Dopamina.. síntesis, liberación y receptores en el Sistema Nervioso
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Dopamina.. síntesis, liberación y receptores en el Sistema Nervioso
39 RevB;omed2000,.11:39-60. Dopamina..síntesis,liberacióny receptores en el Sistema Nervioso Central. Ricardo Bahena- Trujillol, Revisión Gonzalo Flores2, José A. Arias-Montañol ¡Departamento de Fisiología, Biofisica y Neurociencias, Centro de Investigación y de Estudios Avanzados (CINVESTAV), México, D.F., México. 2Instituto de Fisiología, Benemérita Universidad Autonóma de Puebla, Puebla, Puebla, México. Abreviaturas utilizadas: DAG, diacilglicerol; IP 3' 1,4,5-trifosfato de inositol; PIP 2' 4,5-difosfato de fosfatidilinositol; KDa, kilodaltones; MPP+, ion l-metil-4fenilpiridinio; MPTP, l-metil-4-fenil-l,2,3,6-tetrahidropiridina; PKA, cinasa de proteína dependiente de AMPc; PKC, cinasa de proteína dependiente de Caz+ /fosfolípidos/DAG; PLC, fosfolipasa C; SNC, Sistema Nervioso Central; TH, tirosina hidroxilasa. NMDA, N-metilD-aspartato; GABA, ácido y-aminobitírico; L-DOPA, L-3,4dihidroxifenilalanina; AMPc, monofosfato ciclico de adenosina; CaMK, cinasa dependiente de Caz+y de calmodulina; BH., tetrahidrobiopterina; Km, constante de Michaelis Menten; K" constante de inhibición; NSF, N-etilmaleimida; MAO, monoaminoxidasa; ATp, trifosfato de adenosina; DOPAC, ácido dihidroxifenilacético; HVA, ácido homovanílico; COMT, catecol-O-metiltransferasa; RNAm, RNA mensajero. RESUMEN. La dopaminaes el neurotransmisorcatecolaminérgicomásimportantedel SistemaNervioso Central(SNC) de los mamíferosy participaen la regulaciónde diversasfuncionescomo la conducta motora, la emotividady la afectividadasí como en la comunicación neuroendócrina.La dopaminase sintetiza a partir del aminoácidoLtirosina y existen mecanismosque regulan de maneramuy precisasu síntesisy liberación.Las técnicasde clonaciónmolecularhan permitidola identificación de 5 tipos de receptoresdopaminérgicos,todos ellos acopladosa proteínasG y divididosen dosfamiliasfarmacológicasdenominadasDI y D2' Los receptoresde la familia DI (subtipos DI y Ds) están acopladosa proteínas Gsy estimulanla formaciónde AMPc comoprincipal mecanismode transducciónde señales,Los subtipospertenecientesa la familia D2(D2, D3 Y DJ inhibenla formaciónde AMPc, activancanales de K+ y reducenla entradade iones de Ca2+a través de canalesdependientesdel voltaje, efectos mediadostambién por proteínas G (Gai y Gao) Los receptoresdopaminérgicosseencuentran ampliamentedistribuidos en diversasáreas del SNC (aunquede maneradiferencialde acuerdo al subtipo) donde son responsablesde las diversasaccionesfisiológicas de la dopamina.El estudio de los sistemasy receptoresdopaminérgicos del SNC ha generadogran interés, debido a que diversasalteracionesen la transmisióndopaminérgicahan sido relacionadas,directa o indirectamente,con transtornos severoscomo la , Solicitud de sobretiros:Dr: JoséA. Arias-Montaño.Depto.deNeurociencias,ClNVESTA¡;; Apdo. Postal 14-740, 07000México, D.F: Exts. 5150, 5137 Fax 7477105. E-mail:[email protected] Recibido el 181Enero/1999. Aceptado para publicación el 21/AbriV1999. Este artículo estadispoulble en http://www.uady.mX/-biomedidrbOOll16.pdf TeL 747 7000 -,,;' r" ' Vol. II/No. l/Enero-Marzo, 2000 40 R Bahena-Trujillo, G Flores, JA Arias-Montaño. enfermedadde Parkinsony la esquizofrenia,así INTRODUCCIÓN. Las catecolaminasson compuestos formacomo con la adicción a drogas (anfetaminasy dos por un núcleo catecol (un anillo de benceno cocaínapor ejemplo). con dos hidroxilos) y una cadena de etilamina o (Rev B;omed 2000,.11:39-60) alguno de sus derivados. Las catecolaminas Palabras clave: Dopamina,receptoresdopami- dopamina,adrenalinay noradrenalina actúan como químicos en el SistemaNervioso de los nérgicos, receptor DI, receptor D2, receptor D3, mensajer<;>s mamíferos y la primera (fig. 1) es el transmisor receptor D 4' receptor D 5' tirosina hidroxilasa. catecolaminérgico más importante del Sistema Nervioso Central (SNC), donde participa en una gran variedad de funciones que incluyen la activiABSTRACT. Dopamine: synthesis, releaseand receptors in dad locomotora, la afectividad, la regulación neuroendócrinay la ingestión de agua y alimentos the central nervous system. Dopamine is the majar catecholaminer- (1,2). En el Sistema Nervioso Periférico, la gic transmitter in the central nervous system dopamina es un modulador de la función cardíaca where it is involved in a wide variety offunctio- y renal, del tono vascular y de la motilidad ns suchasmotor activity, mood, emotivity,affectiviness and neuroendocrine communication. Dopamineis synthetisedfrom the aminoacidLtyrosine and there are mechanismsthat precisely control in a very precise mannerboth neurotransmitter synthesisand release.Molecular cloning has led to the identification of five different receptor subtypes, all membersof the Gprotein-coupledreceptor superfamily.Thesesubtypes are divided into two majar pharmacological families, namelyD¡ and D2. D¡ receptors (D¡ and Ds subtypes)are coupledto G proteins(Gs) and stimulate cyclic AMP formation asthe main transducing mechanism.By activating different G proteins (Gai and Gao) D2-like receptors(D2, DJ and D4 subtypes)inhibit cyclic AMPc formation, actívateK+ channelsand reduceCa2+entry through voltage-activatedchannels.Alterations in dopaminergictransmissionhave been shown to relate, either directly or indirectly, to severe disorders such as Parkinson's disease,schizophreniaand drug addiction. (RevBiomed 2000; gastrointestinal. La función de los sistemasdopaminérgicos del SNC se ha convertido en foco de gran interés, debido a que diversas alteraciones en la transmisión dopaminérgica han sido relacionadas, directa o indirectamente,con transtomos severosdel SNC, tales como la enfermedad de Parkinson, trastornos psicóticos que incluyen a la esquizofrenia y la dependenciaa drogas como la anfetamina y la cocaína (3,4). La evolución de la investigación sobre la transmisión dopaminérgicapuede remontarse a la década de los 50's, cuando la dopamina fue reconocida como un neurotransmisor,siendodetectadapor vez primera en el SNC en 1958 (4). En la década de los 60's se generaron las primeras evidencias del OH r-C H2-C H2 NH2 11: 39-60) OH Key words: Dopamine, dopaminergic receptors, receptor DI, receptor D2, receptor D3, receptor D 4' receptor D 5' tyrosine hydroxilase. Revi~ta Biomédica Figura 1.- Estructuraquímica de la dopamina(3,4dihidroxifeniletilamina) . 41 Dopamina: síntesis,liberación y receptoresen el SNC vínculo existente entre alteraciones en la transmisión dopaminérgica y la enfermedad de Parkinson y algunos desórdenespsiquiátricos, en particular la esquizofrenia. En los años 70's se estudió la distribución de los receptorespara doparninay seplanteó la existencia de dos tipos de receptores dopaminérgicos, denominados DI y D2 (5), aunque no fue hasta 1988 cuando se clonó el primer receptor dopaminérgico, el subtipo D2 (6). Los últimos años se han caracterizado por el uso de diferentes estrategias experimentales para el estudio in situ e in vivo de los sistemas dopaminérgicos, así como de las características farmacológicas y moleculares de los diferentes receptores para el neurotransmisor (4). medio de la hipófisis y en la eminencia media; b) neuronas localizadas en el hipotálamo dorsal y posterior (A13 y A14), que envían proyecciones al hipotálamo dorsal anterior y a los núcleos septolaterales; y c) el grupo periventricular medular,que incluye a las neuronasdopaminérgicas localizadasen la periferia de los núcleos del tracto solitario y motor dorsal del nervio vago, así como a las célulasdispersasen la prolongación tegmental de la materia gris periacueductal (Al 5). 3. Sistemas largos. Este grupo incluye a las neuronas de la región retrorubral (A8), del area tegmental ventral (Al O) Y de la sustancia negra compacta (A9), las que envían proyecciones a tres regiones principales: el neoestriado (núcleos caudadoy putamen), la corteza limbica (entorrinal, prefrontal medial y cíngulo) y otras estructuras limbicas (el septum, el tubérculo olfatorio, el núcleo accumbens,la amígdalay la corteza piriforme). Dentro de estegrupo se encuentran dos de las vías dopaminérgicas más importantes, la vía nigroestriatal y la vía mesolímbica. SISTEMAS DOPAMINERGICOS. En el SNC de la rata existe un número importante de células dopaminérgicas, de 15,000 a 20,000 para cada una de las mitades del mesencéfalo, región donde se encuentranlos grupos más importantes de éllas (7). Los sistemas dopaminérgicos han sido estudiados principalmente mediante técnicas de fluorescencia e inmunocitoquímica, y los grupos neuronales han sido denomi- SÍNTESIS DE LA DOPAMINA. La síntesis del neurotransmisor tiene lugar nados desde A8 hasta A17 de acuerdo a la clasien las terminales nerviosas dopaminérgicas donde ficación de Fuxe elaborada en 1965 (8), basada en estudios de histofluorescencia (Fig. 2). Las se encuentran en alta concentración las enzimas neurORasdopaminérgicas y sus proyecciones pue- responsables,la tirosina hidroxilasa (TH) y la descarboxilasade aminoácidosaromáticos o L-DOPA den agruparse en 3 sistemas principales (7): descarboxilasa (7,9). Los trabajos de Nagatsu y 1. Sistemasultracortos. Un primersistema está cols. (10) Y de Levitt y cols. (11) demostraron que formado por las células dopaminérgicasdel bulbo la hidroxilación del aminoácido L-tirosina es el olfatorio (A16), en tanto que un segundo sistema punto de regulación de la síntesis de catecolaminas en el SNC y que en consecuencia la TH es la 10 componen las neuronas interflexiformes (similares a las amácrinas)presentesentre las capas enzima limitante de la síntesis de la dopamina, la plexiformes interna y externa de la retina (grupo noradrenalina y la adrenalina. La TH es un péptido de 498 aminoácidos (56 KDa; ref. 12) presente Al?). de manera predominante en la fracción citosólica 2,.Sistemas de longitud intermedia. Incluyen: a) de las terminales catecolaminérgicas (13). La enel sistematuberohipofisiario, con origen en las cé- zima es una oxidasa (E.C.l.14.16.2) que utiliza Llulas dopaminérgicas localizadas en los núcleos tirosina y oxígeno como sustratosy tetrahidrobiophipotalámicos arqueado y periventricular (grupo terina (BHJ como cofactor para adicionar un gruA12), cuyos axones terminan en el lóbulo inter- po hidroxilo al aminoácido para formar L-DOPA Vol. II/No. l/Enero-Marzo, 2000 42 R Bahena-Trujillo, G Flores, JA Arias-Montaño. C6p. InI --/ -4::> ~d.do ~ 4'L)z a OH ~~-CH-N~ V L-Tirosina :;:~::JP'--¡:¡~~'- N.k. T.O. .p: H';:~ioJ' cerebro antena .s:.a~ ~ ---¡ Q --~~- ó. hidro"l~ b OH, ~ r~-IH-NH2 Haz medial cerebroantena OH' Cort Iront lirosina BH4,0., Fe'. -A10 T CbOH c COOH ~ L-Dopa (L-3,4-dihidroxifenilalanina) C>-~ a talá",'" DescarOOJÓO1sa Piroo¡al fosfato de amnoácidos~aT1ábcos d OH-- ~1~ OH' N... Figura 2.- Sistemas dopaminérgicos en el SNC. Se representanlos grupos neuronalesy las vías dopaminérgicas más importantes. A8-A14, regionesneuronalesdopaminérgicas; A. VT., area ventrotegmental; Cap. Int., cápsula interna; G.P., globo pálido; Hab. Lat., hábenula lateral; Hip., hipocampo; N. Ac., núcleo accumbens; N.H.DM, núcleo hipotalámico dorsomedial; N.H. VM, núcleo hipotalámico ventromedial; N.O.A., núcleo olfatono anterior; Pito Ant., hipófisis anterior; Pito Int., hipófisis intermedia; Pito Post., hipófisis posterior; SNc, substancianegra pars compacta; SNr, substancianegra pars retículata; T.O. tubérculo olfatorio; Modificado de la referencia3. (L-3,4-dihidroxifenilalanina)como se esquematiza en la Fig. 3 (14). La función de la TH requiere tambiénde la presenciade hierro. La constantedeMichaelisMenten (Km) de la TH parala L- tirosina correspondea 4-15 ~M (15,16) por lo que la enzima se encuentranormalmente saturadapor la concentracióndel aminoácido(80 ~M) que sealcanzaen los tejidos cerebrales(17). En consecuencia, la disponibilidaddel sustratono eslimitante enla síntesisdel neurotransmisor. Por Revista Biomédica (Y~-CH2- Nfiz Dopamina (3,4-dlhidroxifeniletilamina) Figura 3.- Síntesisde la dopamina. otra parte,los análogosde la L-tirosina, como la a-metil-p-tirosinay la 3-yodo-tirosinasonpotentes inhibidorescompetitivosde la TH (13). REGULACIÓN DE LA SÍNTESIS DE LA DOPAMINA. 1. Regulación por sustrato y por producto. La TH soluble es inhibida por L-tirosina; sinembargo,esteefectosólo seproducecon concentraciones del aminoácidosuperioresa 120~M, por lo queno constituyeun mecanismorelevante en la regulación de la actividad enzimática (15,18).Los productosmetabólicosde la síntesis del neurotransmisor(L-DOPA y dopamina)inhiben la actividadde la TH en homogenadosde tejido cerebral(19,20). La rápida acciónde la descarboxilasahacequela concentracióndeL-DOPA seaextremadamente bajay que no seapor lo tanto de relevanciapara disminuir la actividad enzimática, en tanto que la inhibición por dopamina 43 Dopamina: síntesis,liberación y receptoresen el SNC puedeser un mecanismorelevantepara la regu- 4. Regulación por heterorreceptores. Otros neurotransmisores pueden también lación de la TH, si bien se requierenconcentramodular la síntesis de la dopamina activando recioneselevadaspara observardicho efecto (21). 2. Regulación de la TH por fosforilación. La actividad de la TH depende críticamente de su estado de fosforilación (15). La adición de grupos fosfato a la enzima provoca un importante aumento de su actividad catalítica que se debe sobre todo a la reducción de la Km por el cofactor tetrahidrobiopterina (BHJ, y en menor medida a una disminución de la inhibición por producto, incrementando la constante de inhibición (K) de la dopamina (13,20). La TH es un sustrato importante de diversas cinasas de proteína (19,20,22) entre las que se encuentran la cinasa A que depende de AMPc (PKA), la cinasa II dependiente de Ca2+y de calmodulina (CaMK 11)y la cinasa C (PKC). 3. Regulación por autorreceptores. Diversosestudiostanto in vivo como in vitro hanmostradoque los agonistasdopaminérgicos disminuyen la síntesisdel neurotransmisor (23,24), actuando sobre autorreceptoreslocalizadosen las terminalesdopaminérgicas.El efecto inhibidor esbloqueadopor antagonistasdopaminérgicosy se encuentramediadopor receptores pertenecientesa la familia D2 (ver más adelante), cuya activación inhibe tambiénla liberación de dopamina(25-32). Reportesrecientesindican que dentro la familia D2, el subtipoD3 podría ser el autorreceptorresponsablede la regulación de la síntesisy liberación de dopamina (33,34). La acción de los autorreceptoresparece debersea dos efectosprincipales:a) a la modulación de canalesiónicos activadospor voltaje, inhibiendocorrientesde Ca2+(a travésde proteínas Go) o facilitando la apertura de canalesde K+ medianteproteínasGai3 (35,36), y b) en menor medida,a la activaciónde proteínasG (Gai), que inhiben la formación de AMPc y por lo tanto el estadode fosforilación debido a la PKA (31). ceptores presentesen las terminales nerviosas dopaminérgicas. Ejemplos de esta modulación son: para la estimulación de la actividad de la TH, receptores Az para adenosina (37) Y receptores NMDA para glutamato (37,38), Y para la inhibición de la síntesis, los receptores para GAB~ (39,40). LmERACION DE LA DOPAMINA . En las terminales dopaminérgicas el neurotransmisor es sintetizado en el citoplasma de donde puede ser liberada directamente al espacio sináptico o bien ser transportada al interior de las vesículassinápticaspara serliberada por exocitosis. Liberación por exocitosis. En este procesola dopaminacontenidaen vesículases liberada al exterior al fusionarsela membranavesicularcon la membranade la terminal presináptica.Este mecanismoestáconstituido por variasetapas(parauna revisiónver la ref. 41). Primeramentelas vesículastransportanel neurotransmisor a su interior mediante una proteína transportadoracon 12 dominiostransmembranales que utiliza un gradienteelectroquímicogenerado por una bomba (ATPasa)de protones(H+) (42). La mayor parte de las vesículas sinápticas (~90%) que contienen al neurotransmisor no están libres en el citoplasma sino que se encuentran unidas al citoesqueleto de la terminal presináptica mediante la interacción de proteínas presentes en la membranade la vesícula (sinapsinas 1 y 11)con proteínasdel citoesqueleto.Característicamentelas sinapsinasson fosforiladas por diversas cinasasde proteína que incluyen a la cinasas 1 y 11 dependientes de iones de Ca2+y de la proteína calmodulina (CaMK 1 y CaMK 11)y por la cinasa dependientede AMPc (PKA). Cuando un potencial de acción alcanza la terminal nerviosa, el cambio en el potencial de membrana activa a canales de - Vol. II/No. l/Enero-Marzo, 2000 44 R Bahena-Trujillo, G Flores, JA Arias-Montaño. Ca2+.Debido al gradiente electroquímico segenera un influjo de iones de Ca2+los que en conjunto con la calmodulina activan a las cinasasCaMK 1 y CaMK 11, las que fosforilan a la sinapsina 1 (CaMK 1 y CaMK 11)y a la sinapsina 11(CaMK 11).La adición de un grupo fosfato a las sinapsinas debilita la unión de las vesículas sinápticas al citoesqueleto, facilitando así su transporte a la zona activa. Una vez transportadas a la zona activa las vesículasse fijan a la misma (anclaje o "docking"), donde experimentan un proceso que las hace competentes para la exocitosis (maduración o "priming"). Como se mencionó antes, la llegada de un potencial de acción despolariza a la terminalllevando su potencial desde -70 mV hasta+20 0+30 mV, lo que permite la apertura de canales de Ca2+sensibles al voltaje, particularmente de aquellos que se abren en el rango de -20 a O mV (canales de alto umbral, que incluyen a los tipos L, N, P Y Q). La apertura de estos canalespermite que en su vecindad se formen zonas de alta densidad ("nubes") de Ca2+donde la concentración llega a ser hasta de 100-200 M, es decir 1000 veces la concentración en reposo (100-200 nM). El aumento de la concentración de Ca2+ afecta a diversas proteínas, entre ellas aquéllas involucradas en la exocitosis, en un proceso donde una proteína, la sinaptotagmina, parece funcionar como un sensor de Ca2+que termina de manera súbita el proceso de fusión de la vesícula, una vez que se han formado complejos formados por proteínas como la sintaxina, la SNAP-25, el factor sensible a N-etilmaleimida (NSF) y proteínas de unión a NSF o SNAPs. Liberación independiente de Ca2+. Este segundo tipo de liberación de dopamina es característicamente inhibido por fármaco s que bloquean el transportador de dopamina presente en la membrana de la terminal sináptica y cuya función es terminar la acción del neurotransmisor, capturándolo hacia el interior de la terminal (ver más adelante). Bajo cier- Revista Biomédica tas condicionesel transportadoropera en sentido inversoliberandodopaminaal exterior (43). Síntesis de dopamina y liberación. Se ha observado que la dopamina que se libera de manera preferente en respuesta a estimulación sináptica es la recién sintetizada. El neurotransrnisor parece así encontrarse en dos pozas metabólicas, ambas vesiculares; una que contiene a la doparnina recién sintetizada y una segunda que correspondería a una poza que funciona como almacén. Es probable la existencia de la una tercera poza metabólica abastecida por los transportadores y que sería la fuente de la liberación de dopamina por transporte reverso (3,44). , , REGULACION DE LA LIBERACION DE DOPAMINA. 1. Regulación por autorreceptores. Como se mencionó anteriormente, las terminales dopaminérgicas poseen autorreceptores pertenecientesa la familia D2 cuya activación reduce la liberación de la dopamina (25-32). De manera semejantea lo descrito para la regulación de la síntesis, el efecto se debe principalmente a la inhibición de la formación de AMPc y de la apertura de canalesde Ca2+.La reducción en la formación de AMPc disminuye la actividad de la PKA que fosforila a las sinapsinas1 y 11(41), por lo que las vesículastienden a estarunidas al citoesqueleto. De manera más importante, la inhibición de canales de Ca2+activados por voltaje reduce la entrada del catión que ocurre en respuesta a los potenciales de acción que llegan a la terminal sináptica disminuyendo la probabilidad de fusión de las vesículas (45). 2. Regulación por heterorreceptores. Se ha demostrado que las terminales dopaminérgicasposeenreceptorespara GABA, glutamato, acetilcolinay serotonina(43,46,47). Estudiosin vitro e in vivo han mostrado que la liberaciónde dopaminaes estimuladapor la activacióndereceptoresglutamatérgicosNMDA (48- 45 Dopamina: síntesis,liberación y receptoresen el SNC 50), GABAA (51,52) Y colinérgicos(53), entanto tica el MPP+ es un inhibidor potente de la oxidaque se observainhibición de la liberaciónal esti- ción de substratos ligados al NAD+ mitocondrial. El cese de la respiración en las mitocondrias conmularreceptoresGAB~ (54-56). Término de la acción de la dopamina. Los transportadores constituyen el principal mecanismo para la teminación de la transmisión sináptica en el SNC (3,21,57-59). Una vez liberada al espacio sináptico la dopamina se une a receptores pre y postsinápticos. Aunque existen enzimasextraneuronalesque la catabolizan, la terminación del efecto del neurotransmisor se debe principalmente a la captura del mismo por las propias terminales nerviosas que la liberaron (7). El transportador para dopamina (fig. 4) pertenecea la familia de proteínastransportadoresque dependen de Na+ y CI-, que tienen 12 dominios transmembranales(58) y que presentanvarios sitios de fosforilación (60). Esta familia incluye también a los transportadores de GABA, noradrenalina, serotonina, taurina, glicina, betaína y prolina. La estequiometria del transportador indica que la doparnina es cotransportada al interior de la terminal con 2 iones de Na+y un ion CI- (58). El transportador es sensiblea inhibición por diferentesfármacos (GBR-12909, nomifensina, mazindol, cocaína y anfetamina) y su función puede ser modulada por segundosmensajeroscomo el diacilglicerol (por activación de la PKC) y el ácido araquidonico. De manera relevante, el transportador es también responsable de la captura de las neurotoxinas 6-hidroxidopamina y l-metil-4-fenil1,2,3,6-tetrahidropiridina o MPTP (58,61). El MPTP es una substanciaque se encuentra presente como contaminante de ciertas drogas (análogosde petidina, "polvo de ángel") y que produce lesión y muerte de las neuronas dopaminérgicas conduciendo a un cuadro clínico semejante al de la enfermedad de Parkinson. El MPTP atraviesa la barrera hematoencefálicay es transformado en el SNC por la monoaminoxidasaB (MAOB) a MPP+ (ion l-metil-4-fenilpiridinio), el derivado neurotóxico que sirve como sustrato del transportador de dopamina. En la terminal sináp- duce a la desaparición de ATP y, entre otros efectos, a la pérdida del potencial de membrana,lo que ocasiona la muerte neuronal, en un proceso que comprende alteraciones en la homeostasis del ion Ca2+y la formación de radicales libres (62). CATABOLISMO DE LA DOPAMINA. La dopamina recapturada es convertida por la enzima monoamino-oxidasa, en particular por la forma A (MAO-A), presente en el interior de la terminal nerviosa, en ácido dihidroxifenilacético (DOPAC) el cual es liberado al exterior de la terminal para ser convertido en ácido homovanilico (HVA) por la enzima catecol-O-metiltransferasa (COMT). La dopamina no capturada por la terminal dopaminérgica es metabolizada en HV A por la acción secuencialde las enzimas COMT y MAOA (3,7,21). En el cerebro de la rata el principal metabolito de la dopamina es el DOPAC, en tanto que en el cerebro de los primates el HVA es el metabolito principal. Así, la formación de DOPAC puede utilizarse como indicador de la actividad dopaminérgicaen la rata, mientras que la determinación de HVA en tejidos cerebrales y en ellíquido cefalorraquídeo se utiliza también como índice Figura 4.- Recaptura de la dopamina. Modificadode la referencia59. DA, dopamina.Semuestranlos efectos de la cocaínay de anfetamina. Vol. II/No. l/Enero-Marzo. 2000 46 R Bahena-Trujillo, G Flores, lA Arias-Montaño. res dopaminérgicos poseen7 dominios transmembranales (fig. 5), de 20 a 25 residuos hidrofóbicos cada uno, y están acoplados a sistemas de transducción intracelulares mediante proteínas G (67). Los 7 dominios intramembranales están conectados de forma alterna por asas citoplasmáticas (il, i2, i3) Y extracelulares (el, e2, e3) y la región amino terminal corresponde a un dominio extracelular glicosilado. El tercer dominio citoplasmático exhibe diferenciasentre los diferentes tipos de receptores, RECEPTORES DOPAMINERGICOS El concepto de que los transmisores quími- lo que parece ser la base de la interacción selectiva cos (hormonas y neurotransmisores)y la gran ma- con un tipo o familia particular de proteínas G, lo yoría de las drogas producen su efecto biológico que se traduce en diferentes señalesintracelulares. por interacción con substanciasreceptoraspresen- El asa citoplasmática i3 y la región carboxilo tes en las células blanco fue introducido por terminal (también intracelular) interaccionan con Langley en 1905, basándoseen observacionesde las proteínas G responsablesde los efectos de la la potencia y especificidad con la que algunasdro- activación del receptor (68). Los receptores DI gas mimetizaban (agonistas) o bloqueaban (anta- y Ds se caracterizan por tener un asa i3 corta y gonistas) ciertas respuestasbiológicas. Más tarde una región carboxilo terminal grande, que se Hill, Gaddum y Clark describieron de manera in- acoplan a proteínas Gs. En contraste, una dependiente las características cuantitativas de la estructura inversa (i31argay un extremo carboxilo interacción entre agonistasy antagonistasen com- terminal corto) se observa en los receptores D2, binación con receptores específicosutilizando pre- D3 Y D 4' acoplados a proteínas Gi. El extremo carboxilo de los receptores de la paraciones intactas (7). Actualmente, los receptoresse definen como familia DI es rico en residuos de serina, treonina y moléculas o arreglos moleculares que pueden re- cisteína, lo que no se observa en los receptores de conocer selectivamente a un ligando (agonista o la familia D2 (66). La diferencia estructural entre antagonista) y ser activados por el ligando con efi- las dos familias obedece a la ausencia de intrones cacia intrínseca (agonista) para iniciar un evento en los RNA mensajeros(RNAm) que codifican los receptores DI y Ds, ya su presencia en los RNAm celular (63). Los receptores para dopamina pertenece a correspondiente a los subtipos D2, D3 Y D4 (67). la superfamilia de receptores (con más de 100 miembros) acoplados a proteínas G. En esta fa- Familias y subtipos de receptores dopaminérmilia de receptores, el reconocimiento del neuro- gicos. La acción de la dopamina sobre las células transmisor y la molécula efectora (típicamente una enzima que produce un segundo mensajero difu- blanco depende del tipo de receptor presente en sible) son entidades diferentes, acopladas entre sí éllas. Con base en sus características moleculapor una proteína con capacidad para unir nucleó- res se han descrito 5 subtipos de receptores para dopamina, los cuales han sido agrupados en 2 fatidos de guanina (proteína G) (64). milias farmacológicas denominadas DI y D2, a partir del efecto de agonistas y antagonistas seEstructura de los receptores dopaminérgicos. El primer receptor dopaminérgico clonado lectivos. La clasificación actual tiene su origen fue el subtipo D2 (6,65,66). Todos los recepto- en la propuesta por Kebabian y Calne en 1979 de la actividad de las neuronasdoparninérgicas(7). La actividad funcional de las vías dopaminérgicas puede también estimarse de manera más precisa determinandola relación de concentracioneso contenido del HV A Y de la propia dopamina (HV Al dopamina) (3), según se analice la concentración del transmisor en el líquido cefalorraquídeo o en dialisados cerebrales o bien el contenido de dopamina en los tejidos. Revista Biomédica 47 Dopamina: síntesis,liberación y receptoresen el SNC (5) Y de manera característicalos receptores de la familia DI estimulana la enzimaadenilil ciclasaconduciendoa la producción de AMPc, en tanto que la activación de los receptores pertenecientesa la familia D2 inhibe su formación (69-73). Ver la fig. 6. Las dos familias de receptores dopaminérgicos muestrantambiéndiferenciasimportantesen sus característicasmoleculares.Existe así una alta homología de secuenciasentre los dos miembros de la familia DI (subtipos DI y Ds)' como existe a su vez entre los miembros de la familia D2, donde se ubican los receptoresD2, DJ Y D4 (65,69,70). En conFigura 5.- Estructura de los receptoresdopaminérgicos. traste, la homología entre subtipos de familias difeSeesquematizala estructuradel subtipoDX. I-VII, dominios transmembranales.il, i2, i3; asascitoplasmáticas;el, rentes correspondea 42-46% (2,65,74). Los subtie2,e3;asasextracelulares.NH2, extremo amino terminal; pos DI y Ds muestran una homología del 80%; la homología entre los receptores D2 y DJ alcanzael COOH, extremocarboxilo terminal. 75% y entrelos subtiposD2y D 4 correspondea 53% Figura 6.- Mecanismos de transducción de señalesacopladosa las familias DI y D1de receptores dopaminérgicos. AC, adenilil ciclasa; AMPc, monofosfatocíclico de adenosina;ATP,trifosfato de adenosina;ADP, difosfato de adenosilla; DAG, diacilglicerol; IP3' 1,4,5-trifosfato de inositol; PIP2' 4,5-difosfato de fosfatidilinositol; PKA, cinasa de proteína activada por AMPc; P, fosforilación; PKC, cinasaC de proteína.PLC, fosfolipasa C. Vol. II/No. l/Enero-Mano, 2000 48 R Bahena-Trujillo, G Flores, JA Arias-Montaño. Cuadro 1 Característicasestructuralesde los receptoresdopaminérgicos. Familia D Subtipo Secuencia D 446 a.a Familia D D D 2 477a.a 387 a.a. Sí l1q 22-23 Sí 3q 13.3 Sí IIp 15.5 2.5 kb Noestriado 8.3 kb Paleoestriado 5.3 kb Cortezafrontal Sí Inhibición? Inhibición? D2b444a.a No No 5q 35.1 4p 15.1-16. 3 kb Regionesde alta Densidad 3.8 kb Neoestriado SNr Autorreceptor Adenilil ciclasa No Estimulación Efector OtrasRespuestas D 400 a.a D2a443a.a. Codificada Intrones Localización Cromosomal Tamañodel RNAm D Gas Hipotálamo Hipocampo ? No Estimulación Inhibición Gai/o tCanal deK+ Gas tFosfolipasa C Gai/o tFosfolipasa C Gai/o t :J,Canal de Ca 2+ tlntercambiador Intercambiador + + + + tFosfolipasa C de Na /H de Na /H Elaboradoa partir de las referencia2,42,65,69,70,75Y79. Abreviaturas:a.a.,aminoácidos;Gas, proteínaG estimuladora; Gai, proteína G inhibidora; Gao, proteínaG tipo O; kb, kilobases;PKA, cinasaA de proteína;K, constantede inhibiBioquímicas tPKA j ción. Los númerosentre paréntesisindican la constantede afinidad del radioligandocorrespondiente. (65). Las principales característicasestructuralesy fannacológicas de las dos familias y de los cinco subtipos de receptores doparninérgicosse resumen en los cuadros 1 y 2. Existen también diferenciasen la distribución en el SNC de los diferentesreceptores dopaminérgicos. La presencia de los distintos subtipos ha sido determinadamediantela combinación de técnicas de unión de radioligandos ("binding"), que detecta a las proteínas receptoras,y de hibridación in situ, que detectaa los diferentesRNA mensajerosque codifican la síntesisde los subtipos de receptores dopaminérgicos(75). abundantesresiduos de serina y de treonina, susceptiblesde fosforilación por cinasascomo la PKA y la PKC (2). En el caso del receptor adrenérgico J32, el másestudiadode los receptoresacopladosa proteínasG, la fosforilación del segmentocarboxilo terminal esresponsablede la desensibilizaciónque experimentael receptor en respuestaa la estimulación continua por agonistas(76-78). ReceptoresDI. Tanto en el ser humanocomo en la rata los receptoresDI son cadenasde 446 residuos de aminoácidos.Característicasestructuralesde este FAMILIA DI. subtiposonuna región i3 corta y un extremocarEstá conformadapor dos subtipos,denomi- boxilo largo de 113-117aminoácidos(2). nadosDI y Ds' Estosreceptorestienenuna región carboxiloterminalque es aproximadamente 7 ve- Distribución. El subtipoDI es el receptor dopaminérgico cesmáslargaquela correspondiente a los receptores de la familia D2°Además,estaregión muestra másabundanteen el SNC (2,13,65). Niveles alRevista Biomédica 49 Dopamina: síntesis,liberación y receptoresen el SNC Cuadro 2 Característicasfarmacológicasde los receptoresdopaminérgicos. FamiliaD Subtipo Afinidad por DA Agonistas selectivos Ki (nM) Dopamina Apomorfina Bromocriptina Quinpirole SKF-38393 Antagonistas Selectivos Ki (nM) Haloperidol Sulpiride SCH-23390 Espiperona Risperidona Raclopride Familia D 2 ~~ D ~ ! 2000 700 700 1400 150 Quinpirole Fenoldopam 100 SCH-23390 40 80000 0.3 3500 30 40000 0.3 350 18000 -[HJSCH-23390 3 nM J1M 250 400 .500 SCH-23390 D 2 SKF-38393 SKF-38393 D -- I Radioligandos Bromocriptina 2000 70 5 1400 10000 30 70 7 40 5000 Haloperidol, Fármacos antiosicóticos UH232 0.6 10 1000 0.06 5 1.8 (H]YM091512 3 20 1000 0.6 7 3.5 "- D 4 Submicromolar ? 450 4 300 50 10000 Clozapina 5 50 3500 0.08 7 2400 [Hj7-OH-DPA1 (0.2nM) (0.1nM). J Elaboradoa partir de las referencia2,42,65,69,70,75Y79. Abreviaturas:a.a.,aminoácldos;Gas, proteínaG estimuladora; Gai, proteína G inhibidora; Gao, proteínaG tipo O; kb, kilobases;PKA, cinasaA de proteína; K, constantede inhibición. Los númerosentre paréntesisindican la constantede afinidad del radioligandocorrespondie~te. j tos del receptor se encuentranen el túberculo olfatorio, el neoestriado, el núcleo accumbens,las islass de Calleja, la amígdala,el núcleo subtalárnico, la substancianegra (reticulada y compacta)y el cerebelo(capamolecular).Niveles moderadoshansido detectados en la corteza cerebral (frontal, entorrinal y el cíngulo), el tálamo y el globo pálido. Los receptoresDI son escasosen la formación hipocampal, la región septal, el hipotálamo, el áreategmental ventral y el colículo inferior (2). El RNArn correspondiente al receptorDI se observa en el neoestriado, la corteza cerebral (frontal, prefrontal, piriforme y entorrinal), la formación hipocampal, el tubérculo olfatorio, el núcleo accumbens, el hipo tálamo y el tálamo (2,66) j asícomoen el núcleosubtalámico(G. Flores,resultadosno publicados). En otras áreascomo el núcleo entopeduncular,el globo pálido y la sustancia negra reticulada, es posible detectar a la proteínareceptorapero no al RNAm, lo que indica que los receptoresestán presentessólo en los axonesprovenientesdel neoestriado(2). Características farmacológicas y transducción de señales. Los receptores DI muestran una afinidad relativamente baja por la dopamina (ver cuadro 1) con una constante de inhibición (K¡) de 2 ~M. Los fármacosque activan de manera selectiva al receptor son el SKF-38393 (agonista parcial, K¡ 150 nM) Vol. II/No. llEnero-Mano. 2000 50 R Bahena-Trujillo, G Flores, JA Arias-Montaño. y el SKF-81297, en tanto que el fármaco SCH23390 es un antagonista selectivo con muy alta afinidad (K 1 0.3 nM) por el receptor (42,65,79). La alta afinidad de este antagonista ha permitido su uso en la forma tritiada ([3H]SCH 23390), de gran utilidad para la identificación del receptor, tanto en preparaciones de membranas celulares como in situ (autorradiografia). Típicamente la activación de los receptores DI conduce a la activación de proteínas Gs con la consecuente producción del segundo mensajero AMPc por estimulación de una o varias isoformas de la enzima adenilil ciclasa, localizada en la membrana celular (7). Se ha reportado también que en la corteza cerebral frontal la activación del receptor DI induce la producción de otros segundos mensajeros, el 1,4,5-trifosfato de inositol (IP 3) Y el diacilglicerol (DAG), por estimulación de una fosfolipasa C que cataliza la hidrólisis del 4,5-difosfato de fosfatidilinositol (PIP J, un fosfolípido presente en la membrana celular (80,81 ). Receptores D SO de AMPc por estimulación de una o más isoformasde la adenilil ciclasa,procesomediado por proteínas Gas (2,79). Las características farmacológicasdel subtipo Ds son tambiénsimilaresa las reportadaspara el receptor DI, ya que es activado por el fármaco SKF-38393 (K¡ 100 nM) Ytienencomo antagonistaselectivoal SCH23390 (K¡ 0.3 nM). Sin embargo,su afinidadpor la dopaminaes mayor (K¡ 50 nM). FAMILIA DZ8 Conformadapor 3 subtipos denominadosD2, D3 Y D 4' los que muestran como característica una región i3 muy larga de 101 a 166 aminoácidos, dependiendo del subtipo y de la especie.En contraste, la misma región está conforrnda por 57 y 50 residuos en los receptores DI y Ds respectivamente (2). Las regiones i3 largas parecen ser típicas de los receptores que inhiben a la adenilil ciclasa (y por lo tanto la formación de AMPc) mediante la activación de proteínas Gai. Dicha región es también ríca en residuos de serina y de treonina, mismos que pueden ser fosforilados por diversas cinasas de proteína, regulando así el acople a la proteína G correspondiente (83,84; para revisiones del tema ver las referencias 85 y 86). Estosreceptoressonproteínasde 475 (rata) o 477 (humano)residuosde aminoácidos.El receptor humanotiene una homologíade 49% con el receptor DI de la mismaespeciey de 83% con ReceptoresDzo Existen 2 formas generadaspor procesael receptor Ds de la rata (2). miento alternativo ("splicing") del RNAm generado por un gen único. La forma corta (D2s)está Distribución. El receptor D 5 se expresacon muchome- formadapor 414 aminoácidosen el humanoy 415 nor intensidadque el subtipoDI y su localización en la rata, mientrasque la forma larga (D2L)tiene parecerestringirseal hipocampoy a los núcleos 443 y 444 aminoácidosrespectivamente.La dilateral mamilary parafasciculardel tálamo (75). ferencia en residuos aminoacídicosse observa En el SNC la expresióndel RNAm seha demos- sobretodo enla regióni3,conformadapor 29 amitrado en el hipocampo,el tálamo, el neoestriado, noácidosmás en las formas largas del receptor el hipotálamoy la corteza cerebralen susregio- (2). Dado que la región i3escrítica parael acople a proteínasG, esprobableque la variaciónenlonnesfrontal y temporal (2,82). gitud de dicharegión resulteen diferenciastanto en los procesosde transducciónde señalescomo Características farmacológicas y transducción en la regulaciónde la activación de proteínasG. de señales. De manera similar al subtipo DI, la activa- Sin embargo,no se han demostradode manera ción de los receptoresD 5 conducea la formación fehacientelas supuestasdiferenciasfuncionales. Revista Biomédica 51 Dopamina: síntesis,liberación y receptoresen el SNC Distribución. El receptor D2 ha sido detectado en alta densidad en el neoestriado (neuronas GABAérgicas estriadopalidales), el tubérculo olfatorio, la capa molecular de la formación hipocampal, el núcleo accumbens,las islas de Calleja y el áreategmental ventral. Se encuentra también en moderadas cantidades en la sustancia negra reticulada, y la substancia negra compacta (donde es expresado por las neuronas dopaminérgicas como autorreceptor somatodendrítico), la corteza cerebral (regiones prefrontal, entorrinal y cíngulo), el globo pálido, la amígdala, el tálamo y el hipotálamo (2) asícomo en el núcleo subtalámico (G. Flores, resultados no publicados). En la hipófisis el receptor D2 es expresado por los melanotropos y por los lactotropos, donde regula la neurosecreción al modular la apertura de canales de Ca2+activados por voltaje mediante la activación de proteínas Go (35,65,87). La distribución del RNAm es prácticamente paralela a la descrita para el receptor, con la excepción de la sustancia negra reticulada en la que se han determinados niveles intermedios del receptor, pero muy bajos o indetectables del RNAm (2), indicando que en esta región el receptor se encuentra localizado en las terminales sinápticas de las vía aferentes y en las dendritas de las neuronas dopaminérgicas de la SNc que se extienden a la SNr. Cabe destacar que en general la distribución del RNAm de las dos formas (corta y larga) del receptor coincide con la distribución del RNAm total para ambas formas. Sin embargo, regiones donde se ha observado una distribución diferencial incluyen al neoestriado y la hipófisis, donde se observa una mayor presencia de la forma larga (2,66). gonistas selectivos, si bien el raclopride muestra selectividad por los receptores D2 y D3, con valores de K¡ entre 0.5 y 5 nM (65,88). Existen evidencias de que los receptores D2 se encuentran acoplados a proteínas G del tipo Gai o Gao, sensiblesa la inactivación por la toxina de Bordetella pertussis (2). Típicamente la activación del receptor conduce a la inhibición de la adenilil ciclasa y por tanto de la formación de AMPc. Los receptores D2 pueden también modular corrientes iónicas (75), en particular las activadas por voltaje, inhibiendo canales de Ca2+ (efecto presumiblemente mediado por proteínas Gao) o facilitando la apertura de canales de K+ mediante proteínas Gi3 (35,36,75). Se ha reportado también que en líneas celulares transfectadas con el receptor D2 la estimulación del mismo provoca la formación de IP 3 Y movilización de calcio a partir de depósitos intracelulares (2). Receptor D3° La existenciade estesubtipo fue confirmada por clonaciónmolecularen 1990 (89), Su distribución en el SNC y sus característicasfarmacológicas(en particular su sensibilidada neurolépticos) sonclaramentediferentesde las correspondientesal receptor D2' En el ser humanoel receptorconstade400 aminoácidos,mientrasque en la rata la cadenapeptídicacomprende446 residuos, siendola diferencia la extensióndel asa i3, conformadapor 120 y 166 aminoácidosrespectivamente(2). Distribución. La presenciadel receptor DJ se ha estudiado mediantela determinacióndel RNArn, con niveles elevadosen las islas de Calleja, la región Características farmacológicasy transducción septal, los núcleosgeniculadosmedial y lateral del tálamo, el núcleo mamilar medial del hipotáde señales. El receptorD2muestraunabajaafinidadpor lamo y en las células de Purkinje del cerebelo la dopamina (K¡ 2 M). La bromocriptina es un (2,66). Densidadesintermediasseobservanen la agonistapor el cual el receptor muestraalta afi- corteza parietal y temporal, la formación hiponidad (K¡ 5 nM),"Perono se han reportadoanta- campal,el bulbo olfatorio, el neoestriado,el núVol. II/No. llEnero-Mano. 2000 52 R Bahena-Trujillo, G Flores, JA Arias-Montaño. cleo accumbens,la amígdala,el núcleo subtalámico, la oliva inferior y los lóbulos anterior e intermedio de la hipófisis. Niveles mínimosse detectan en la substancianegra compacta,el área tegmentalventral, la cortezafrontal, el cínguloy el globo pálido. Características farmacológicas y transducción de señales. El receptor D 3 muestrauna afinidadpor la dopamina (K¡ 30 nM) y por la mayoría de los agonistas dopaminérgicos mayor que la correspondiente a los receptores D2. La bromocriptina es un agonista con alta afinidad (K¡ 7 nM), aunque también se une con alta afinidad al receptor D2 (K¡ 5 nM). Otros agonista selectivos son el PD 128,907 Y el 7-hidroxidipropilaminotetralin o 70H-DPAT (K¡ 1-2 nM). Los fármacos que se han reportado como antagonistas selectivos del subtipo D3 incluyen al UH232, emonapride (YM09151-2; K¡ 0.06 nM), nafadotride y (+)814297 (65,79,88). Cuando se expresa en diversas líneas celulares, la activación del receptor inhibe la produc- ción de AMPc, estimulala hidrólisis dePIP2 (con la consiguienteformación de IP3 yDAG) e induce la extrusión de iones H+ por activación del intercambiador Na+/H+. Estos efectos son compartidos por los otros miembros de la familia D2 e involucran a proteínas G del tipo Gai o Gao, sensibles a la toxina de B. pertussis (2). Al ser transfectado y expresado en células NG 108-15, la activación de los receptores D3 estimula la proliferación celular, evaluada por la incorporación de [3H]timidina (89). Como se señaló antes, reportes recientesindican que el receptor D3 es el autorreceptor presente en las terminales dopaminérgicas, donde regula la síntesis y la liberación de dopamina. Esta modulación parece deberse a varios mecanismos como la inhibición de la formación de AMPc, la reducción de corrientes de Ca2+que fluyen a través de canales activados por voltaje y la potenciación de corrientes salientes de K+, efecRevista Biomédica tos todos mediadospor proteínasGai/Gao (3136). Receptores D 4. Este subtipo fue clonado en 1991 (90) Y es una cadenapeptídica de 385-387 aminoácidos que muestra una significativa homología con los receptores D2 y D3' Una característica interesante del receptorD4 essu alta afinidadpor el neuroléptico clozapina,lo que generó un gran interés por susposiblesimplicacionesfisiopatológicasy terapéuticas, Distribución. El RNAm correspondiente al receptorD4 seencuentrapresenteen alta densidaden la corteza frontal, el bulbo olfatorio, la amígdala,el meséncefaloy la retina. Densidadesintermedias seobservanenel neoestriado,mientrasquedensidadesbajaso apenasdetectableshan sido reportadas para el hipotálamo y el hipocampo (2,75,91). Características farmacológicas y transducción de señales. El receptor D4 muestrauna afinidad intermedia por la dopamina (K¡ 450 nM) y una alta afinidad por la apormofina, la mayor de los receptores dopaminérgicos (K¡ 4 nM). Un agonista con alta afinidad (K¡ 50 nM) por el receptor D 4 es el quinpirole, aunque su afinidad por el subtipo D3 es muy similar (K¡ 40 nM), no diferenciando entre estos dos receptores, pero permitiendo distinguirlos del subtipo D2, con afinidad 30-35 veces menor (K¡ 1,400 nM). Un antagonista selectivo es la clozapina (K¡ 5-50 nM), un neuroléptico de gran utilidad en el manejo farmacológico de la esquizofrenia (2,65,79). Al igual que los subtipos D2 y D3, la activación de los receptores D 4 inhibe la producción de AMPc. Otros efectos funcionales acoplados a la activación del subtipo D 4 incluyen la formación y liberación de ácido araquidónico y la extrusión de iones H+ por estimulación del intercambiador 53 Dopamina: síntesis,liberación y receptoresen el SNC drazidas carbidopa y bencerazida, en particular la primera (3,96). A pesar de su evidente efecto terapéutico, el tratamiento crónico con L-DOPA conduce a RELEVANCIA CLINICA. Existendiversasfuncionescerebralesenlas una pérdida de la eficacia del tratamiento así como que la dopamina tiene una importante función a la aparición de efectos adversos severos desreguladora.Esta función se ve ejemplificadade pués de un periodo de 3 a 10 años. Después de manerasignificativa por algunosprocesospato- estetiempo se presentan una disminución progrelógicos relacionadoscon alteracionesen la trans- siva de la eficacia del fármaco ("wearing-off') misión dopaminérgica.Aunque una revisión de seguida por una fase en la que se observan perioestosaspectosexcedelos objetivos del presente dos alternantes de respuesta adecuada y de falta trabajo, es convenientemencionaralgunasde las de respuesta a la L-DOPA (periodos "on-off'). Entre los efectos adversos más importantes se alteracionesmásfrecuentes. encuentra la discinesia tardía, que se observa en el 60-80% de los pacientes bajo tratamiento cróEnfermedad de Parkinson. Desde que Ehringer y Hornykiewicz demos- nico con L-DOPA, y que caracteriza por movitraron en 1960 una disminución importante en el mientos involuntario s e incontrolables de los múscontenido de dopamina en pacientes portadores culos de la cara y de los miembros superiores e de la enfermedad de Parkinson (92), numerosos inferiores (96). La administración de agonistas estudios han validado la estrecha relación exis- dopaminérgicos selectivos para los receptores de tente entre la pérdida del neurotransmisor y los la familiaD2 (en particularla bromocriptina,el trastornos de la postura y el movimiento carac- pramipexole, el ropirinole y la cabergolina) en combinación con L-DOPA parece disminuir de terísticos de esta enfermedad (4). Si bien la gran mayoría de los efectos de la manera significativa la aparición de discinesias dopamina sobre la función de los ganglios basales tardías (96-100). Aunque la administración única de agonistas ha sido referida a su acción en el neoestriado, núcleo de destino de la vía nigroestriatal, se ha su- D2 ha sido empleada con relativo éxito, la opción gerido también que los efectos de la transmisión más apropiada para la mayoría de los pacientes dopaminérgica sobre los comandos motores pue- parece ser la administración inicial de L-DOPA/ de reflejar acciones combinadas de la dopamina carbidopa a lo que puede adicionarse un agonista en el neoestriado, en la sustancia negra reticulada selectivo de la familia D2 si se presentan discinesias (100). Los datos anteriores sugieren y en el núcleo subtalámico (93-95). El principal tratamiento farmacológico de también que se requiere la activación conjunta de la Enfermedad de Parkinson se basa en el uso de receptores DI y D2 para el adecuado efecto un precursor de la dopamina (L-DOPA) o de ago- farmacológico en la enfermedad de Parkinson. nistas dopaminérgicos. La L-DOPA atraviesa la barrera hematoencefálica y es capturada por las Esquizofrenia. Los neurolépticos como el haloperidol, que neuronas dopaminérgicas remanentes o bien por otras neuronas aminérgicas (catecolaminérgicas son antagonistas de los receptores dopaminérgio serotoninérgicas) las que la convierten a dopa- cos de la familia D2, mostraron ser útiles en el mina. Debido a la presencia en el plasma de enzi- manejo farmacológico de la esquizofrenia, susmas que convierten a la L-DOPA a dopamina, el tentando así la hipótesis de que este transtorno precursor se administra a la par de un inhibidor se debe al menos en parte a una hiperactividad de de las descarboxilasas periféricas, como las hi- la transmisión dopaminérgica (75). Esta hipóte- Na+/H+. Estas acciones se encuentran mediadas por proteínas G del tipo Gai o Gao (2). Vol. II/No. l/Enero-Marzo, 2000 54 R Bahena-Trujillo, G Flores, JA Arias-Montaño. sis recibió apoyo adicional al observarse que los rigidez muscular y acinesia (falta de movimiento) fármacos psicoestimulantes (como las anfetami- en su etapa inicial y posteriormente discinesia tarnas), los cuales aumentan la transmisión dopami- día (96). La evidencias experimentales disponinérgica, inducen estados psicóticos con aparición bles indican que los efectos antipsicóticos de los de los signos positivos de la esquizofrenia, como neurolépticos se deben a su acción sobre recepeuforia y alucinaciones auditivas. En conjunto tores del sistemamesolímbico (familia D2 y en parestos datos sugerían que la esquizofrenia podría ticular el subtipo D2), en tanto que los efectos corelacionarse con alteraciones específicas de la laterales se originan por el bloqueo de los receptores (subtipos DI y D2) presentes en los ganglio s transmisión dopaminérgica (10 1). Los estudios sobre los posibles cambios en basales, principalmente en el neoestriado. Desde la densidad de receptores dopaminérgicos son dí- esta perspectiva, el desarrollo de fármaco s con ficiles de interpretar y de conciliar entre éllos. Por diferente afinidad por los distintos subtipos de reejemplo, en algunos estudios el análisispost-mor- ceptores dopaminérgicos permitiría una mayor tem del cerebro de pacientes con esquizofrenia mejoría evitando de manera importante los efecha mostrado un aumento en la densidad de re- tos colaterales. En línea con lo anterior, estos ceptores de la familia D2 (102) Y del subtipo D4, efectos son mucho menores en pacientes que han perteneciente a la misma familia (103), en los nú- sido tratados con el fármaco clozapina, por el cual cleos caudado y putamen. Sin embargo, otro es- los receptores D 4 muestran alta afinidad (65). Hallazgos recientes indican que la acción tudio mostró en los mismos núcleos un aumento de los fármacos antipsicóticos se debe al bloqueo de los receptores de la familia D2 (104), sin cambio aparente en el subtipo D 4' es decir, que el au- de receptoresde la familia D2 presentesen la cormento correspondió a los subtipos D2 y D3. Por teza cerebral, mientras que los efectos su parte, Schamaussy cols. reportaron en 1993 extrapiramidales se deben de manera primaria al (105) una disminución del subtipo D3, pertene- antagonismo de los receptores DI y D2 del ciente también a la familia D 2' en la corteza cere- neoestriado. Así, la eficacia de la clozapina rebral. A pesar de estos datos, un estudio con to- quiere probablemente de una explicación complemografia de emisión de positrones no mostró re- ja. Diversos datos experimentales indican que lación entre la esquizofrenia y cambios en la den- dada su afinidad por los diferentes subtipos de receptores dopaminérgicos, a dosis utilizadas sidad de receptores dopaminérgicos (106). Otros estudios han sido también dirigidos a clínicamentela clozapina podría bloquear una alta establecerrelación entre posibles alteraciones ge- proporción de receptores de la familia D2 en la néticas en la expresión de receptores dopaminér- corteza cerebral (que pertenecerían básicamente gicos y la aparición de esquizofrenia. Sin embar- al subtipo D J, en tanto que en el neoestriado la go, los resultados obtenidos hasta el momento no fracción de receptores bloqueados por la apoyan dicha relación (65). Finalmente, cambios clozapina sería menor por dos razones: 1) por en la función de los transportadores de dopamina pertenecer a los subtipos DI y D2, con menor afipodrían también modificar la función dopaminér- nidad por la clozapina, y 2) porque el antagonisgica y participar por lo tanto en la fisiopatología ta tendría que competir con cantidades muy altas de la esquizofrenia. Sin embargo, dichos cambios del agonista endógeno, situación que no ocurre en la corteza cerebralmenor donde(107). la concentración de no han sido observados (102). dopamina es mucho ' Por otra parte, como consecuenciadel tratamiento con neurolépticos los pacientes portadores de esquizofrenia desarrollan alteraciones Receptores dopaminérgicos y adicción. Además de la función motora, la dopamina motoras (síndrome extrapiramidal) que incluyen Revista Biomédica 55 Dopamina: síntesis,liberación y receptoresen el SNC CONCLUSION. La dopaminaes un transmisorde gran importancia en el SistemaNervioso Central. Los efectosfuncionalesde la dopaminase ejercena travésde la activaciónde 5 subtiposde receptores, todos ellos acopladosa proteínasG y agrupados en dos familias farmacológicas,DI (DI y Ds) Y D2 (D2' D3, DJ. Alteraciones diversasdel SNC (enfermedadde Parkinson,esquizofreniay adiccióna drogas,entre otras) se han relacionado con transtomosde la transmisióndopaminérgica. En consecuencia,el estudio de los aspectos aún no entendidosde la función de la dopamina, dopaminérgica (3). En el caso de la anfetamina y la cocaína, de los diferentessubtiposde receptoresy de los los efectos se deben a un aumento de los niveles mecanismosde transducciónde señales,permitide dopamina. La cocaína bloquea la recaptura de rá no sólo avanzaren la comprensiónde la funla dopamina y de otras aminas biogénicas como ción de los sistemasdopaminérgicos,sino tamla noradrenalina y la seorotonina. Por su parte las bién diseñar nuevas estrategiasfarmacológicas anfetaminas tienen un efecto similar en la que incidanen la terapéuticade dichos procesos recaptura de monoaminas, e incrementan además patológicos. seha vinculado con procesosmotivacionalescomo el de reforzamiento y de recompensa. Las vías dopaminérgicas,en particular las proyeccionesascendentes del área ventro-tegmental hacia el núcleo accumbens,son importantes en el mecanismo cerebral de autoestimulación. Se ha mostrado que la cocaína, la anfetamina, la morfina y la nicotina incrementanla transmisión dopaminérgicaen áreas cerebraleslímbicas involucradas con la emotividad. En el caso de la morfina se ha sugerido que activa un sistemaopioide endógeno localizado en el área ventro tegmental y estimula así la transmisión la síntesis y la liberación de la dopamina (3). Las anfetaminaspueden también inhibir el catabolismo de la dopamina por bloqueo de la enzima monoamino oxidasa, en particular de la forma A o MAO A (3). Sin embargo,esteúltimo mecanismo no se considera relevante clínicamente, ya que requiere de dosis elevadas (10 mg.kg-l por vía intraperitoneal) en animales de experimentación (108), que se traducirían en dosis frecuentemente letales en el ser humano (109). Epilepsia. Con base en diversasobservacionesclínicasseha postuladoque la epilepsiapodríaserun síndrome de hipoactividad dopaminérgica,con disminuciónde la transmisiónmesolímbicaenparticular. Si bien los datos experimentalesno han proporcionadosustentopleno para dicha teoría, sehan documentadoaccionesanticonvulsivantes de los agonistasD2 (atribuídasa la activaciónde receptores localizados en el cerebro anterior), mientrasque los agonistasDI disminuyenel umbral convulsivo, probablementepor efectos sobre las neuronasdel cerebromedio (110). REFERENCIAS. 1. Fibiger HC. Mesolimbic dopamine: an analysis oí its role in motivated behavior. Semin Neurosci 1993; 5:32127. 2. Jackson DM, Westlind-Danielsson A. Dopamine receptors:molecularbiology, biochemistry and behavioral aspects.PharmacolTher 1994; 64: 291-369. 3. Feldman RS, Meyer JS, Quenzer LF. Principies of neuropsychopharmacology.Sunderland, Sinauer, 1997: 277-344. 4. Robbins-TrevorW. Milestones in dopamine research Semin.Neurosci. 1992; 4:93-7. 5. Kebabian JW, Calne DB. Multiple receptors for dopamine.Nature 1979; 277:93-6. 6. Bunzow JR,Van Tol HHM, Grandy DK, Albert P, Salon J, Christie M, Machida CA, Neve KA, Civelli O. Cloning and expression of a rat D2 dopamine receptor cDNA. Nature 1988; 336:783-7. 7. CooperJR, Bloom FE, Roth RH. The biochemicalbasis ofneuropharmacology.7th. Ed. NewYork/Oxford, Oxford University Press,1996:293-351. Vol. II/No. l/Enero-Marzo, 2000 56 R Bahena-Truj;llo, G Flores, JA Ar;as-Montaño. 8. Fuxe K. Evidence íor the existence oí monoaminecontaining neurons in the central nervous system. IV. Distribution oí monoaminenerveterminals in the central nervous system. Acta Physiol Scand 1965; 64, (Suppl. 247): 37-85. 19. Fujisawa H, Okuno S. Regulation oí tyrosine hydroxylase activity by its products and cyclic AMPdependentprotein kinase.En: Kaufman Sed. Amino acids in health and disease:new perspectives.New York: Atan R. Liss; 1987.p. 245-66. 9. FreundTF, Powell JF,Smith AD. 1'yrosinehydroxylase- 20. Fujisawa H., Okuno S. Regulation oí the activity oí immunoreactiveboutonsin synapticcontacwiili identified tyrosine hydroxylasein the central nervous system.Adv striatonigral neurons,wiili particular referenceto dendritic Enzym Reg 1987; 28:93-110. spines.Neurosci 1984; 13:1189-215. 21. McGeer PL, Eccles JC, McGeer EG. Molecular 10. Nagatsu T, Levitt M, Uderfriend S. Tyrosine neurobiology of fue rnarnrnalian brain. 2nd. New Yor: hydroxi1ase:the initia1 stepin norepinephrinebiosynthesis. PlenurnPress;1987.p. 265-317. JBio1 Chem 1964; 239:2910-7. 22. Zigmond, MJ, Schwarzschild MA, Rittenhouse AR 11. Levitt M, Spctor S, Sjoerdsma A, Udenfriend S. Acute regulation oftyrosine hydroxylaseby nerve activity Elucidation of fue rate-limiting step in norepinephrine and by neurotransmittersvia phosphorylatio. Ann Rev biosynthesisin the perfusedguinea-pigheart.J Pharmacol Neurosci 1989; 12:415-61. Exp Ther 1965; 23:1493-501. 23. HeteyL, Kudrin V; ShemanovA, RayevskyK, Delssner 12. Ledley FD, Grenett HE, Woo SLC. Structure oí V. Presynaptic dopamine and serotonin receptors aromatic amino acid hydrolases.En: Kaufman S. Amino modulatingtyrosine hydroxylaseactivity in synaptosomes acids in Health and disease:new perspectives.New York: ofnucleus accumbensofrats. EurJ Pharmacol1985; 43: AlanR. Liss: 1987.p. 267-84. 327-30. 13. Weiner N, MolinoffPB. Cathecolamines.En: Siegel GJ, Agranoff B, Albers RW, Molinoff PB eds. Basic Neurochemistry.4thEd. New York: RavenPress;1989.p. 233-51. 14. Nagatsu T. Biopterin cofactor and regulation of monoamine-synthesizing mono-oxygenase. Trends PharmacolSci 1981; 2:276-9. 15. Kaufman S. The enzymology oí fue aromatic amino acid hydrolases.En: Kaufman Soo.Amino acidsin health and disease:new perspectives.New York: Alan R. Liss, 1987:205-232. 16. Arias-Montaño lA. Modulación de la síntesis de dopaminapor receptorespresinápticos.Tesisdoctoral,De.; partamento de Fisiología, Biofísica y Neurociencias, CINVESTAV, 1990. 17. Carlsson A. The in vivo estimation of rates of tryptophanand tyrosinehydroxylation:effectsof alteration in enzymeenviromentand neuronalactivity. En: Kaufman Sed. Aromatic amino acids in the brain. Amsterdam: EIsevier; 1974.p. 117-34. 18. Kaufman S. Properties of pterin-dependentaromatic aminoacid hydrolases.En: Kaufman S oo.Aromaticamino acidsin thebrain. Amsterdam:EIsevier; 1974.p. 108-15. Revista Biomédica 24. Onali P,aliaDasMC. Involvementof adenylatecyclase inhibition in dopamineautoreceptorregulation oftyrosine hydroxylasein rat nucleusaccumbens.NeurosciLett 1989; 102:91-6. 25. Dwonskin LP, Zhaniser NR. Robust modulation of [3H]-dopaminereleasefrom striatal slicesby D2-dopamine receptors.J Pharm Exp Ther 1986; 239:442-53. 26. WatanabeH. D1-typeof dopamine autoreceptorsare not involved in fue reguiation of dopamine synthesisin the striatum. JapanJ Pharmacol1987; 43:327-30. 27. MagnusonO, Mohringe R, Fowier CJ. Compariso~of the effectson dopamineD¡ and D2 receptorsantagonists on rat striatal, limbic and ni gral dopamine synthesisand utilisation. J Neural Transm 1987; 69:163-77. 28. Bowyer JF, Weiner N. Modulation ofthe Ca2~ evoked release of [3H] dopamine from striatal synaptosomes by dopamine (D J agonistsand antagonists.J PharmExp Ther 1987; 241:27-33. 29. Boyar WC, Altar CA. Modulation of in vivo dopamine releaseby D2but not DI receptoragonistsand antagonists. J Neurochem1987;48:824-31. 30. Herdon H, Strupish J, Nahorski SR. Endogenous dopaminereleasefrom striatal slicesand its regulation by 57 Dopamina: síntesis,liberación y receptoresen el SNC D2autoreceptors:effectsofuptake inhibitors and synthesis 41. SüdhofTC. The synapticvesicle: a cascadeofproteinprotein interactions.Nature 1995; 375:645-53. inhibition. Eur J Phannacoll987; 138:69-76. 31. El MestikawyS, HamonM. Is dopamine-induced 42. Receptor and ion channel nomenclature. Trends inhibition of adenylate cyclase involved in the PharmacolSci 1998. autoreceptor-mediatednegative control of tyrosine hydroxylase in striatal dopaminergic terminals? J 43. Raiteri M, Marchi M, Maura G. Presynaptic muscarinic receptors increase striatal dopamine release Neurochem1986;47:1425-33. 32. Onali P, Olianas MC, Bunse B. Evidence that adenosine A2 receptors and dopamine autoreceptors antagonistically regulate tyrosine hydroxylaseactivity in rat striatal synaptosomes.Brain Res 1988;456:302-9. evoked by "quasi-physiological" depolarization. Eur J Pharmacoll982; 83:123-9. 44. Leviel V; Gobert A, Guibert B. Direct observationof dopamine compartmentation in striatal nerve terminals by 'in vivo' measurementofthe specificactivity ofreleased dopamine.Brain Res 1989; 499:205-13. 33. Gobert A. Lejeune F, Rivet J-M, Cistarelli L, Millan MJ. DopamineD) (auto)receptorsinhibit dopaminerelease in the frontal cortex of freely moving rats in vivo. J 45. Valentijn lA, VaudryH, Cazin L. Multiple control of calcium channel gating by dopamineD 2 receptorsin frog Neurochem 1996; 66: 2209-12. pituitary menotrophs.Ann NY Acad Sci 1993; 37:21134. Whetzel SZ, Shih YH, Georgic LM, Akunne HC, 28. Pugsley TA. Effects of fue dopamine DJ antagonist PD 58491 and its interaction with the dopamineDJ agonist 46. RobertsP,McBean G, SharifNA, Thomas E. Striatal PD 128907 on brain dopamine synthesis in rato J glutamatergic function modifications following specific lesions.Brain Res 1982; 235: 83-91. Neurochem 1997; 69:2363-68. 35. Lledo PM, Homburger Y, Bockaert J, Vincent J-D. Differential G protein-mediatedcoupling oíD2 dopamine receptor to K+ and Ca2+currents in rat anterior pituitary cells. Neuron 1992; 8:455-63. 36. Akaoka H, Charlety P, SaunierCF, Buda M, Chouvet G. Inhibition oí nigral dopamineneuronsby systemicand local apomorphine: possible contribution oí dendritic autoreceptor.Neuroscience1992; 49:879-91. 37. Chowdhury M, Fillenz M. PresynapticadenosineA2 and N-methyl-D-aspartate receptors regulate dopamine synthesisin rat striatal synaptosomes. J Neurochem1991; 56:1783-88. 47. Raiteri M, Leardi R, Marchi M. Heterogeinity oí presynapticmuscarinic receptorsregulating neurotransmitter releasein rat brain. J Pharmacol Exp Ther 1984; 228:209-14. 48. CheramyA, RomoR, GodeheuG, Baruch P, Glowinski J. In vivo presynapticcontrol of dopamine releasein the cal caudatenucleus-lI. Facilitatory or inhibitory influence ofL-glutamate. Neurosci 1986; 19:1081-90. 49. ]hamandasK, Manen M. Glutamate-evokedrelease oí endogenousbrain dopamine:inhibition by an excitatory amino acid antagonistand an enkephalin analogue.Br ] Pharmacol 1987; 90:641-50. 38. Arias-Montafto JA, Martínez-Fong D, Aceves J. Glutamatestimulation oftyrosine hydroxylaseis mediated 50. Martínez-Fong D, RosalesMG, Góngora-Alfaro JL, by NMDA receptorsin the rat striatum. Brain Res. 1992; Hernández S, Aceves J. NMDA receptor mediates dopamine releasein fue striatum of unanesthetizedrats 569:317-22. asmeasuredby brain microdialysis.Brain Res 1992;595:2 39. Arias-Montafio JA, Martínez-Fong D, Aceves J. 309-15. Gamma-arninobutiric acid (GABAB) receptor-mediated inhibition oftyrosine hydroxylaseactivity in rat striatum. 51. GiorguieffMF, Le Flo'h ML, Glowinski J, BessonMI. Stimulation of dopamine releaseby GABA in rat striatal Neuropharmacol.1991; 30:1047-51. slices.BrainRes 1978; 139:115-30. 40. Arias-Montaño JA, Martínez-Fong D, Aceves J. GABAB receptor activation partial1y inhibits N-methy1- 52. StarrMS. GABA potentiatespotassium-stimulated3HD-aspartate-mediatedtyrosine hydroxylasestimu1ationin dopamine releasefrom rat substantia nigra and corpus striatum. Eur J Pharmacol1978; 48:325-8. rat striata1slices. Eur J Pharmaco11992;218:335-8. Vol. II/No. l/Enero-Marzo, 2000 58 R Bahena-Trujillo, G Flores, JA Arias-Montaño. 53. LehmannJ., Langer SZ. Muscarinicreceptorson dopamine terminals in the cal caudate nucleus: neuromodulationof pH]dopaminereleasein vitro by endogenous acetylcholine. Brain Res1982;248:61-9. 54. Bowery NG, Hill DR, Hudson AL, Doble A, Middlemiss DN, Shaw J, et al. (-)Baclofen decreases neurotransmitter releasein the mammalian CNS by an action at a novel GABA receptor.Nature 1980; 283: 924. 55. Reimann W, Zumstein A, Starke K. -Aminobutyric acid can both inhibit and facilitate dopamine releasein the caudatenucleusofthe rabbit. J Neurochem1982; 39: 961-9. 65. Missale C, RusselNS, Robinson SW, JaberM, Caron MG. Dopamine receptors: from structure to function. Physiol Rev 1998; 78:189-225. 66. O'Dowd BF. Structure of dopamine receptors. J Neurochem1993; 60:804-16. 67. SchwartzJ-C, Giros B, Martres M-P, SokolotI P. The dopamine receptor family: molecular biology and pharmacology.Semin.Neurosci. 1992; 4: 99-108. 68. Dixon RAP, Sigal IS, RandsE, RegisterRB, Candelore MR, Blake AD, et al. Ligand binding to the -adrenergic receptor involves its rhodopsin-like coreoNature 1987; 326:73-77. 56. Reirnann W. Inhibition by GABA, baclofen and 69. Zhou Q-Z, Grandy DK, Thambi L, Kushner JA, Van GABApentine of doparnine releasefrorn rabbit caudate To1HHM, ConeR, et al. C1oningand expressionoí human nucleus:are there cornrnonor different sitesof action. Eur and rat D( dopaminereceptors.Nature 1990; 347:76-80. J Pharrnacol1983; 94:341-4. 70. SunaharaRK, Niznik HE, Weiner M, Stonnann TM, 57. Iversen LL. Uptake processof biogenic amines.En: Brann MR, Kennedy JL, et al. Human dopamine DI reIversen LL, Iversen SD eds. Handbook of ceptor encodedby an intronless gene on chromosome5. psychopharmaco1ogy. New York: P1enum;1975. p. 381- Nature 1990; 347:80-3. 442. 71. Andersen PR, Gingrich JA, Bates MD, Dearry A, 58. Attwell D, MobbsP.Neurotranmittertransporters.Curr Falardeau P, Senogles SE, et al. Dopamine receptor subtypes: beyond the DI! D2 classification. Trends Opin Neurobiol1994; 4:353-9. PharmacolSci 1990; 11:231-6. 59. Amara SG, KuharMJ. Neurotransmittertransporters: 72. Del TorsoR, SommerB, Eewertt M, Herb A, Pritchett recentprogress.Annu Rey Neurosci 1993; 16: 73-93. DB, Bach A, et al. The dopamine D2 receptor: two 60. Shimada S, Kitayama S, Lin CL, Patel A, molecularforms generatedby alternative splicing. EMBO Nanthakumar E. Cloning and expression of a cocaine- J 1989; 8:4025-34. sensitive dopamine transporter complementary DNA. 73. Sibley DR, Leff SE, Creesel. Interactions of novel Science1991; 254:576-8. dopaminergic ligands with D-l and D-2 dopamine 61. Reith ME, Xu C, Chen NH. Pharmacologyand receptors.Life Sci 1982; 31:637-45. regulationoí the neuronaldopaminetransporter.Eur J Pharmacoll997;324:1-10. 74. Giros B, Martres MP, Sokolo1IP,SchwartzJC. CDNA cloning of the human dopaminergic DJ receptor and identification. CR Acad Sci Paris 1990; 311: 62. Tipton KF, Singer TP. Advancesin OUT understanding chromosomes of the mechanisms of the neurotoxicity of MPTP and 501-8. related compounds.J Neurochem 1993; 61:1191-1206. 75. JaberM, RobinsonS,Missale C, CaronMG. Dopamine 63. HmnphreyPPA.The characterizationandclassification receptorsand brain function. Neuropharmacology1996; of neurotransmitter receptors. Ann New York Acad Sci 35:1503-19. 1997; 182:1-13. 64. Kandel ER, Schwartz lli, JesselTM. PrincipIes of neural science. 3M.Ed., New York: Apleton and Lange, 1991.p. 120-269. 76. Huganir RL, Greengard P. Regulation of neurotransmitterreceptor desensitizationby protein phosphorylation. Neuron1990;5:555-67. 77. Letkowitz RJ, Hausdorff WP, Caron MG. Role of Revista Biomédica 59 Dopamina: síntesis,liberación y receptoresen el SNC phosphorylation in desensitizationoí the -adrenoceptor. 89. Schwartz,J.-C, Diaz J, Bordet J, Griffon N, Perachon S, Pilon C, et al. Functional implications oí multiple Trends Pharmacol Sci 1990; 11:190-4. dopamine receptor subtypes: the D lID 3 receptor 78. FergusonSG, Barak LS, Zhang J, CaronMG. G- coexistence.Brain Res Rey 1998; 26:236-42. protein-coupledreceptorregulation:tole oí G-proteincoupledreceptorkinasesand arrestins.Can J Physiol 90. Van TollllIM, Bunzow J, Gusn HC, SunaharaRK, SeemanP,Nizik HB, et al. Cloning of the genefor ahuman Pharmacol1996;74:1095-110. dopamine D4 receptor with high affinity for the 79. Watling KJ, Kebabian JW, Neumeyer JL. RBI handbook of receptor classification and signal transduction. ResearchBiochemicals International1995. 80. Undie AS, Friedman E. Stimulation of a dopamineDI receptor enhances inositol phosphate formation in rat brain. J PharmacolExp Ther 1990; 253: 987-92. 81. Arias-Montafio JA, AcevesJ, Young JM. Carbacholinduced phosphoinositide metabolism in slices of rat substantianigra pars reticulata. Mol Brain Res 1993; 19: 233-6. 82. Tiberi M, Jarvie KR, Silvia C, FalardeauP, Gingrich JA, Godinot N, et al. Cloning, molecular characterization and chromosomalassignmentof a geneencodinga second D¡ dopamine receptor subtype: Differential expression pattern in rat brain comparedwith the D1Areceptor.Proc Natl Acad Sci USA 1991; 88:7491-5. 83. Strader CD, Sigal IS, Dixon RAF. Structural basisof -adrenergicreceptorfunction. FASEB J 1989;3:1825-32. 84. Sibley DR, Daniel K, Strader CD, Lefkowitz RJ. Phosphorylationof the beta-adrenergicreceptorin intact cells: relationship to heterologous and homologous mechanismsof adenylate cyclase desensitization. Arch Biochem Biophys 1987; 258:24-32. 85. Arias-Montaño JA. ProteínasG y transducciónde señales celulares. Boletín Soc Mex CienciasFisiológicas 1994; 1:11-7. antipsychoticclozapine. Nature 1991; 350:610-4. 91. Mansour A, Meador-WoodruffJ, Burke S, Bunzow J, Akil H, Van Tol HM, et al. Differential distribution ofD2 and D4 dopaminereceptorrnRNAs in the rat brain: an in situhybridizationstudy. SocNeurosciAbstr 1991; 17:599. 92. Hornykiewicz O. Dopamine (3-hidroxytyramine) and brain function. PharmacolRey 1996; 18:925-64. 93. WaszczakBL, Waters IR. Dopamine modulation oí effects oí -aminobutyric acid on substantia nigra pars reticulata neurons.Science1983; 220:218-21. 94. Johnson AE, Coirini H, K:i11strom L, Wiese1 F-A. Characterization of dopamine receptor binding sites in fue subtha1amic nuc1eus. Neuro Report 1994; 5: 1836-8. 95. Kreiss DS, Anderson LA, Walters JR. Apomorphine and dopamine DI receptor agonists increase the firing rates oí subthalamic nucleus neurons. Neurosci 1996; 72:86376. 96. RichardsonEP, Adams RD. Degenerativediseasesof fue neorvoussystem.AIzheimer's diseaseand Parkinson's disease.En: PetersdorfRG, Adams RA, BraunwaId,E, IsseIbacherKJ, Martin ffi, WiIson m eds. Harrison's PrincipIes of InternaI Medicine. 9th Ed. New York: McGraw-HiII; 1982.p. 2119-32. 97. Gottwald MD, Bainbridge JL, Dowling GA, AminofI MJ, Alldredge BK. New pharmacoterapyfor Parkinson's disease.Ann Pharmacother1997; 31:1205-17. 86. Soria LE, Guerrero MG, Arias-Montaño lA. Adrenoceptores:estructura, faffilacología y mecanismos 98. PierceMF. Pharmacologyofpramipexole, a dopamine de transducciónde señales.Rev Biomed 1996; 7: 105-19. D3-preferring agonist useful in treating Parkinson's disease.Clin Neuropharmacol1998; 21:141-51. 87. Gómora JC, Avila G, Cota G. Ca2+current expression in pituitary melanotrophs oí neonatal rats and its 99. PoeweW. Adjuncts to levodopa therapy: dopamine regulationbyD2 dopaminereceptors.JPhysiol1996; 492: agonists.Neurol. 1998; 50 (SuppI6): S23-6. 763-73. 88. Seeman P, VanTol HHM. Dopamine receptor pharmacology.Trends Pharmacol Sci 1994; 15:264-70. 100. PoeweW. Should treatment ofParkinson's disease be started with a dopamine agonist? Neurol 1998; 50 (SuppI6): SI9-22. Vol. II/No. llEnero-Marzo. 2000 60 R Bahena-Trujillo, G Flores, JA Arias-Montaño. 101.GoldsteinM, Deutch AY. Dopaminergicmechanisms in the pathogenesisof schizophrenia.FASEB J 1992; 6: 2413-21. 102. Seeman P, Nizkik HB. Dopamine receptors and transporters in Parkinson's diseaseand schizophrenia. FASEB J 1990; 4: 2737-44. 103. SeemanP, Guan HC, VanTol HHM. Dopamine D4receptorsare elevatedin schizophrenia.Nature 1993;365: 441-5. 104. Reynolds GP,Mason SL. Are striatal doparnineD4 receptorsincreasedin schizophrenia?J Neurochern1994; 63:1576-7. 105.SchmaussC, HaroutunianV; Davis KL. Selective10ss of dopamine D3-type receptor mRNA expression in parietal and motor cortices of patients with chronic schizophrenia.Proc Natl Acad Sci USA 1993; 90:89426. 106. Farde L, Wiesel FA, Stone-Elander S, Halldin C, Norstrom AL, Hall H, et al. D2 dopamine receptorsin neuroleptic-nalve schizophrenic patients: a positron emission tomography study with [IIC]raclopride. Arch Gen Psychiatr 1990; 47:213-19. 107. Lidow MS, Williams GV, Goldman-RakicPS. The cerebral cortex: a case for a common site of action of antipsychotics.Trends Pharmacol Sci 1998; 19:136-40. 108. Jones SR, Gainetdinov RR, Wightman RM, Caron MG. Mechanismsoí amphetamineaction revealedin mice lacking the dopamine transporter. J Neurosci 1998; 18: 1979-86. 109. Hoffman BB, Lefkowitz RJ. Cathecolamines, sympathomimetic drugs, and adrenergic receptor antagonists.En: Hardman JG, Limbird LE, Molinoff PB, Ruddon RW eds. Goodman & Gilman 's The pharmacologicalbasisoftherapeutics. 9a. Ed. New York: McGraw Hill; 1996.p. 199-248. 110.Starr MS. The Toleof dopaminein epilepsy.Synapse 1996;22:159-94. Revista Biomédica