alzatei Kugler
Solenopsis brevicornis Emery
Smithistruma clypeata Smith
Rosas-Mejía et al., 2013
Guzmán-Díaz, 2014
Guzmán-Díaz, 2014
Guzmán-Díaz, 2014
Rodríguez-de León et al., 2014
Guzmán-Díaz, 2014
Rodríguez-de León et al., 2014
Escalante-Jiménez y Vásquez-Bolaños, 2014
Escalante-Jiménez y Vásquez-Bolaños, 2014
Guzmán-Díaz, 2014
Guzmán-Díaz, 2014
Guzmán-Díaz, 2014
Guzmán-Díaz, 2014
Guzmán-Díaz, 2014
Guzmán-Díaz, 2014
Guzmán-Díaz, 2014
Guzmán-Díaz, 2014
Guzmán-Díaz, 2014
Guzmán-Díaz, 2014
Guzmán-Díaz, 2014
* Basado en Coronado-Blanco et al., 2013: 155 especies, incluyendo 10 de Camponotus.
64
Cástnidos depositados en la Colección Entomológica de la Facultad de Ciencias Agronómicas (UN.A.CH.), Villaflores,
Chiapas (Lepidoptera: Castniidae)
Castnids from the Colección Entomológica, Facultad de Ciencias Agronómicas (UN.A.CH.), Villaflores, Chiapas
(Lepidoptera: Castniidae)
Carlos J. Morales-Morales, Francisco Guevara-Hernández, Julio C. Gómez-Castañeda, Jorge A. Espinosa-Moreno y Antonio
Gutiérrez-Martínez
Colección Entomológica de la Facultad de Ciencias Agronómicas, Campus V, Universidad Autónoma de Chiapas, Apdo. Postal 84, Carret. Villaflores-Ocozocoautla Km. 7.5, 30470
En los 80´S se empezó a formar la Colección Entomológica
de la Facultad de Ciencias Agronómicas, Campus V, de la
Universidad Autónoma de Chiapas, destacando, en este tiempo,
la participación del Biol. Rubén Iruegas Buentello en el trabajo de
determinación taxonómica de varios ejemplares de lepidópteros,
así como la participación de los alumnos en la incorporación de
diversas series de especímenes de algunos municipios del estado.
La colección de Lepidoptera es la que más se ha incrementado
por estudiantes de diversas generaciones de la carrera de Agronomía
como parte de sus actividades. Los insectos colectados han sido
depositados en gavetas entomológicas, montados en alfileres
entomológicos o en alfileres de uso común. La determinación
taxonómica de los ejemplares se ha llevado a cabo por diversos
investigadores de varias instituciones entre los que se encuentran
Adolfo Ibarra Vazquez (Instituto de Biología de la UNAM),
Feranando Hernández Baz (Facultad de Biologia, Universidad
Veracruzana) y Carlos R. Beutelspacher Baigts, además de
consultar literatura sobre el tema. En este sentido, en el presente
trabajo se reportan algunas de las especies de la familia Castniidae
de dicha colección.
MATERIAL EXAMINADO
Athis delecta (Schaus)
(Fig. 1)
Distribución conocida: esta especie es poco abundante aunque
su distribución se menciona desde México (Guerrero, Querétaro,
Tamaulipas y Veracruz), y Guatemala hasta Costa Rica (Lamas,
1995; González y Hernández-Baz, 2012; Niño Maldonado et al.,
2013).
Material examinado: México: Chiapas: Ocozocoautla: El
Aguacero: 20-junio-1992, M. G. López Vásquez. Se amplía su
rango de distribución en México y representa el primer registro
para el estado de Chiapas (1 espécimen).
Athis inca orizabensis (Strand)
(Fig. 2)
Distribución conocida: en México ha sido citada por diversos
autores para los estados de Puebla, Querétaro, Tamaulipas y
Veracruz (Miller, 1972; González et al., 2008; Niño Maldonado et
al., 2013).
Material examinado: México: Chiapas: Ocozocoautla: El
Chorrón: 6-agosto-1992, J. L. Rincón Morales; Ocuilapa: (2)
4-julio-1996; 22-agosto-1997, C. J. Morales (4 especímenes).
Se amplía el área de distribución para México y es citado
por primera vez para Chiapas. Estos ejemplares se determinaron
consultando las figuras que aparecen en los trabajos de Miller
(1972) y González et al. (2008).
Castniomera atymnius futilis (Walker)
(Fig. 3)
Distribución conocida: para México sólo se le ha citado
para Veracruz y Chiapas (Tapachula y Ocosingo); además de
Guatemala, Honduras y Nicaragua (Tindale, 1985; Lamas, 1995;
IBUNAM, 2007; González et al., 2010; González y HernándezBaz. 2012; Miller et al., 2012).
Material examinado: México: Chiapas, Cintalapa: La Pilar:
(2) 11-agosto-2001, C. MoralesLeón. Ocozocoautla: Laguna
Bélgica: 23-agosto-1991; Ocuilapa: (4) 22-agosto-1997, C. J.
Morales, (7 especímenes). Con estos datos se amplian su área de
distribución en Chiapas.
Divana diva diva (Butler) (Fig. 4)
Distribución conocida: esta especie ha sido recolectada en
México en los estados de Veracruz y Chiapas (Ocozocoautla,
Rio Negro, La Independencia), además de Guatemala, Honduras,
Centroamérica, Colombia y Ecuador (Lamas, 1995; Miller, 1976,
1995; Miller et al., 2012; IBUNAM, 2007; Vinciguerra, 2010;
González y Hernández-Baz. 2012). En el material examinado
de D. diva diva por Vinciguerra (2010) aparece Messico, Rio
Negro, Nocozo Cuantla; los autores suponemos que quiso decir
Ocozocoautla, además Rio Negro se encuentra en el municipio de
Cintalapa, Chiapas, México.
Material examinado: México: Chiapas: Villaflores: Cerro
Nambiyigua, 23-septiembre, 2014 I. N. Solís Brindis, (1
espécimen). Con estos datos se amplía su área de distribución en
Chiapas.
AGRADECIMIENTOS
Agradecemos a Adolfo Ibarra Vázquez del Departamento
de Zoología, Instituto de Biología de la Universidad Nacional
Autónoma de México, quien amablemente nos apoyó en la
identificación de los ejemplares de la Familia Castniidae.
LITERATURA CITADA
González, J. M., F. Hernández-Baz & R. Vinciguerra. 2008. Notes
on some Athis inca ssp. collected in México (Lepidoptera:
Castniidae). SHILAP Revista de Lepidopterologia, 36 (144):
473-476.
Dugesiana
González, J. M., J. H. Boone, G. M. Brilmyer & D. Le. 2010.
The Giant Butterfly-moths of the Field Museum of Natural
History, Chicago, with notes on the Herman Strecker
collection (Lepidoptera: Castniidae). SHILAP Revista de
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González, J. M. y F. Hernández-Baz. 2012. Polillas y taladradores
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Biológicas. 2007-12-10. Universidad Nacional Autónoma de
México. Consultada en: 2015-2-8. Disponible en: http://unibio.
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Instituto de Biología. “Castniomera atymnius futilis (Walker,
1856) - IBUNAM: CNIN: LE6439”. UNIBIO: Colecciones
Biológicas. 2007-12-10. Universidad Nacional Autónoma de
México. Consultada en: 2015-2-8. Disponible en: http://unibio.
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Instituto de Biología. “Divana diva (Butler, 1870) - IBUNAM:
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en: 2015-2-8. Disponible en: <http://unibio.unam.mx/
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1
2
3
4
Figuras 1-4. 1. Athis delecta Schaus. 2. Castnia inca orizabensis Strand. 3. Castniomera atymnius futilis (Walker). 4. Divana diva diva
(Butler).
66
NORMAS EDITORIALES
D��
UGESIANA surge con la finalidad de difundir los estudios entomoló�
��
gicos generados en diferentes instituciones tanto nacionales como del ex�
tranjero. Está dirigida a cualquier persona interesada en el área. Se acep�
tan contribuciones relacionadas con Arachnida, Diplopoda, Pauropoda,
Symphila, Chilopoda e Insecta (sensu lato).
Los trabajos recibidos para su publicación son sometidos a arbitraje por dos especialistas, por ello es importante que para la elaboración del manuscrito considere lo siguiente:
1. El manuscrito en word debe presentarse a doble espacio, sin anotacio�
nes entre líneas, con márgenes de 2.5 cm en cada lado, numerando todas las páginas en forma consecutiva. Todos los párrafos deben iniciar con sangría de 0.5 cm. IMPORTANTE: eliminar el formato que por definición incorpora word al manuscrito. Debe estar escrito en letra times new roman a 12 puntos. Los nombres científicos, título de libro, título de
tesis y revistas, deben escribirse en cursivas. 2. La primera página debe incluir el título en la parte superior escrito en mayúsculas. Dos espacios abajo y al centro de la hoja, el nombre comple�
to del (los) autor (es) escrito con mayúsculas y minúsculas, seguido de su (s) dirección (es) adecuadamente relacionada con asteriscos. Los créditos a proyectos, programas, becas u otros datos pertinentes al trabajo o al (los) autor (es) deben incorporarse en la sección de agradecimientos.
3. Las figuras, cuadros (no tablas), mapas o fotografías serán presentadas por separado del texto, así como de sus pies de ilustración o encabezados.
4. El texto de un artículo de investigación deberá incluir los siguientes puntos escritos con mayúsculas: resumen, abstract (inglés), introducción,
material y métodos, resultados, discusión, conclusiones, agradecimientos y literatura citada. Se aceptan artículos en español, inglés y portugués.
5. La literatura citada debe incluirse en orden alfabético, sin numeración y
cuando se mencionen varios artículos del mismo autor, éstos se presenta�
rán en orden alfabético y cronológico. Cada una de las referencias incluirá
los datos en el orden siguiente:
Libros:
Morón, M.A., B.C. Rattclife y C. Deloya. 1997. Atlas de escarabajos de
México: Coleoptera: Lamellicornia, Vol. I Familia Melolonthidae. CO�
NABIO-SME, México. Observe que no se incluye el número de páginas totales.
Artículos:
Flint, O.S. Jr. 1965. The genus Neohermes (Megaloptera: Corydalidae).
Psyche, 72: 255-263. El nombre de la revista debe escribirse completo.
Tesis:
Contreras-Ramos, A. 1990. The inmature stages of Platyneuromus
(Corydalidae) with a key to the genera of larval Megaloptera of Mexico.
M. Sc. Thesis, University of Alabama, Tuscaloosa.
Capítulos de libro:
Edmunds, G.F. & D. Waltz. 1995. Ephemeroptera. (pp. 126-163). In: Me�
rritt, R.W. & K.W. Cummins (Eds.). An Introduction to the Acuatic Insects
of North America. Kendall-Hunt, Dubuque. Utilizar & para cualquier
idioma.
RECUERDE: NO DEBE DAR FORMATO ESPECIAL A LA LITERATURA (sangrías, justificación, entre otros).
Para el caso particular de Folia Entomológica Mexicana, Acta Zoológica Mexicana y en general para aquellas publicaciones que indican sólo el número (excluyendo el volumen), coloque el número de la revista entre paréntesis como se menciona en el siguiente ejemplo:
Huerta, C. y G. Halffter. 2000. Factores involucrados en el comporta�
miento subsocial de Copris (Coleoptera: Scarabaeidae: Scarabaeinae).
Folia Entomológica Mexicana, (108): 95-120.
6. Los encabezados del texto de un ensayo quedan a juicio del autor pero deberán incluir: resumen, abstract (inglés), introducción, discusión, con�
clusiones y/o sugerencias, agradecimientos y literatura citada.
7. Las ilustraciones se presentarán en un formato TIFF o JPG como ar�
chivos independientes. La resolución de las figuras debe ser de al menos 300 dpi. En caso de existir varias figuras, es indispensable organizarlas en láminas. Se pueden enviar imágenes a color.
8. En las contribuciones para las secciones taxonomía y técnicas de estu�
dio, los encabezados quedan a juicio del autor (es), pero es recomendable que estén acompañadas de ilustraciones. En estas secciones se incluyen aquellos trabajos de tipo catálogo, inventarios, descripción o redescrip�
ción de especies, claves, etc. Los manuscritos sobre grupos particulares (ejemplo, Odonata, Coleoptera, entre otros) deben mencionar aspectos sobre la biología del grupo, técnicas de estudio (en campo y gabinete), así
como claves dicotómicas, mínimo para nivel familia. Se recomienda la inclusión de figuras en las claves, mismas que deben organizarse en lámi�
nas. Los trabajos deben ser originales y enfocarse principalmente a Méxi�
co o la región neotropical. Para los trabajos de taxonomia deben tomarse en cuenta las consideraciones del Código Internacional de Nomenclatura Zoológica cuarta edición (1999).
9. Los trabajos para la sección entomofauna de México deben contener información biológica sobre una especie particular que es nativa o que su distribución abarca alguno de los estados de la República Mexicana. El título del trabajo debe ser el nombre científico de la especie en cuestión.
Se debe incluir el autor y año de descripción. En el siguiente renglón mencionar los nombres comunes (si existen). Abajo y centrado escribir con mayúsculas el nombre de al menos dos categorías taxonómicas que permitan ubicarlo fácilmente. Separar cada categoría con dos puntos.
Dos renglones abajo incluir la información de la especie. Es indispensa�
ble incluir un dibujo o fotografía de buena calidad. Enviar la ilustración en formato TIFF o JPG. El objetivo de este trabajo es dar a conocer informa�
ción sobre la especie en cuestión. El contenido del trabajo debe contener información original.
Ejemplo:
Megasoma elephas elephas Fabricius, 1775
“Escarabajo elefante”, “ronrón”
COLEOPTERA: MELOLONTHIDAE 10. Los nombres científicos que se incluyan en el texto deben escribirse con cursivas y la primera vez que se citen deben ir seguidos del autor(es)
que describió (eron) la especie, así como el año (separado por una coma),
incluso en el resumen y abstract.
11. Las reseñas bibliográficas deben iniciar con la referencia de la obra que se comenta. El texto debe iniciar con una breve descripción física de la obra y terminar con las indicaciones para la adquisición y costo de la misma. Al final del texto y hacia la izquierda poner el nombre del autor,
seguido de la dirección.
Dugesiana
12. No existen sobretiros impresos, sólo digitales, mismos que se pueden descargar desde la página de la revista: dugesiana.cucba.udg.mx.
13. Las notas científicas sólo llevan encabezados en agradecimientos y
literatura citada. Se deben organizar siguiendo la estructura de un artículo.
Cualquier situación no considerada en estas normas ponerse en contacto con el editor para mayores detalles.
68
CUOTAS DE SUSCRIPCIÓN Nacional: $200.00 (Dos Cientos pesos 00/100 M.N.). Extranjero: Nor�
teamérica, 20.00 dólares. Fuera de Norteamérica, 30.00 dólares. Incluye envío.
Editor: Dr. José Luis Navarrete-Heredia, Centro de Estudios en Zoo�
logía, Universidad de Guadalajara, Apdo. Postal 134, 45100, Zapopan,
Jalisco; [email protected], [email protected].

Dugesiana, Año 22, No. 1, Enero-Junio 2015, es una publicación

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