Propagacion de material libre de patógenos

Transcripción

Producción de material
propagativo libre de
patógenos
en ornamentales
Dra. Martha Lidya Salgado Siclán
Facultad de Ciencias Agrícolas
Universidad Autónoma del Estado de México
 En México, la producción de
plantas ornamentales reviste una
gran importancia cultural, socioeconómica y ambiental.
 En nuestro país se aprovechan
más de 1,000 especies y
variedades, de ornamentales
ocupando una superficie de
alrededor de 20,000 hectáreas,
distribuidas en 20 estados de la
república y generando 150,000
empleos directos.
 Actualmente,
90%
de
la
producción
ornamental
está
destinada
a
satisfacer
el
mercado local y se dirige
principalmente a la ciudad de
México,
Guadalajara
y
Monterrey.
 Así, sólo 10% de la producción se
exporta como flor de corte y
esquejes.
La gran demanda del mercado interior de nuestro país hace
poco atractiva la idea de buscar con mayor empeño el
mercado de exportación
Introducción
La
propagación
de
plantas es importante en
la producción de flores y
follajes de corte, puesto
que de la calidad de
semilla utilizada (sexual o
vegetativa) dependerá la
calidad del producto final
así como la sanidad y
productividad del cultivo
 La
propagación
de
muchas
especies ornamentales se realiza
mediante la manipulación de
plantas madres seleccionadas que
poseen características deseables o
que
han
sido
mejoradas
genéticamente y de las cuales se
obtiene semilla vegetatitiva (bulbos,
rizomas,
hijuelos,
plantas
in
vitro) con características especiales
como:
 resistencia a enfermedades
 mayor rendimiento
 mayor calidad
 menor variabilidad genética.
 Sin
embargo,
muchas
especies de ornamentales se
propagan a partir de semilla
sexual híbrida. En éste caso,
ésta debe ser adquirida a
casas
comerciales
especializadas
para
garantizar las características
deseadas de calidad y
sanidad.
 Entre
las
alternativas
para
incrementar el mercado de
exportación se encuentra el
mejoramiento en la calidad de la
flor en rosa, gerbera, clavel y
crisantemo,
así
como
la
producción de especies exóticas
y tropicales, tomando gran
importancia la producción de
follajes verdes y deshidratados.
 Es importante considerar las
tendencias y novedades, calidad,
así como los procesos de
producción más amigables con el
medio ambiente.
Patógenos presentes en ornamentales
Virus
AMV
Hospedante
Ssíntomas
Asclepia,pelargonium, petunia,
kalanchoe, primula
Jaspeado anillos cloróticos, deformación
foliar, amarillamiento enanismo
Freesia, gladiolo, petunia
Enchinamiento foliar, mosaico, variegado
BBWV
Begonia, petunia, zinnia
Moteado, manchas anulares
CMC
(Cucumber Mosaic Virus)
Anémona, begonia, caléndula,
crisantemo, gerbera, dalia, Lily,
pelrgonium, lisiantus
Variegado, manchas anulares, enanismo,
deformación foliar, mosaico, ancha anular
necrótica, mancha anular clorótica.
HCRSV
Hibicus
Manchas cloróticas cercanas a la
nervadura principal.
PnMV
Nochebuena
Mosaico ligero
PZSV
pelargonium
Mancha clorótica concéntrica
TSWV
Alstromeria, begonia, ciclamen,
dalia, crisantemo, belén, petunia
ranunculus
(Alfalfa Mosaic Virus)
BYMV
(Bean Yelow
(Mosaic Potyvirus)
(Broad Bean Wilt Fabavirus)
(Hibicus Chlorotic ringsspot
Carmovirus)
(Pelargonium flowerbreak
Carmovirus)
(Pelargonium Zonate Spot
Ourmiavirus)
(Tomato Spotted Wilt Tospovirus)
Síntomas de origen viral en
ornamentales
INSV-coleus
INSV-begonia
INSV -Impatien
PnMV-nochebuena
CMV-petunia
TSWV-crisantemo
Tipos de propagación asexual
 Esquejes
 Bulbos
 Rhizomas
 Hijuelos
 Cultivo de tejidos
Propagación por rizomas o bulbos
 Especies como Zingiberales y
Zantedeschia
aethiópica
se
reproducen por rizomas.

Los rizomas
son plantados
directamente en campo o en
almácigos.
Propagación por bulbos/cormos
 Lillium spp se reproducen por
bulbos.
 La siembra de bulbos siempre
se realiza de forma directa a
las camas de siembra.
Narcizo
Propagación por rizomas o bulbos
 Especies del orden Zingiberales y Araceae se reproducen
naturalmente por rizomas.
 Por ello es necesario realizar la practica de deshije a fin de
mantener una densidad de siembra apropiada.
 Los hijuelos son utilizados como semilla para siembras
nuevas.
 La herramienta debe estar limpia , afilada y desinfectada a fin
de que el corte sea limpio y se evite la entrada de patógenos
que puedan causar la muerte de la planta madre.
 Al terminar el deshije de una planta se debe desinfectar la
herramienta antes de proceder a realizar la labor en otra, ya
que patógenos como bacterias y virus se propagan por medio
de herramienta infectada.
 Para la desinfección se utiliza Hipoclorito de sodio al 20%,
Agrodyne al 5% o Timsem 2 gramos por litro de agua,
asperjado sobre la herramienta.
Propagación por esquejes
 Especies como clavel y crisantemo, aunque pueden ser
reproducidas por semilla, a nivel de cultivo comercial se
reproducen por esqueje a fin de evitar la variabilidad genética.
 Las plantas madre libres de virus no se destinan a la producción
de flor si no a la obtención de material de propagación por lo
que se mantienen en invernaderos aislados, libres de infecciones
y pulgones (transmisores de virus).
 Los esquejes de plantas madres jóvenes enraízan más
rápidamente y tienen mejor desarrollo que los procedentes de
plantas viejas, en clavel el tiempo es máximo de 15 meses.
 Solamente se utilizan para propagación aquellos esquejes
totalmente sanos.
Propagación por enraizamiento de esquejes
 los esquejes recién cosechados deben ser
llevados a los bancos de enraizamiento para
evitar la deshidratación.
 El enraizamiento se debe realizarse en
invernadero bajo un sistema de nebulización
intermitente con humedad relativa del 100%
hasta que hayan emitido raíces.
 El sustrato utilizado debe ser inerte, poroso y
estar libre de patógenos como arena, grava ,
piedra pómez pulverizada o minerales como
perlita y vermiculita.
 Para acelerar el enraizamiento de los esquejes
se aplicación de ácido naftalenacético (ANA)
bien sea por inmersión de los esquejes en una
solución con hormona o aplicando
directamente la hormona en polvo en la base
de la estaca.
crisantemo
Injerto de rosal
 Multiplicar un Rosal por injerto consiste
sencillamente en tomar una yema de una variedad
e injertarla sobre un rosal silvestre que actúa como
patrón o portainjerto (ejs. de patrones son la Rosa
canina,la Rosa englantería o el híbrido 'Manetti').
 De esta yema que injertemos saldrá un brote que
dará lugar a la copa (ramas, hojas y flores).
 En el campo se tienen largas lineas plantados de
patrones a los que se injertá la variedad que se
quiera.
Esquejes de ornamentales
Esquejes leñosos
Esquejes de hoja
Saintpaulia, Peperomia, Afelandra.
Esquejes semi leñosos
Propagación de tulipan
 Desinfección del bulbo
Se sumerge el bulbo en una solución de thiabendazol 2 gr / lt de agua
durante 10 min. Para acelerar la brotación y emergencia de la planta,
agregar 200 ppm de ácido giberélico.
Propagación del gladiolo
 DESINFECCIÓN DE BULBOS:
 Mediante la inmersión de los bulbos en una
solución preparada a base de Tecto-60 o
Bavistin o Cercobin o Amistar, en dosis de 5 gr/lt
de agua durante un periodo de 10 minutos
Propagación de lisiantus
 El lisianthus es una planta originaria de la zona meridional de los
Estados Unidos y norte de México. Pertenece a la familia de las
Gencianáceas, su nombre científico es Eustoma grandiflorum.
 Su reproducción se realiza normalmente por semilla aunque
también se puede hacer por esqueje o por cultivo in vitro de
tejidos
Propagación de Nochebuena
 La Nochebuena se propaga por esquejes suaves
tomados de la planta madre, la propagación con
semilla, la utilizan los mejoradores para el
cruzamiento y obtención de nuevas variedades.
 Los esquejes de poinsettias son susceptibles a
muchas enfermedades como Botrytis, Erwinia,
Rhizoctonia, mosquita negra (mosquita de los
hongos).
Torres s/f
Propagación de Alcatraz (Zantedetechia spp)
 Por semilla
 Por división de bulbo
 Separación de hijuelos
 Cultivo in vitro
Hernandez,2013)
Propagación de Alstroemeria spp
 Los cultivares de Alstroemeria se propagan sólo vegetativamente, por
división de rizomas.
 Normalmente deben ser removidas y divididas cada tercer o cuarto año,
dependiendo del cultivar y de las características del crecimiento.
 Previo a la desinfección, la zona de corte de los
explantes fue asperjada con una solución que
contenía dos fungicidas (Bentale®-Captan®, 2g l1);
 Su desinfección se inició con un lavado y un
cepillado para remover los catafilos, y se les
sumergió en una solución de hipoclorito de sodio
(NaOCl) al 2,5% por 30 min,
 Se llevaron a cabo tres enjuagues en agua
destilada estéril, lo que corresponde a una
modificación del método de desinfección de
brotes florales inmaduros utilizado por Olate et al.
(2009) en Alstroemeria lutea y Alstroemeria
pseudospathulata.
Letelier, 2012
 Previo a la desinfección, la zona de corte de los explantes fue
asperjada con una solución que contenía dos fungicidas
(Bentale®-Captan®, 2g l-1); su desinfección se inició con un
lavado y un cepillado para remover los catafilos, y se les
sumergió en una solución de hipoclorito de sodio (NaOCl) al
2,5% por 30 min, se llevaron a cabo tres enjuagues en agua
destilada estéril, lo que corresponde a una modificación del
método de desinfección de brotes florales inmaduros utilizado
por Olate et al. (2009) en Alstroemeria lutea y Alstroemeria
pseudospathulata.
Micropropagación de Heliconia
standleyi
 Se aplicó un protocolo que permitió la micropropagación de la especie ornamental
Heliconia standleyi Macbride.

Se estudiaron variantes de desinfección, medios de cultivo y manejo de explantes
durante las diferentes etapas del proceso y finalmente su aclimatación.
 Durante la fase de establecimiento in vitro de la especie, se logró una desinfección
óptima con hipoclorito de sodio (NaOCl) al 2%, durante 20 min en medio liquido, y los
mejores resultados durante la multiplicación se lograron con el medio suplementado con
6–BAP (2.0 mg·litro–1), AIA (0.65 y 1.3 mg·litro–1) y cuando las vitroplantas tenían un
tamaño mayor de 1.0 cm en medio semisólido, mismas que alcanzan un coeficiente de
multiplicación de 4.6 explantes por ápice.
 Éstos llegan a enraizar adecuadamente con la adición de ácido indolacético (1.3
mg·litro–1) al medio y se aclimatan satisfactoriamente a los 45 días siempre que las
vitroplantas tengan entre 3 – 5 cm de altura.
 Sosa 2009
Micropropagación de gerbera
 La gerbera se puede propagar
por medio de semilla, división de
planta, esqueje o cultivo in vitro.
 Este último método de
propagación ofrece la
posibilidad de obtener plantas
homogéneas, en mayor
cantidad, libres de patógenos y
en cualquier época del año.
Olivera-Ortega 2000
Micropropagación de Gerbera
jamessonii
 Losresultados mostraron que con el empleo de Hipoclorito de Sodio al 0.5%
durante 10 minutos, se logró una alta desinfección de los ápices. Combinando
el 6 encilaminopurina (1.0 mg.l-1) y el ácido giberélico (0.1 mg.l-1) en el medio
de cultivo fue posible incrementar el número de brotes por explantes durante el
establecimiento. En la multiplicación los mejores resultados se obtuvieron con la
combinación de 6-BAP (2.0 mg.l-1) con AIA (0.65 y 1.3 mg.l-1), subcultivando los
explantes mayores de 1.0 cm individualmente y en medio de cultivo semisólido.
 Una influencia significativa sobre el número de raíces y el crecimiento de los
explantes se obtuvo adicionándole ácido indolacético al medio de cultivo de
enraizamiento y utilizando para el subcultivo explantes mayores de 3.0 cm.
 La calidad de los explantes influyó significativamente en la aclimatización,
demostrando que las plantas in vitro enraizadas deben tener más de 3.0 cm de
altura.
 Machado,2002
Virus en orquídeas
 Los virus reportados en
orquídea son virus mosaico
amarillo del frihol (BYMV),
Virus mosaico del cymbidium
(CymMV), viru de los puntos
anillados del odontoglossum
(ORSV) y el virus mosaico del
pepino (CMV)
NORMA Oficial Mexicana NOM-007-FITO-1995, Por la que se
establecen los requisitos fitosanitarios y especificaciones para la
importación de material vegetal propagativo
PAIS DE ORIGEN COLOMBIA
ORNAMENTALES
Ejemplo de exportación a otro pais
IMPORTACION DE MATERIAL
ORNAMENTAL A ECUADOR
PAIS
N.PRODUCTO
N.BOT
REQUISITO
FITOSANITARIO
MEX
Gypsophila
G. paniculata
•
•
•
•
CERTIFICADO
FITOSANITARIO
INTERNACIONA
L (CFI).
INSPECCION.
TRATAMIENTO.
TOMA DE
MUESTRA
DECALRACION
ADICIONAL
TRATAMIENTO
FUENTE
LIBRE DE:
Liriomyza
hudobrensis
TCS-33
Abamectin
a dosis 1 gr
de ia/100 L.
Deberá
especificar
el
tratamiento
Hoja de
requisito
no. 11625
SAGARPA
-MEXICO
5 OCT,
2009.
PROPAGACION POR CULTIVO DE TEJIDOS
Micropropagación in vitro
En fresco esteril
Aclimatación
Cámara de cultivo
Plántula enraizada
Propagación in vitro
La micropropagación
A partir de una planta madre, se
obtienen numerosos explantes que,
sujetos a condiciones y medios de
cultivo adecuados, darán lugar a
nuevas plantas iguales o similares a la
planta
original,
permitiendo
su
multiplicación.
Adaptado de “Biotecnología”, UNQ 2006
Micropropagación
 La micropropagación, constituye uno de
los
métodos
biotecnológicos
que
mayores logros ha aportado al desarrollo
de la agricultura.
 El número de especies hortícolas,
frutícolas, ornamentales y forestales que
se multiplican por algunas de las técnicas
del cultivo in vitro, es cada vez mayor, así
son más numerosas las empresas
comerciales que se dedican a la
producción de plantas por medio de esta
técnica (Razdan, 2003).
La propagación in vitro permite:
 La obtención de gran número de plantas
 Elimina infecciones causadas por virus
 Incorporar genes de resistencia a diferentes enfermedades.
Esta técnica se utiliza para propagar
plantas a partir de plantas madres por lo
que las plántulas obtenidas son idénticas
entre si a la planta madre (clones).
 Las técnicas de cultivo de tejidos permiten
solucionar el problema fitosanitario, ya que
favorecen la conservación de genotipos y
la regeneración de materiales vegetales
uniformes
y
libres
de
plagas
y
enfermedades.
 El cultivo de meristemos es un método
comúnmente utilizado para la propagación
clonal y para la erradicación de
patógenos, en especial, hongos y virus en
numerosas ornamentales
 Cultivos
como
el
crisantemo,
con
alta
susceptibilidad a las virosis y
enfermedades como la
roya
blanca
son
propagados in Vitro para
obtener plantas madre de
donde posteriormente se
obtendrán
los
esquejes
para cultivo.
Propagación in vitro

Cultivos como el crisantemo, con alta susceptibilidad a las virosis y enfermedades como la roya
blanca son propagados in Vitro para obtener plantas madre de donde posteriormente se
obtendrán los esquejes para cultivo.

Como material inicial para el cultivo de meristemos se deben utilizar vástagos jóvenes en
crecimiento de 10 - 15 cm de longitud, que acaben de desarrollarse sus hojas.

Los vástagos utilizados para sacar los explantes se deben limpiar previamente para lo cual se
retiran las hojas siempre que sea posible, y entonces los vástagos (o yemas, si no se han retirado
las hoja) se sumergen durante unos minutos en alcohol de 70 % para eliminar el aire que pueda
haber atrapado.

Después se realiza la esterilización en Ca (OCl)2 y finalmente se lava con agua estéril.

Se retiran las hojas, trabajando con la ayuda de un estereomicroscopio (aumento de 20 - 40 x) y
se repite el procedimiento de limpieza con tiempos de exposición más cortos o concentraciones
mas bajas de Ca (OCl)2.

se usa alcohol de 70 % (v/v) para la segunda esterilización, no haciéndose en este caso ningún
aclareo más. Se retiran entonces uno por uno los primordios foliares y hojas restantes, trabajando
con la ayuda del estereomicroscopio y bisturí y se obtienen los explantes, generalmente
pequeños cuadros de tejido que se siembran inmediatamente en el medio de cultivo.

Aunque en principio todos los meristemos de vástago de una planta son adecuados como
material inicial, en realidad, la posibilidad de éxito depende del tipo de yema o vástago (terminal
o axilar) y / o de la posición de la yema (basal o terminal).

Cada especie vegetal diferente, e incluso distintas variedades de una misma especie pueden
requerir un medio nutritivo diferente.

Los meristemos se aíslan sobre medio sólido, aunque en algunos casos se utilizan medios líquidos.
El pH por lo general se sitúa entre 5.4 y 6, siendo la sacarosa el azúcar habitual (2 - 5 % p/v).
Frecuentemente se utiliza vitaminas: Vitamina B1, piridoxina, ácido nicotínico, ácido pantoténico.
Los reguladores suelen utilizarse en bajas concentraciones (0.1 - 0.5 mg l -1); la auxina puede ser
necesaria para la formación de raíces, auxinas y citoquininas para estimular la división celular; el
GA3 se añade a veces para lograr la elongación del vástago
Planta de Clavel libre de virus por
cultivo de meristemos
Virus presentes en clavel:
 Virus Mosaico de las nervaciones del clavel (CaVM)
 Virus Jaspeado del Clavel ( CaERV)
 Virus del Moteado Necrótico del clavel (CaNFV)
 Virus Moteado del clavel (CarMV)
 La prueba ELISA detectó la presencia del virus moteado del clavel (CarMV) en esquejes
de 5 varieades de clavel.
 la concentración del virus se redujo utilizando el método combinado de termoterapia y
cultivo in vitro de meristemos
 Es de suma importancia establecer cultivos de clavel libres del virus CarMV, ya que la
calidad y cantidad de las flores se ve aumentada en compración del material infectado
con el virus
Afanador Pérez 2005
MICROPROPAGACION DE CLAVEL
DESINFECCION
DE APICES
ESTADIO II
PROLIFERACION
DISECCION
DE
MERISTEMOS
ESTADIO I
CULTIVO DE
MERISTEMOS EN
MEDIO SOLIDO
ESTADIO IV
ADAPTACION Y
TRANSFERENCIA A SUELO
Pérez S/F
ESTADIO III
ENRAIZAMIENTO DE PLANTAS
EN MS
MICROPROPAGACION DE AVE DE PARAISO
Pérez S/F
Propagación in vitro para obtención de planta sana
 Se pueden obtener también plantas libres de
hongos y de bacterias por el cultivo de meristemos.
 Los géneros importantes de bacterias que se
pueden eliminar son: Erwinia, Pseudomonas,
Xanthomonas y Bacillus.
 Los géneros mas importantes de hongos son:
Fusarium, Verticillium, Phythophthora y Rhizoctonia.
 Se puede utilizar un medio rico en nutrientes, en
algunas ocasiones conteniendo peptona, triptona y
extracto de levadura, para determinar de una
forma rápida si una planta esta libre o no de
bacterias y hongo
ventajas de la propagación in Vitro:
 Multiplicación masiva y rápida.
 Permite propagar especies que no pueden ser multiplicadas en forma
tradicional.
 Obtención de plantas con mayor vigor
 Obtención de planta libres de enfermedades.
 Homogeneidad del material.
 Debido a que se necesita una cantidad de material relativamente
pequeña para iniciar un cultivo in Vitro, se puede realizar una cuidadosa
selección del mismo.
 Ahorro de espacio con respecto de los sistemas tradicionales.
 Conservación del material genético.
 Fácil transporte e intercambio de material vegetal.
Desventajas de la propagación in Vitro:
 En algunos sistemas de propagación in vitro la estabilidad genética es
débil.
 Las plantas producidas in vitro pueden mostrar características poco
convenientes in vivo: Excesiva producción de ramas laterales y paso total
a la fase juvenil.
 La aclimatación (endurecimiento) de las plántulas al medio ambiente
exterior es un proceso difícil en el que se puede tener un porcentaje
elevado de pérdida de material.
 Variación de respuesta entre los genotipos.
 Alto costo de establecimiento de laboratorio, lo que incide indirectamente
en el precio final de la planta producida de esta manera.
Propagación in vitro de papa /Termoterapia
1
2
3
4
5
Eliminación de virus de plantas de papa
Producción de Plantas de Papa Libres de
Virus Usando Cultivo de Meristemo
 La disponibilidad de material inicial libre de patógenos es un
pre-requisito
para
cualquier
programa
de
micropropagación.
 Las plantas producidas por medio de cultivo de meristemos,
libres de patógenos, pueden mantenerse indefinidamente
por cultivo de tejidos, las cuales garantizan un constante flujo
de plantas libres de enfermedades.
 Para la confirmación y mantenimiento de la identidad
clonal, tal stock in vitro necesita, regularmente, estar sujeto a
pruebas, por lo menos una vez por un año.
 La micropropagación es un método de cultivo de tejidos (in
vitro) usado para una rápida multiplicación de plantas en
medios nutritivos artificiales bajo
 El ambiente controlado. El ambiente controlado y aséptico
del laboratorio de cultivo de tejidos proporciona las
condiciones óptimas para la multiplicación de plantas
Lab. Cultivo de Tejidos de FCA, UAEM
Diagnosticó/Indexación: ELISA
Ocampo, 2013
Diagnóstico/
Indexación:
PCR
Ocampo, 2013
Diagnóstico/ indexación: biológicos
Ocampo, 2013
Pruebas para producir planta libre de virus
(Indexación biológica, Serológica, Molecular)
ESTAPA
CLAVEL
PELARGONIUM
MATERIAL
INICIAL
Dos indexaciones por año:
Una indexación por año
- Prueba biológica
-Pruebas biológicas
_ C. quinoa/CarMV, CRSV, CVMV, CLV C. quinoa/Todos los virus
_ Silenearmeria/ ICNFV
- ELISA/ PFBV, PLPV
- Inspección visual
MATERIAL DE
PROPAGACION
(Mat. Prebase)
Una indexación por año:
- ELISA: CarMV
Indexación por sondeos
- ELISA: PFBV
MATERIAL
CERTIFICADO
Indexaciones periódicas:
- ELISA: CarMV
Indexación
- ELISA: PFBV
Albouy & Devergne, 2000
Producción in vitro de Dalia
Indexación
Multiplicación
Fragmantación de nudos
Cultivo de meristemos
Conservación
Recolección
Cultivo en campo
Indexación
Aclimatación
Producción de
material vegetal
libre de
patógenos
Plantas “candidatas”
Controles virológicos
Planta infectada
Planta sana
Material Inicial (S0)
Micropropagacion
In vitro
Planta sana
Material de propagación (S1, S2, Sn)
Lote sano
Planta madre certificada (Sn)
(Material de base)
Lotes conformes
Material Certificado Comercializado
(bulbos, esquejes, injertos)
Callogénesis
 Se puede definir el callo en cultivo de
tejidos como un tejido obtenido por
medio del aislamiento de órganos o
tejidos diferenciados, los cuales
posteriormente son llevados a una
desdiferenciación
celular,
presentando estas células una
proliferación continua, acelerada y
de apariencia desorga-nizada, que
da origen a una masa amorfa de
tejido.
Inducción
Callogénesis
Envejecimiento
Proliferación Diferenciación
Cultivo de meristemos
A partir de un meristemo aislado, se puede obtener una planta completa.
Adaptado de “Biotecnología”, UNQ 2006
Antivirales en propagación in vitro
 La producción de plantas libres de virus a partir de plantas madre
infectadas también se puede mejorar aplicando químicos que inhiben
o interfieren con la replicación o el movimiento del virus. Estos químicos
antivirales, generalmente, se incorporan en los medios de cultivo de
meristemos.
 Se ha probado una variedad de compuestos naturales o sintéticos por
su potencial en la eliminación de DNA y ARN de virus de plantas.
 La guanosina análoga de ribavirina (Virazole, 1-D-ribofuranosyl-1,2,4triazole-3-carboxamide),
el
uracilo
análogo
del
DHT
(5dihydroazauracil) y el DHT derivado, diacetyl-5-dihydroazauracil (DADHT) son las tres substancias que han demostrado ser particularmente
eficaces inhibiendo diferentes virus de plantas (Hansen 1988).
 Cassells (1987) observó que la quimioterapia in vitro de explantes
meristemáticos con el químico antiviral ribavirina fue el más
prometedor
para
la
eliminación
de
virus
en
papa.
CORRIENTE ELECTRICA EN CONTROLDE VIRUS EN PROPAGACION
 El uso de la corriente eléctrica en el saneamiento de enfermedades virales en diversas
especies vegetales. Sin embargo, no existe hasta la fecha, un conocimiento profundo de
los fenómenos biofísicos que intervienen en este proceso.
 El Instituto de Investigaciones en Viandas Tropicales establecio programas de
saneamiento de material vegetal que utilizan la corriente eléctrica directa con buenos
resultados.
 Con el uso de la metodología de saneamiento a enfermedades virales del grupo de los
Potivirus en ñame (Dioscorea spp.), 15 volts durante cinco minutos, en 25 segmentos
nodales del genotipo Pacala Duclos¨ (D. alata) se midió la corriente eléctrica individual en
cada explante, para determinar la relación entre los valores de absorvancia (VA),
obtenidos como salida del ensayo micro-ELISA y las potencia eléctrica (P) aplicada en
cada caso.
 Los resultados obtenidos demuestran la existencia de una relación hiperbólica VA=f(1/P)
demostrándose que el efecto de saneamiento es consecuencia del aumento de la
temperatura a que son sometidas las partículas virales en el interior del tejido vegetal.
CONTAMINACION MICROBIOLOGICA
CONTAMINANTE
MAT
T.PROPAGACIO
PROPAGACION N
FUENTE
B.subtilis
Banana
micropropagación Carranza, et
Pseudomonas picketti, Klebsiella planticola, B. subtilis,
Streptococcus intermedius, Pediococcus sp. Y Streptomyces sp.
Aspergillus niger, A. oryzae, Chaenophora cucurbitarum,
Trichoderma viride, Mucor mucedo, Monilia sitophila, Penicillium
spp., Colletotrichum gloesporioides, Botrytis cinerea, Chaetopsis
griseus y Cladosporium cladosporiodes
Musa spp.
Fase
multiplicación
Carranza et
al.,2006
E.herbicola
Gypsophila
Propagacion en
suelo
Noreña,2002
Rhizoctoniz solani
Pythium sp.
Gyspsophila
enraizamiento
Garces,2014
al., 2006
Cultivo de Meristemo en un Programa de
certificación
certificación
certificación
Certificación de empresas propagadoras.
Plántulas, esquejes, bulbos, estacas,
material injertado.
Bancos de Germoplasma de ornamentales
in vitro
 Son sitios para la conservación de los recursos genéticos en condiciones
controladas de laboratorio y que involucran diversas técnicas de cultivo y
almacenamiento in vitro.
 Se busca maximizar la diversidad de ejemplares recolectados de
poblaciones en campo o en su centro de origen.
 La unidad de colección que se mantiene en condiciones controladas
puede ser la semilla botánica o explantes vegetativos, dependiendo
principalmente del hábito de crecimiento de la especie.
Conclusiones
 Establecer programas de certificación de material propagativo
 Aumentar el numero de empresas de propagación certificada
 Mas apoyo en el diagnostico con técnicas moleculares en material
propagativo
 Capacitación en el manejo de material propagativo
 Establecer control regional en toda la cadena productiva
 Cultura de prevención y certificación
Con todo lo señalado, se espera hacer de la
horticultura ornamental del siglo XXI sea una
actividad altamente productiva, eficiente y de
alta calidad fitosanitaria.

Propagacion de material libre de patógenos

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